Традиционное хирургическое протезирование аортального клапана является «золотым стандартом» лечения пациентов с аортальным
стенозом. Транскатетерная имплантация аортального клапана является альтернативным методом лечения таких пациентов. В статье рассматривается вопрос о нарушении проводимости у пациентов с пороками аортального клапана. Ввиду широкого распространения данного типа
поражения клапанного аппарата сердца и высокого риска осложнений и летальности эта патология является актуальной проблемой современной
кардиологии. Приведены данные ретроспективной оценки частоты и характера нарушения проведения, как при протезировании аортального
клапана хирургическим методом, так и при транскатетерной имплантации аортального клапана. Наиболее частым осложнением после операции
было нарушение ритма по типу атриовентрикулярной блокады II-III ст., в том числе требующая имплантации постоянного водителя ритма. Также
нарушения проведения зависели от использования вида протеза, а блокады ножек пучка Гиса (БПВЛНПГ, БПНПГ, БЛНПГ) являлись независимым предиктором летальности.

1. Сокольская МА, Шварц ВА, Испирян АЮ, Петросян АД, Пасхалов ИД, Абгарян АА, Александрова
МЛ, Бокерия ОЛ, Бокерия ЛА. Предикторы развития
послеоперационной фибрилляции предсердий после
протезирования аортального клапана у пациентов с
аортальной недостаточностью. Анналы аритмологии. 2020;17 (4):220-231. [Sokolskaya MA, Schwartz VA,
Ispiryan AYu, Petrosyan AD, Paskhalov ID, Abgaryan AA,
Aleksandrova ML, Bokeria OL, Bokeria LA. Predictors
of postoperative atrial fibrillation after aortic valve
replacement in patients with aortic insufficiency. Annaly
Aritmologii. 2020;17(4):220-231. (In Russian)] DOI:
10.15275
2. Manuel AM, Almeida J, Guerreiro C, Dias
T, Barbosa A, Teixeira P, Ribeiro J, Dias A, Caeiro D,
Fonseca M, Teixeira M, Oliveira M, Gonçalves H, Primo
J, Rodrigues A, Gama V, Braga P, Fontes-Carvalho R.
The effects of transcatheter aortic valve implantation
on cardiac electrical properties. Revista Portuguesa de
Cardiologia. 2020;39(8):431-440. English, Portuguese.
DOI: 10.1016/j.repc.2020.02.011
3. Baumgartner H, Falk V, Bax JJ, De Bonis M,
Hamm C, Holm PJ, Iung B, Lancellotti P, Lansac E,
Rodriguez Muñoz D, Rosenhek R, Sjögren J, Tornos
Mas P, Vahanian A, Walther T, Wendler O, Windecker
S, Zamorano JL; ESC Scientific Document Group. 2017
ESC/EACTS Guidelines for the management of valvular
heart disease. European Heart Journal. 2017;38(36):2739-
2791. DOI: 10.1093/eurheartj/ehx391
4. Nishimura RA, Otto CM, Bonow RO, Carabello
BA, Erwin JP 3rd, Fleisher LA, Jneid H, Mack MJ,
McLeod CJ, O'Gara PT, Rigolin VH, Sundt TM 3rd,
Thompson A. 2017 AHA/ACC Focused Update of
the 2014 AHA/ACC Guideline for the Management
of Patients With Valvular Heart Disease: A Report
of the American College of Cardiology/American
Heart Association Task Force on Clinical Practice
Guidelines. Circulation. 2017;135(25):1159-1195. DOI:
10.1161/CIR.0000000000000503
5. Lam KY, Timmermans N, Akca F, Tan E,
Verberkmoes NJ, de Kort K, Soliman-Hamad M,
van Straten AHM. Recovery of conduction disorders
after sutureless aortic valve replacement. Interactive
CardioVascular and Thoracic Surgery. 2021;32(5):703-710.
DOI: 10.1093/icvts/ivaa335
6. Nazif TM, Chen S, George I, Dizon JM, Hahn RT,
Crowley A, Alu MC, Babaliaros V, Thourani VH, Herrmann
HC, Smalling RW, Brown DL, Mack MJ, Kapadia S, Makkar
R, Webb JG, Leon MB, Kodali SK. New-onset left bundle
branch block after transcatheter aortic valve replacement
is associated with adverse long-term clinical outcomes in
intermediate-risk patients: an analysis from the PARTNER
II trial. European Heart Journal. 2019;40(27):2218-2227.
DOI: 10.1093/eurheartj/ehz227
7. Белов ЮВ, Салагаев ГИ, Лысенко АВ, Леднев
П.В. Протезирование аортального клапана. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2017;(11):56-59. [Belov
IuV, Salagaev GI, Lysenko AV, Lednev PV. How do I do
it: aortic valve replacement. Pirogov Russian Journal of
Surgery. 2017;(11):56-59. (In Russian) ] DOI:10.17116/
hirurgia20171156-59
8. Stankowski T, Mangner N, Linke A, AboulHassan SS, Gąsior T, Muehle A, Herwig V, Harnath A,
Salem M, Szłapka M, Grimmig O, Just S, Fritzsche D,
Perek B. Cardiac conduction abnormalities in patients
with degenerated bioprostheses undergoing transcatheter
aortic valve-in-valve implantations and their impact on
long-term outcomes. International Journal of Cardiology.
2021;(330):16-22. DOI: 10.1016/j.ijcard.2021.02.029
9. Falk V, Baumgartner H, Bax JJ, De Bonis M,
Hamm C, Holm PJ, Iung B, Lancellotti P, Lansac E, Muñoz
DR, Rosenhek R, Sjögren J, Tornos Mas P, Vahanian A,
Walther T, Wendler O, Windecker S, Zamorano JL, Roffi
M, Alfieri O, Agewall S, Ahlsson A, Barbato E, Bueno H,
Collet JP, Coman IM, Czerny M, Delgado V, Fitzsimons D,
Folliguet T, Gaemperli O, Habib G, Harringer W, Haude
M, Hindricks G, Katus HA, Knuuti J, Kolh P, Leclercq
C, McDonagh TA, Piepoli MF, Pierard LA, Ponikowski
P, Rosano GMC, Ruschitzka F, Shlyakhto E, Simpson
IA, Sousa-Uva M, Stepinska J, Tarantini G, Tchétché D,
Aboyans V. Corrigendum to '2017 ESC/EACTS Guidelines
for the management of valvular heart disease. European
Journal of Cardio-Thoracic Surgery : Official Journal of
the European Association for Cardio-thoracic Surgery.
2017;52(4):616-664. DOI: 10.1093/ejcts/ezx363
10. Нуртуган МН, Мусалим ИК. Транскатетерное
эндоваскулярное (внутрисосудистое) протезирование
аортального клапана. Аллея науки. 2021;11(62);488-493.
[Nurtugan MN, Musalim IK. Transcatheter endovascular
(intravascular) aortic valve replacement. Alley of Science.
2021;11(62);488-493. (In Russian)]
11. Vicent L, Fernández-Cordón C, NombelaFranco L, Escobar-Robledo LA, Ayesta A, Ariza Solé A,
Gómez-Doblas JJ, Bernal E, Tirado-Conte G, Cobiella J,
González-Saldivar H, López-Otero D, Díez-Villanueva
P, Sarnago F, Armario X, Bayés-de-Luna A, MartínezSellés M; Baseline Interatrial Block and Transcatheter
Aortic Valve Implantation (BIT) Registry Investigators.
Baseline ECG and Prognosis After Transcatheter Aortic
Valve Implantation: The Role of Interatrial Block. Journal
of the American Heart Association. 2020;9(22):017. DOI:
10.1161/JAHA.120.017624
12. Seto AH, Kern MJ. Every TAVR deserves a cardiac
implantable electronic device specialist. Catheterization and
Cardiovascular Interventions : Official Journal of the Society
for Cardiac Angiography & Interventions. 2019;93(3):200-
201. DOI: 10.1002/ccd.28000
13. Mahajan S, Gupta R, Malik AH, Mahajan P,
Aedma SK, Aronow WS, Mehta SS, Lakkireddy DR.
Predictors of permanent pacemaker insertion after TAVR:
A systematic review and updated meta-analysis. Journal of
Cardiovascular Electrophysiology. 2021;32(5):1411-1420.
DOI: 10.1111/jce.14986
14. Vlastra W, Chandrasekhar J, Muñoz-Garcia AJ,
Tchétché D, de Brito FS Jr, Barbanti M, Kornowski R, Latib
A, D'Onofrio A, Ribichini F, Baan J, Tijssen JGP, TrilloNouche R, Dumonteil N, Abizaid A, Sartori S, D'Errigo
P, Tarantini G, Lunardi M, Orvin K, Pagnesi M, Del Valle
R, Modine T, Dangas G, Mehran R, Piek JJ, Delewi R.
Comparison of balloon-expandable vs. self-expandable
valves in patients undergoing transfemoral transcatheter
aortic valve implantation: from the CENTERcollaboration. European Heart Journal. 2019;40(5):456-
465. DOI: 10.1093/eurheartj/ehy805
15. Carroll JD, Mack MJ, Vemulapalli S, Herrmann
HC, Gleason TG, Hanzel G, Deeb GM, Thourani VH, Cohen
DJ, Desai N, Kirtane AJ, Fitzgerald S, Michaels J, Krohn
C, Masoudi FA, Brindis RG, Bavaria JE. STS-ACC TVT
Registry of Transcatheter Aortic Valve Replacement. Journal
of the American College of Cardiology. 2020;76(21):2492-
2516. DOI: 10.1016/j.jacc.2020.09.595
16. Auffret V, Puri R, Urena M, Chamandi C,
Rodriguez-Gabella T, Philippon F, Rodés-Cabau
J. Conduction disturbances after transcatheter
aortic valve replacement: Current status and future
perspectives. Circulation. 2017;136(11):1049-1069. DOI:
10.1161/CIRCULATIONAHA.117.028352
17. Siontis GCM, Praz F, Lanz J, Vollenbroich R, Roten
L, Stortecky S, Räber L, Windecker S, Pilgrim T. New-onset
arrhythmias following transcatheter aortic valve implantation:
a systematic review and meta-analysis. 2018;104(14):1208-
1215. DOI: 10.1136/heartjnl-2017-312310
18. Jørgensen TH, Thyregod HG, Tarp JB, Svendsen
JH, Søndergaard L. Temporal changes of new-onset atrial
fibrillation in patients randomized to surgical or transcatheter
aortic valve replacement. International Journal of Cardiology.
2017; (234):16-21. DOI: 10.1016/j.ijcard.2017.02.098
19. Pessoa-Amorim G, Mancio J, Vouga L, Ribeiro
J, Gama V, Bettencourt N, Fontes-Carvalho R. Impaired
left atrial strain as a predictor of new-onset atrial
fibrillation after aortic valve replacement independently
of left atrial size. Revista Española de Cardiología (English
edition.).2018;71(6):466-476. English, Spanish. DOI:
10.1016/j.rec.2017.10.005
20. Almeida JG, Ferreira SM, Fonseca P, Dias T,
Guerreiro C, Barbosa AR, Teixeira P, Carvalho M, Ferreira
W, Ferreira ND, Oliveira M, Gonçalves H, Braga P, Ribeiro
J, Primo J, Ribeiro VG. Association between implantation
depth assessed by computed tomography and newonset conduction disturbances after transcatheter aortic
valve implantation. Journal of Cardiovascular Computed
Tomography. 2017;11(5):332-337. DOI: 10.1016/j.
jcct.2017.08.003
21. Baumgartner H, Falk V, Bax JJ, De Bonis M,
Hamm C, Holm PJ, Iung B, Lancellotti P, Lansac E,
Rodriguez Muñoz D, Rosenhek R, Sjögren J, Tornos
Mas P, Vahanian A, Walther T, Wendler O, Windecker
S, Zamorano JL. ESC Scientific Document Group. 2017
ESC/EACTS Guidelines for the management of valvular
heart disease. European Heart Journal. 2017;38(36):2739-
2791. DOI: 10.1093/eurheartj/ehx391
22. Thourani VH, Kodali S, Makkar RR, Herrmann
HC, Williams M, Babaliaros V, Smalling R, Lim S,
Malaisrie SC, Kapadia S, Szeto WY, Greason KL, Kereiakes
D, Ailawadi G, Whisenant BK, Devireddy C, Leipsic J,
Hahn RT, Pibarot P, Weissman NJ, Jaber WA, Cohen DJ,
Suri R, Tuzcu EM, Svensson LG, Webb JG, Moses JW,
Mack MJ, Miller DC, Smith CR, Alu MC, Parvataneni
R, D'Agostino RB Jr, Leon MB. Transcatheter aortic
valve replacement versus surgical valve replacement in
intermediate-risk patients: a propensity score analysis.
Lancet. 2016;387(10034):2218-25. DOI: 10.1016/S0140-
6736(16)30073-3
23. Manoharan G, Van Mieghem NM, Windecker
S, Bosmans J, Bleiziffer S, Modine T, Linke A,
Scholtz W, Chevalier B, Gooley R, Zeng C, Oh JK,
Grube E. 1-Year Outcomes With the Evolut R SelfExpanding Transcatheter Aortic Valve: From the
International FORWARD Study. JACC Cardiovascular
Interventions. 2018;11(22):2326-2334. DOI: 10.1016/j.
jcin.2018.07.032
24. van Gils L, Tchetche D, Lhermusier T, Abawi M,
Dumonteil N, Rodriguez Olivares R, Molina-Martin de
Nicolas J, Stella PR, Carrié D, De Jaegere PP, Van Mieghem
NM. Transcatheter Heart Valve Selection and Permanent
Pacemaker Implantation in Patients With Pre-Existent
Right Bundle Branch Block. Journal of the American
Heart Association. 2017;6(3):005-028. DOI: 10.1161/
JAHA.116.005028
25. Martín-Demiguel I, Núñez-Gil IJ, Pérez-Castellanos
A, Vedia O, Uribarri A, Durán-Cambra A, Martín-García
A, Corbí-Pascual M, Guillén Marzo M, Martínez-Sellés
M. Prevalence and Significance of Interatrial Block in
Takotsubo Syndrome (from the RETAKO Registry). The
American Journal of Cardiology. 2019;123(12):2039-2043.
DOI: 10.1016/j.amjcard.2019.03.028
26. Alexander B, Sadiq F, Azimi K, Glover B,
Antiperovitch P, Hopman WM, Jaff Z, Baranchuk
A. Reverse atrial electrical remodeling induced
by cardiac resynchronization therapy. Journal of
Electrocardiology. 2017;50(5):610-614. DOI: 10.1016/j.
jelectrocard.2017.04.015
27. Mangieri A, Lanzillo G, Bertoldi L, Jabbour
RJ, Regazzoli D, Ancona MB, Tanaka A, Mitomo S,
Garducci S, Montalto C, Pagnesi M, Giannini F, Giglio
M, Montorfano M, Chieffo A, Rodès-Cabau J, Monaco F,
Paglino G, Della Bella P, Colombo A, Latib A. Predictors of
advanced conduction disturbances requiring a late (>/=48
H) permanent pacemaker following transcatheter aortic
valve replacement. JACC Cardiovascular Interventions.
2018;11(15):1519-1526. DOI: 10.1016/j.jcin.2018.06.014
28. De-Torres-Alba F, Kaleschke G, Vormbrock
J, Orwat S, Radke R, Feurle M, Diller GP, Reinecke H,
Baumgartner H. Delayed pacemaker requirement after
transcatheter aortic valve implantation with a newgeneration balloon expandable valve: Should we monitor
longer? International Journal of Cardiology. 2018;(273):56-
62. DOI: 10.1016/j.ijcard.2018.07.131
29. Tichelbäcker T, Bergau L, Puls M, Friede T,
Mütze T, Maier LS, Frey N, Hasenfuß G, Zabel M,
Jacobshagen C, Sossalla S. Insights into permanent
pacemaker implantation following TAVR in a real-world
cohort. PLOS ONE. 2018;13(10):204-503. DOI: 10.1371/
journal.pone.0204503
30. Mauri V, Deuschl F, Frohn T, Schofer N, Linder
M, Kuhn E, Schaefer A, Rudolph V, Madershahian
N, Conradi L, Rudolph TK, Schäfer U. Predictors of
paravalvular regurgitation and permanent pacemaker
implantation after TAVR with a next-generation selfexpanding device. Journal of Clinical and Experimental
Rsearch in Cardiology. 2018;107(8):688-697. DOI:
10.1007/s00392-018-1235-1
31. Kaneko H, Hoelschermann F, Seifert M, Tambor
G, Okamoto M, Moeller V, Neuss M, Butter C. Predictors
of permanent pacemaker implantation after transcatheter
aortic valve implantation for aortic stenosis using
Medtronic new generation self-expanding CoreValve
Evolut R. Heart and Vessels. 2019;34(2):360-367. DOI:
10.1007/s00380-018-1236-z
32. Pollari F, Großmann I, Vogt F, Kalisnik JM,
Cuomo M, Schwab J, Fischlein T, Pfeiffer S. Risk factors
for atrioventricular block after transcatheter aortic
valve implantation: a single-centre analysis including
assessment of aortic calcifications and follow-up. Europace.
2019;21(5):787-795. DOI: 10.1093/europace/euy316
33. Du F, Zhu Q, Jiang J, Chen H, Liu X, Wang
J. Incidence and predictors of permanent pacemaker
implantation in patients who underwent transcatheter
aortic valve replacement: observation of a Chinese
population. Cardiology Journal. 2020;145(1):27-34. DOI:
10.1159/000502792
34. Bisson A, Bodin A, Herbert J, Lacour T, Saint
Etienne C, Pierre B, Clementy N, Deharo P, Babuty D,
Fauchier L. Pacemaker implantation after balloon‐ or
self‐expandable transcatheter aortic valve replacement in patients with aortic stenosis. Journal of the American
Heart Association. 2020;9(9):015-86. DOI: 10.1161/
JAHA.120.015896
35. Barbanti M. Early outcomes of the evolut R
transcatheter aortic valve: a new technology between
achieved goals and desirable improvements. JACC
Cardiovascular Interventions. 2017;10(3):283-285. DOI:
10.1016/j.jcin.2016.12.029
36. Vlastra W, Chandrasekhar J, Muñoz-Garcia AJ,
Tchétché D, de Brito FS Jr, Barbanti M, Kornowski R, Latib
A, D'Onofrio A, Ribichini F, Baan J, Tijssen JGP, TrilloNouche R, Dumonteil N, Abizaid A, Sartori S, D'Errigo
P, Tarantini G, Lunardi M, Orvin K, Pagnesi M, Del Valle
R, Modine T, Dangas G, Mehran R, Piek JJ, Delewi R.
Comparison of balloon-expandable vs. self-expandable
valves in patients undergoing transfemoral transcatheter
aortic valve implantation: from the CENTERcollaboration. European Heart Journal. 2019;40(5):456-
465. DOI: 10.1093/eurheartj/ehy805
37. Muntané-Carol G, Nombela-Franco L, Serra
V, Urena M, Amat-Santos I, Vilalta V, Chamandi C,
Lhermusier T, Veiga-Fernandez G, Kleiman N, CanadasGodoy V, Francisco-Pascual J, Himbert D, Castrodeza J,
Fernandez-Nofrerias E, Baudinaud P, Mondoly P, CampeloParada F, De la Torre Hernandez JM, Pelletier-Beaumont E,
Philippon F, Rodés-Cabau J. Late arrhythmias in patients
with new-onset persistent left bundle branch block after
transcatheter aortic valve replacement using a balloonexpandable valve. Heart Rhythm. 2021;18(10):1733-1740.
DOI: 10.1016/j.hrthm.2021.05.031
38. Bernal E, Bayés-Genís A, Ariza-Solé A, Formiga
F, Vidán MT, Escobar-Robledo LA, Aboal J, Alcoberro
L, Guerrero C, Ariza-Segovia I, Hernández de Benito A,
Vilardell P, Sánchez-Salado JC, Lorente V, Bayés de Luna A,
Martinez-Sellés M. Interatrial block, frailty and prognosis
in elderly patients with myocardial infarction. Journal
of Electrocardiology. 2018;51(1):1-7. DOI: 10.1016/j.
jelectrocard.2017.08.026
39. Bruña V, Velásquez-Rodríguez J, Valero-Masa
MJ, Pérez-Guillem B, Vicent L, Díez-Delhoyo F, Devesa
C, Sousa-Casasnovas I, Juárez M, Bayés de Luna A, BayésGenís A, Baranchuk A, Fernández-Avilés F, MartínezSellés M. Prognostic of interatrial block after an acute
ST-segment elevation myocardial infarction. Cardiology
Journal. 2019;142(2):109-115. DOI: 10.1159/000499501
40. Baturova MA, Lindgren A, Shubik YV, Carlson
J, Platonov PG. Interatrial block in prediction of allcause mortality after first-ever ischemic stroke. BMC
Сardiovascular Disorders. 2019;19(1):37. DOI: 10.1186/
s12872-019-1015-5
41. Sohn SH, Kim KH, Kang Y, Kim JS, Choi JW.
Recovery From Conduction Abnormalities After Aortic
Valve Replacement Using Edwards Intuity. The Annals of
Thoracic Surgery. 2021;112(4):1356-1362. DOI: 10.1016/j.
athoracsur.2021.04.036
42. Coti I, Schukro C, Drevinja F, Haberl T, Kaider A,
Kocher A, Laufer G, Andreas M. Conduction disturbances
following surgical aortic valve replacement with a rapiddeployment bioprosthesis The Journal of Thoracic and
Cardiovascular Surgery. 2021;162(3):803-811. DOI:
10.1016/j.jtcvs.2020.01.083
43. Mogilansky C, Balan R, Deutsch C, Czesla M,
Massoudy P. New postoperative conduction abnormalities
after the implantation of a rapid-deployment aortic
valve prosthesis. Interactive Cardiovascular and Thoracic
Surgery. 2019;28(4):581-586. DOI: 10.1093/icvts/ivy307
44. Herry M, Laghlam D, Touboul O, Nguyen LS,
Estagnasié P, Brusset A, Squara P. Pacemaker implantation
after aortic valve replacement: rapid-deployment Intuity
compared to conventional bioprostheses. European
Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 2020;58(2):335-342.
DOI: 10.1093/ejcts/ezaa068
45. Andreas M, Coti I, Rosenhek R, Shabanian
S, Mahr S, Uyanik-Uenal K, Wiedemann D, Binder T,
Kocher A, Laufer G. Intermediate-term outcome of
500 consecutive rapid-deployment surgical aortic valve
procedures. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery.
2019;55(3):527-533. DOI: 10.1093/ejcts/ezy273
46. Sohn SH, Hwang HY. Permanent pacemaker
implantation is never a benign complication after
aortic valve replacement. Journal of Thoracic Disease.
2018;10(33):4080-4081. DOI: 10.21037/jtd.2018.09.107

Проведен обзор литературы, посвященный вопросам прогнозирования тяжести перитонита. Обзор проведен по следующим базам данных: Pub Med, Scopus за период с 2009 года по 2021 год по следующим ключевым словам: распространенный перитонит, санация брюшной полости, прогностическая шкала, лапароскопия, лапаротомия. Ранняя прогностическая оценка тяжести распространенного перитонита во многом
определяет хирургическую тактику, а также позволяет предсказать течение и исход заболевания. В статье рассматриваются наиболее распространенные шкалы оценки тяжести перитонита, анализируются их преимущества и недостатки, возможности применения. Описывается собственная
шкала, которая на основании показателей оксидативного стресса и маркеров воспаления позволяет оценить необходимость лапароскопической
санации брюшной полости при распространенном перитоните и спрогнозировать ее эффективность. Необходимо проведение дальнейших исследований для оценки информативности прогностических шкал оценки тяжести перитонита при различных способах санации брюшной полости.

1. Курбонов КМ, Назирбоев КР, Полвонов ШБ,
Ёров СК. Радикальное удаление источника распространённого перитонита у больных с заболеваниями полых
органов. Вестник Авиценны. 2016;(69):24-28. [Kurbonov
KM, Nazirboev KR, Polvonov SHB, YOrov SK. Radical
removal of a source of disseminated peritonitis in patients with
diseases of hollow organs. Avicenna Bulletin. 2016;(69):24-
28. (In Russian)]
2. Савельев ВС, Филимонов МИ, Подачин ПВ,
Ступин ВА. Релапаротомия в хирургии распространенного перитонита. Инфекции в хирургии. 2007;(3):6-
13. [Savel'ev VS, Filimonov MI, Podachin PV, Stupin VA.
Relaparotomy in surgery for diffuse peritonitis. Infections in
Surgery. 2007;(3):6-13. (In Russian)]
3. Kiewiet, JJ, Van Ketel RJ, Boermeester МА.
Initial microbial spectrum in severe secondary peritonitis
and relevance fortreatment. European Journal of Clinical
Microbiology and Infectious Diseases. 2012;(31):671-682.
4. Савельев ВС, Гельфанд БР, Филимонов МИ, Подачин ПВ, Сергеева НА. Критерии выбора эффективной
тактики хирургического лечения распространенного
перитонита. Анналы хирургии. 2013;(2):48-54. [Savel'ev
VS, Gel'fand BR, Filimonov MI, Podachin PV, Sergeeva
NA. Criteria for the selection of effective surgical treatment
of widespread peritonitis. Russian Annals of Surgery.
2013;(2):48-54. (In Russian)]
5. Изимбергенов НИ, Койшибаев АС, Изимбергенова ГН, Каримова БЖ, Иманбаев КС, Садуов МА,
Мухамедгалиева БМ. Малоинвазивная хирургия распространённого перитонита, осложнённого абдоминальным сепсисом. Вестник хирургии имени И.И. Грекова. 2014;(2):42-46. [Izimbergenov NI, Koyshibaev AS,
Izimbergenova GN, Karimova BZh, Imanbaev KS, Saduov
MA, Mukhamedgalieva BM. Low-invasive surgery of diffuse
peritonitis complicated by abdominal sepsis. Grekov's Bulletin
of Surgery. 2014;(2):42-46. (In Russian)]
6. Сыкал НА. Программированная лапароскопия
в лечении перитонита. Медицина неотложных состояний. 2013;(8):26-28. [Sykal NA. Programmed laparoscopy in
the treatment of peritonitis. Emergency Medicine. 2013(8):26-
28. (In Russian)]
7. Салахов ЕК, Власов АП. Программированные лапароскопические санации брюшной полости
у больных с распространёнными формами перитонита. Фундаментальные исследования. 2014;(4):158-
162. [Salahov EK, Vlasov AP. Programmed laparoscopic
readjustment abdominal cavity in patients with advanced
forms of peritonitis. Fundamental Research. 2014;(4):158-
162. (In Russian)]
8. Ивахов ГБ, Сажин АВ, Ермаков ИВ. Лапароскопическая хирургия распространенного аппендикулярного перитонита. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2020;(5):20-26. [Ivahov GB, Sazhin AV, Ermakov
IV. Laparoscopic surgery for advanced appendicular
peritonitis. Pirogov Russian Journal of Surgery. 2020;(5):20-
26. (In Russian)]
9. Гостищев ВК, Сажин ПВ, Авдовенко АЛ. Перитонит. М.: ГЭОТАР-МЕД. 2002; 240с. [Gostishchev
VK, Sazhin PV, Avdovenko AL. Peritonitis. M.: GEOTARMED. 2002; 240p. (In Russian)]
10. Ruler О van, Boermeester МА. Surgical treatment
of secondary peritonitis: A continuing problem. German
version. Der Chirurg. 2016;(1):13-19.
11. Сандаков ПЯ, Старикова АИ. Определение показаний к релапаротомии при распространенном перитоните. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2014;(4):16-
19. [Sandakov PYA, Starikova AI. Definition of indications
for relaparotomy in generalized peritonitis. Pirogov Russian
Journal of Surgery. 2014;(4):16-19. (In Russian)]
12. Wacha H, Linder ММ, Feldman U. Mannheim
peritonitis index-prediction of risk of death from peritonitis: Construction of a statistical and validation of an empirically
based index. Theoretical Surgery. 1987;(1.4):169-177.
13. Demmel K, Maag, G, Osterholzer N. Wertigkeit
klinischer Parameter zur Prognosebeurteilung der PeritonitisValidierung des Mannheimer Peritonitis-Index. Langenbecks
Archiv für Chirurgie. 1994;(379.3):152-8.
14. Gueiros LDSC, Fonseca MDA, Duarte NMDM,
Antunes OS. Mannheim's peritonitis index in the prediction
of postoperative outcome of peritonitis. Revista do Colégio
Brasileiro de Cirurgiões. 2022;(49):e20222991.
15. Shakya VC, Pangeni А, Karki S, Sharma LR.
Evaluation of Mannheim's Peritonitis Index in Prediction
of Mortality in Patients with Non-traumatic Hollow Viscus
Perforation Peritonitis. Journal of Nepal Health Research
Council. 2021;(19.1):179-184.
16. Karki OB, Hazra NK, Timilsina B, Kunwar D.
Effectiveness of Mannheim Peritonitis Index in Predicting
the Morbidity and Mortality of Patients with Hollow
Viscus Perforation. Kathmandu University Medical Journal
(KUMJ). 2018;(16.64):296-300. 
17. Sharma R, Ranjan V, Jain S, Joshi T, Tyagi A,
Chaphekar RA. A prospective study evaluating utility of
Mannheim peritonitis index in predicting prognosis of
perforation peritonitis. Journal of Natural Science, Biology
and Medicine. 2015;6(1):49-52.
18. Kologlu M, Elker D, Altun H, Sayek I. Validation
of MPI and PIA II in two different groups of patients
with secondary peritonitis. Hepatogastroenterology.
2001;(48.37):147-51.
19. Malik AA, Wani К.А, Dar LA, Wani MA, Parray FQ.
Mannheim Peritonitis Index and APACHE II - prediction
of outcome in patients with peritonitis. Ulus Travma Acil
Cerrahi Derg. 2010;(16):27-32.
20. Pusajó J.F, Bumaschny FE, Doglio GR, Cherovsky
MR,Lipinszki AI, Hernandez MS, Equrrola MA. Postoperative
intra-abdominal sepsis requiring reoperation. Value of a
predictive index. Archives of Surgery. 1993;(128.2):218-222.
21. Gauzit R, Péan Y, Barth Х, Mistretta F, Lalaude O.
Epidemiology, management and prognosis of secondary nonpostoperative peritonitis: a French prospective observational
multicenter study. Surgical Infections. 2009;(2):119-127.
22. Koperna T, Schulz F. Relaparotomy in peritonitis:
prognosis and treatment of patients with persisting
intraabdominal infection. World Journal of Surgery.
2000;(24.1):32-37.
23. Vincent JL, de Mendonca A, Cantraine F,
Moreno R, Takala J, Suter PM, Sprung CL, Colardyn F,
Blecher S. Use of the SOFA score to assess the incidence
of organ dysfunction/failure in intensive care units:
results of a multicenter, prospective study. Working
group on sepsis-related problems of the European Society
of Intensive Care Medicine. Critical Care Medicine.
1998;26(11):1793-1800.
24. Sawayama H, Tomiyasu S, Kanemitsu К,
Matsumoto T, Tanaka H, Baba H. Colonic perforation due
to colorectal cancer: predicting postoperative organ failure
with a preoperative scoring system and selecting the optimal
surgical method based on the prognosis. Surgery Today.
2012;(42.11):1082-7.
25. Peres Bota D, Melot С, Ferreira FL, Ba VN, Vincent
J-L. The Multiple Organ Dysfunction Score (MODS)
versus the Sequential Organ Failure Assessment (SOFA)
score in outcome prediction. Intensive Care Medicine.
2002;(28.11):1619-24. 
26. Scriba M.F, Laing G.LJ, Bruce L, Sartorius B, Clarke
DL. The Role of Planned and On-Demand Relaparotomy
in the Developing World. World Journal of Surgery.
2016;(40.7):1558-64.
27. Nag DS, Dembla А, Mahanty PR, Kant S,
Chatterjee A, Samaddar DP, Chugh P. Comparative
analysis of APACHE-II and P-POSSUM scoring systems in
predicting postoperative mortality in patients undergoing
emergency laparotomy. World Journal of Clinical Cases.
2019;(716):2227-2237.
28. Sartelli M, Abu-Zidan FM, Catena F, Griffiths, E A,
Di Saverio S, Coimbra R, Ordonez C A, Leppaniemi A, Fraga
GP, Coccolini F, Agresta F, Abbas A, Kader SA, Agboola J,
Amhed A, Ajibade A, Akkucuk S, Alharthi B, Anyfantakis
D, Augustin G, Baiocchi G, Bala M, Baraket O, Bayrak S,
Bellanova G, Beltran MA, Bini R, Boal M, Borodach AV,
Bouliaris K, Branger F, Brunelli D, Catani M, Jusoh AC,
Chichom-Mefire A, Cocorullo G, Colak E, Costa D, Costa S,
Cui Y, Curca GL, Curry T, Das K, Delibegovic S, Demetrashvili
Z, Di Carlo I, Drozdova N, El Zalabany T, Enani MA, Faro
M, Gachabayov M, Gimenez Maurel T, Gkiokas G, Gomes
CA, Teixeira Gonsaga RA, Guercioni G, Guner A, Gupta S,
Gutierrez S, Hutan M, Ioannidis O, Isik A, Izawa Y, Jain SA,
Jokubauskas M, Karamarkovic A, Kauhanen S, Kaushik R,
Kenig J, Khokha V, Il Kim J, Kong V, Koshy R, Krasniqi A,
Kshirsagar A, Kuliesius Z, Lasithiotakis K, Leao P, Lee JG,
Leon M, Lizarazu Perez A, Lohsiriwat V, Lopez-Tomassetti
Fernandez E, Lostoridis E, Mn R, Major P, Marinis A, Marrelli
D, Martinez-Perez A, Marwah S, McFarlane M, Melo RB,
Mesina C, Michalopoulos N, Moldovanu R, Mouaqit O,
Munyika A, Negoi I, Nikolopoulos I, Nita GE, Olaoye I,
Omari A, Rodriguez Ossa P, Ozkan Z, Padmakumar R,
Pata F, Pereira Junior GA, Pereira J, Pintar T, Pouggouras K,
Prabhu V, Rausei S, Rems M, Rios-Cruz D, Sakakushev B,
Luisa Sanchez de Molina M, Seretis C, Shelat V, Simoes RL,
Sinibaldi G, Skrovina M, Smirnov D, Spyropoulos C, Tepp J,
Tezcaner T, Tolonen M, Torba M, Ulrych J, Uzunoglu MY,
van Dellen D, van Ramshorst GH, Vasquez G, Venara A,
Vereczkei A, Vettoretto N, Vlad N, Yadav SK , Yilmaz TU,
Yuan K-C, Zachariah SK, Zida M, Zilinskas J, Ansaloni
L. Global validation of the WSES Sepsis Severity Score for
patients with complicated intra-abdominal infections: a
prospective multicentre study (WISS Study). World Journal
of Emergency Surgery. 2015;(10.1):1-8.
29. Sartelli M, Abu-Zidan FM, Labricciosa FM, Kluger
Y, Coccolini F, Ansaloni L, Leppäniemi A, Kirkpatrick AW,
Tolonen M, Trana C, Regimbeau J-M, Hardcastle T, Koshy
RM, Abbas A, Aday U, Adesunkanmi ARK, Ajibade A,
Akhmeteli L, Akin E, Akkapulu N, Alotaibi A, Altintoprak
F, Anyfantakis D, Atanasov B, Augustin G, Azevedo C, Bala
M, Balalis D, Baraket O, Baral S, Barkai O, Beltran M, Bini
R, Bouliaris K, Caballero AB, Calu V, Catani M, Ceresoli M,
Charalampakis V, Jusoh AC, Chiarugi M, Cillara N, Cobos
Cuesta R, Cobuccio L, Cocorullo G, Colak E, Conti L, Cui Y, De Simone B, Delibegovic S, Demetrashvili Z, Demetriades
D, Dimova A, Dogjani A, Enani M, Farina F, Ferrara F,
Foghetti D, Fontana T, Fraga GP, Gachabayov M, Gerard
G, Ghnnam W, Gimenez Maurel T, Gkiokas G, Gomes
CA, Guner A, Gupta S, Hecker A, Hirano ES, Hodonou A,
Hutan M, Ilaschuk I, Ioannidis O, Isik A, Ivakhov G, Jain
S, Jokubauskas M, Karamarkovic A, Kaushik R, Kenig J,
Khokha V, Khokha D, Kim JI, Kong V, Korkolis D, Kruger
VF, Kshirsagar A, Simoes RL, Lanaia A, Lasithiotakis K,
Leao P, Leon Arellano M, Listle H , Litvin A, Lizarazu Perez
A, Lopez-Tomassetti Fernandez E, Lostoridis E, Luppi D,
Machain GM, Major P, Manatakis D, Reitz MM, Marinis
A, Marrelli D, Martinez-Perez A, Marwah S, McFarlane M,
Mesic M, Mesina C, Michalopoulos N, Misiakos E, Moreira
FG, Mouaqit O, Muhtaroglu A, Naidoo N, Negoi I, Nikitina
Z, Nikolopoulos I, Nita G-E, Occhionorelli S, Olaoye I,
Ordonez CA, Ozkan Z, Pal A, Palini GM, Papageorgiou K,
Papagoras D, Pata F, Pedziwiatr M, Pereira J, Pereira Junior
GA, Perrone G, Pintar T, Pisarska M, Plehutsa O, Podda M,
Poillucci G, Quiodettis M, Rahim T, Rios-Cruz D, Rodrigues
G, Rozov D, Sakakushev B, Sall I, Sazhin A, Semiao M, Sharda
T, Shelat V, Sinibaldi G, Skicko D, Skrovina M, Stamatiou D,
Stella M, Strzalka M, Sydorchuk R, Gonsaga RAT, Tochie JN,
Tomadze G, Ugoletti L, Ulrych J, Umarik T, Uzunoglu MY,
Vasilescu A, Vaz O, Vereczkei A, Vlad N, Waledziak M, Yahya
AI, Yalkin O, Yilmaz TU, Unal AE, Yuan K-C, Zachariah SK,
Zilinskas J, Zizzo M, Pattonieri V, Baiocchi GL, Catena F.
Physiological parameters for Prognosis in Abdominal Sepsis
(PIPAS) Study: a WSES observational study. World Journal of
Emergency Surgery. 2019;(14.1):1-11.
30. Nassar A.P, Malbouisson LMS, Moreno R.
Evaluation of Simplified Acute Physiology Score 3
performance: a systematic review of external validation
studies. Critical Care. 2014;(18.3):117.
31. van Ruler О, Kiewiet JJS, Boer KR, Lamme
B, Gouma DJ, Boermeester MA, Reitsma JB. Failure of
available scoring systems to predict ongoing infection in
patients with abdominal sepsis after their initial emergency
laparotomy. BMC Surgery. 2011;(298.11):38-45.
32. Арутюнян А.С, Благовестнов ДА, Ярцев ПА, Гуляев АА, Левисткий ВД, Самсонов ВТ, Яковлева ДМ. Лапароскопический доступ в лечении распространенного
аппендикулярного перитонита-возможности метода
и его безопасность. Рандомизированное клиническое
исследование. Вестник новых медицинских технологий. 2021;(28.4):21-25. [Arutyunyan A.S, Blagovestnov
DA, YArcev PA, Gulyaev AA, Levistkij VD, Samsonov VT,
YAkovleva DM. Laparoscopic approach in the treatment of
widespread appendicular peritonitis - the possibilities of the
method and its safety. Randomized clinical trial. Journal of
New Medical Technologies. 2021;(28.4):21-25. (In Russian)]
33. Салахов Е.К, Власов АП, Болотских ВА. Прогностические критерии эффективности лапароскопической программированной санации брюшной полости
при перитоните. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова.
2017;(10):57-60. [Salahov E.K, Vlasov AP, Bolotskih VA.
Prognostic criteria of efficacy of programmed laparoscopic
sanitation of the abdominal cavity in peritonitis. Pirogov
Russian Journal of Surgery. 2017;(10):57-60. (In Russian)]

Анкилозирующий спондилит (АС) или болезнь Бехтерева(ББ)— это аутоиммунное заболевание, относящееся к группе ревматических,
поражающее суставы позвоночного столба, крестцово-подвздошное сочленение и прилегающие к ним мягкие ткани, в результате чего могут возникать миалгии, тендениты и энтезопатии. При прогрессировании и неэффективности лечения заболевание может привести к фиброзу и кальцификации, что приводит к потере гибкости и сращению позвоночника, напоминающего “бамбук”. Основные клинические проявления включают
боль в спине и прогрессирующее снижение подвижности суставов позвоночника, а также воспаление тазобедеренных и плечевых суставов, периферических суставов и пальцев рук/ног. Кроме того, существуют внесуставные проявления, такие как острый передний увеит и воспалительные
заболевания кишечника (ВЗК). Как любое аутоиммунное заболевание, оно развивается в результате сложных взаимосвязей между генетическим
фоном и факторами окружающей среды. Хотя за последние десятилетия был достигнут значительный прогресс в изучении ББ, этиология остается до конца неизвестной. На сегодняшний день исследования выявили несколько факторов, тесно связанных с возникновением АС, включая
генетику, иммунные реакции, микробные инфекции и влияние эндокринной системы.

1. Águeda AF, Monti S, Luqmani RA, Buttgereit F,
Cid M, Dasgupta B. Management of Takayasu arteritis:
a systematic literature review informing the 2018 update
of the EULAR recommendation for the management of
large vessel vasculitis. RMD Open. 2019 5:e001020. DOI:
10.1136/rmdopen-2019-001020
2. Zhang L, Zhang Y, Chen J, Huang X, Fang G,
Yang L, Duan Y, Wang J. The association of HLA-B27
and Klebsiella pneumoniae in ankylosing spondylitis: a
systematic review. Microbial Pathogenesis. 2018;(117):49–
54. DOI: 10.1016/j.micpath.2018.02.020
3. Faham M, Carlton V, Moorhead M, JZheng
J, Klinger M, Pepin F, Asbury T, Vignali M, Emerson
R, Robins H, Ireland J, Baechler-Gillespie E, Inman
R. Discovery of T cell receptor beta motifs specific
to HLA-B27-positive ankylosing spondylitis by deep
repertoire sequence analysis. Arthritis and Rheumatology.
2017;(69):774–784. DOI: 10.1002/art.40028
4. van der Heijde D, Cheng-Chung Wei J,
Dougados M, Mease P, Deodhar A, Maksymowych WP,
et al.. Ixekizumab, an Interleukin-17A Antagonist in the
Treatment of Ankylosing Spondylitis or Radiographic
Axial Spondyloarthritis in Patients Previously Untreated
With Biological Disease-Modifying Anti-Rheumatic
Drugs (COAST-V): 16 Week Results of a Phase 3
Randomised, Double-Blind, Active-Controlled and
Placebo-Controlled Trial. Lancet. 2018; 392(10163):2441–
51. DOI: 10.1016/S0140-6736(18)31946-9
5. Chen B, Li J, He C, Li D, Tong W, Zou Y, Xu W. Role
of HLA-B27 in the pathogenesis of ankylosing spondylitis
(review). Molecular Medicine Reports. 2017;(15):1943–
1951. DOI: 10.3892/mmr.2017.6248
6. Dulic S, Vasarhelyi Z, Bajnok A, Szalay B,
Toldi G, Kovacs L, Balog A. The Impact of Anti-TNF
Therapy on CD4+ and CD8+ Cell Subsets in Ankylosing
Spondylitis. Pathobiology. 2018. 85(3):201–10. DOI:
10.1159/000484250
7. Ranganathan V, Gracey E, Brown MA, Inman
RD, Haroon N. Pathogenesis of ankylosing spondylitis—
recent advances and future directions. Nature Reviews
Rheumatology. 2017;(13):359–367. DOI: 10.1038/
nrrheum.2017.56
8. Brown MA, Kenna T, Wordsworth BP. Genetics
of ankylosing spondylitis–insights into pathogenesis.
Nature Reviews Rheumatology. 2016;(12):81–91. DOI:
10.1038/nrrheum.2015.133
9. Ellinghaus D. Analysis of five chronic
inflammatory diseases identifies 27 new associations and
highlights disease-specific patterns at shared loci. Nature
Genetics. 2016;(48):510–518. DOI: 10.1038/ng.3528
10. Wei JC, Chen HH, Hsieh TY, Lan HH, Tseng
JC, Liu CH, Chen YC, Tsai WC, Wu H H, Chou
CT. Clinical Practice Recommendations for the Use
of Imaging in the Diagnosis and Management of Axial
Spondyloarthritis in Taiwan. International Journal
Rheumatologic Disease. 2020; 23(1):24–36. DOI: 
10.1111/1756-185X.13679
11. Mahmoudi M, Aslani S, Nicknam MH, Karami
J, Jamshidi AR. New insights toward the pathogenesis of
ankylosing spondylitis; genetic variations and epigenetic
modifications. The Journal of Rheumatology. 2017;(27):
198–209. DOI: 10.1080/14397595.2016.1206174
12. Granja JM, Corces MR, Pierce SE, Bagdatli ST,
Choudhry H, Chang HY. Author Correction: ArchR is
a Scalable Software Package for Integrative Single-Cell
Chromatin Accessi Bility Analysis. Nat Genet. 2021;(53):6–
935. DOI: 10.1038/s41588-021-00850-x
13. Babaie F, Hasankhani M, Mohammadi H,
Safarzadeh E, Rezaiemanesh A, Salimi R, Baradaran B,
Babaloo Z. The role of gut microbiota and IL-23/IL-17
pathway in ankylosing spondylitis immunopathogenesis:
new insights and updates. Immunology Letters.
2018;(196):52–62. DOI: 10.1016/j.imlet.2018.01.014
14. Wang X, He Y, Zhang Q, Ren X, Zhang
Z. Direct Comparative Analyses of 10X Genomics
Chromium and Smart-Seq2. Genomics Proteomics
Bioinformatics. 2021. (19):253–66. DOI: 10.1016/j.
gpb.2020.02.005
15. Rezaiemanesh A, Abdolmaleki M,
Abdolmohammadi K, Aghaei H, Pakdel F, Fatahi Y,
Soleimanifar N, Zavvar M, Nicknam M. Immune cells
involved in the pathogenesis of ankylosing spondylitis.
Biomedicine and Pharmacotherapy. 2018; (100):198–204.
DOI: 10.1016/j.biopha.2018.01.108
16. Robinson PC, van der Linden S, Khan MA,
Taylor WJ. Axial Spondyloarthritis: Concept, Construct,
Classification and Implications for Therapy. Nature
Reviews Rheumatology. 2021; (17):2–109. DOI: 10.1038/
s41584-020-00552-4
17. Shi H, Chen L, Ridley A, Zaarour N, Brough I, Caucci
C. GM-CSF Primes Proinflammatory Monocyte Responses
in Ankylosing Spondylitis. Frontiers in Immunology. 2020;
(11):1520. DOI: 10.3389/fimmu.2020.01520
18. Trop-Steinberg S, Azar Y. AP-1 Expression and its
Clinical Relevance in Immune Disorders and Cancer. The
American Journal of the Medical Sciences. 2017; (353):5–
474. DOI: 10.1016/j.amjms.2017.01.019
19. Li H, Chen Y, Zhang J, Lin Y, Yang Z, Tan J, et
al.. Identification of the Internal Ribosome Entry Sites
in the 5’−Untranslated Region of the C−Fos Gene.
International Journal of Molecular Medicine. 2021; (47):4–
1. DOI: 10.3892/ijmm.2021.4889
20. Hoover AR, Liu K, Devette CI, Krawic JR, Chen
WR. ScRNA-Seq Reveals Tumor Microenvironment
Remodeling Induced by Local InterventionBased Immunotherapy. bioRxiv. 2020. DOI:
10.1101/2020.10.02.323006
21. Quaden DH, de Winter LM, Somers V. Detection
of novel diagnostic antibodies in ankylosing spondylitis: an overview. Autoimmunity Reviews. 2016;(15):820–832.
DOI: 10.1016/j.autrev.2016.06.001
22. American College of Rheumatology Releases
New Ankylosing Spondylitis & Non-Radiographic Axial
Spondyloarthritis Treatment Recommendations; 2015.
Available from: https://www.rheumatology.org/About-Us/
Newsroom/Press-Releases/ID/679 Accessed September 4,
2019.
23. Simone D, Al Mossawi MH, Bowness P. Progress
in our understanding of the pathogenesis of ankylosing
spondylitis. 2018. Rheumatology (Oxford). 2018; 57(6):vi4-
vi9. DOI: 10.1093/rheumatology/key001
24. Han R, Xia Q, Xu S, Fan D, Pan F. Interleukin-23
receptor polymorphism (rs10889677 A/C) in ankylosing
spondylitis: meta-analysis in Caucasian and Asian
populations. Clinica Chimica Acta. 2018; (477): 53–59.
25. Zhang L, Zhang YJ, Chen J, Huang XL, Fang GS,
Yang LJ, Duan Y, Wang J. The association of HLA-B27 and
Klebsiella pneumoniae in ankylosing spondylitis: a systematic
review. Microbial Pathogenesis. 2018; (117):49–54.
26. Dashti N, Mahmoudi M, Aslani S, Jamshidi
A. HLA-B*27 subtypes and their implications in the
pathogenesis of ankylosing spondylitis. Gene. 2018;
(670):15–21.
27. Lim Kam Sian TCC, Indumathy S, Halim H,
Greule A, Cryle MJ, Bowness P, Rossjohn J, Gras S, Purcell
AW, Schittenhelm RB. Allelic association with ankylosing
spondylitis fails to correlate with human leukocyte
antigen B27 homodimer fomration. Journal of Biological
Chemistry. 2019; (294):20185–20195.
28. Cortes A, Gladman D, Raychaudhuri S, Cui J,
Wheeler L, Brown MA. Imputation-based analysis of MICA
alleles in the susceptibility to ankylosing spondylitis. Annals
of the Rheumatic Diseases. 2018; (77): 1691–1692.
29. Tang Y, Yang P, Wang F, Xu H, Zong SY. Association
of polymorphisms in ERAP1 and risk of ankylosing
spondylitis in a Chinese population. Gene. 2018; (646):8–11.
30. Ruan WF, Xie JT, Jin Q, Wang WD, Ping
AS. The diagnostic and prognostic role of interleukin
12B and interleukin 6R gene polymorphism in
patients with ankylosing spondylitis. Journal of Clinical
Rheumatology. 2018; (24):18–24.
31. Zhai Z, Wang Z, Wang L, Chen S, Ren H,
Wang D. Relationship between inducible NOS singlenucleotide polymorphisms and hypertension in Han
Chinese. Herz. 2018; (43):461–465.
32. Aita A, Basso D, Ramonda R, Moz S, Lorenzin
M, Navaglia F, Zambon CF, Padoan A, Plebani M, Punzi
L. Genetics in TNF-TNFR pathway: A complex network
causing spondyloarthritis and conditioning response to
anti-TNFα therapy. 2018. PLoS One 13.
33. Park JS, Hong JY, Park YS, Han K, Suh SW. Trends
in the prevalence and incidence of ankylosing spondylitis
in South Korea, 2010-2015 and estimated differences
according to income status. Scientific Reports. 2018;
(8):7694.
34. Zhang H, Wan W, Liu J, Dai S, Zou Y, Qian Q, Ding
Y, Xu X, Ji H, He H, Zhu Q, Yang C, Ye S, Jiang L, Tang J, Tong
Q, He D, Zhao D, Li Y, Ma Y, Zhou J, Mei Z, Chen X, Yuan
Z, Zhang J, Wang X, Yang Y, Jin L, Gao Y, Zhou X, Reveille
JD, Zou H, Wang J. Smoking quantity determines disease
activity and function in Chinese patients with ankylosing
spondylitis. Clinical Rheumatology. 2018; (37):1605–1616.
35. Zhu W, He X, Cheng K, Zhang L, Chen D, Wang
X, Qiu G, Cao X. Weng X. Ankylosing spondylitis: etiology,
pathogenesis, and treatments. Bone Research. 2019; (7):22. 
36. Reveille JD, Zhou X, Lee M, Weisman MH, Yi L,
Gensler LS, Zou H, Ward MM, Ishimori ML, Learch TJ,
He D, Rahbar MH, Wang J, Brown MA. HLA class I and
II alleles in susceptibility to ankylosing spondylitis. Annals
of the Rheumatic Diseases. 2019; (78):66–73.
37. Lim Kam Sian TCC, Indumathy S, Halim H,
Greule A, Cryle MJ, Bowness P, Rossjohn J, Gras S, Purcell
AW, Schittenhelm RB. Allelic association with ankylosing
spondylitis fails to correlate with human leukocyte
antigen B27 homodimer fomration. Journal of Biological
Chemistry. 2019; (294):20185–20195.
38. Sahlberg AS, Ruuska M, Colbert RA, Granfors
K, Penttinen MA. Altered PKR signalling and C/EBPβ
expression is associated with HLA-B27 expression in
monocytic cells. Scandinavian Journal of Immunology.
2019; (75):184–192.
39. Liu J, Pu W, Li Y, Ma Y, Zhu Q, Wan W, Yang
C, Wang X, Chen X, Zhou X, Reveille JD, Jin L, Zou H,
Wang J. Genetic association of non-MHC region with
ankylosing spondylitis in a Chinese population. Annals of
the Rheumatic Diseases. 2019; (78):852–853.
40. Yuan Y, Ma Y, Zhang X, Han R, Hu X, Yang J,
Wang M, Guan SY, Pan G, Xu SQ, Jiang S, Pan F. Genetic
polymorphisms of G protein-coupled receptor 65 gene are
associated with ankylosing spondylitis in a Chinese Han
population: a case-control study. Human Immunology.
2019; (80):146–150.
41. Asquith M, Sternes PR, Costello ME, Karstens
L, Diamond S, Martin TM, Li Z, Marshall MS, Spector
TD, Cao KA, Rosenbaum JT, Brown MA. HLA Alleles
Associated With Risk of Ankylosing Spondylitis and
Rheumatoid Arthritis Influence the Gut Microbiome.
Arthritis and Rheumatology. 2019; (71):1642–1650.
42. Breban M, Beaufrère M, Glatigny S. The
microbiome in spondyloarthritis. Best Practice and
Research: Clinical Rheumatology. 2019; (33):101495.
43. Cuthbert RJ, Watad A, Evangelos M, Fragkakis
EM, Dunsmuir R, Loughenbury P, Almas K, Millner P,
Davison A, Marzo-Ortega H, Newton D, Bridgewood
C, McGonalde D. Evidence that tissue resident human
enthesis γδT-cells can produce IL-17A independently of
IL-23R transcript expression. Annals of the Rheumatic
Diseases. 2019; (78):1559–1565.
44. Nikiphorou E, Ramiro S, Sepriano A, RuyssenWitrand A, Landewé RBM, van der Heijde D. Do smoking
and socioeconomic factors influence Imaging Outcomes in
Axial Spondyloarthritis? Five-Year Data From the DESIR
Cohort. Arthritis and Rheumatology. 2020; (72):1855–1862.
45. Sharif K, Bridgewood C, Dubash S, McGonagle
D. Intestinal and enthesis innate immunity in early
axial spondyloarthropathy. Rheumatology (Oxford).
2020;59(4):iv67-iv78.46. Gracey E, Yao Y, Qaiyum Z, Lim M, Tang M, Inman
RD. Altered cytotoxicity profile of CD8+ T cells in ankylosing
spondylitis. Arthritis and Rheumatology. 2020; (72):428–434.
47. Jah N, Jobart-Malfait A, Emroza K, Noteuil A,
Chiocchia G, Breban M, André C. HLA–B27 Subtypes
Predisposing to Ankylosing Spondylitis Accumulate
in an Endoplasmic Reticulum–Derived Compartment
Apart From the Peptide-Loading Complex. Arthritis and
Rheumatology.2020; (72):1534–1546.
48. Huang XF, Li Z, De Guzman E, Robinson P, Gensler
L, Ward MM, Rahbar M H, Lee M, Weisman M, Macfarlane G,
Jones G, Klinberg E, Forsblad-d'Elia H, McCluskey P, Wakefield
D, Coombes J, Fiatarone Singh M, Mavros Y, Vlahovich N,
Hughes D, Marzo-Ortega H, Van der Horste-Bruinsma I,
Rosenbaum J, Breban M, Jin Z, Leo P, Reveille J, Wordsworth
P, Brown M. Genomewide association study of acute anterior
uveitis indentifies new susceptibility loci. Investigative
Ophthalmology and Visual Science. 2020; (61):3.
49. Yin J, Stemes PR, Wang M, Song J, Morrison
M, Li T, Zhou L, Wu X, He F, Zhu J, Brown MA, Xu
H. Shotgun metagenomics reveals an enrichment of
potentially crossreactive bacterial epitopes in ankylosing
spondylitis patients, as well as the effects of TNFi therapy
upon microbiome composition. Annals of the Rheumatic
Diseases. 2020; (79):132–140.
50. Ritchlin C, Adamopoulos IE. Axial
Spondyloarthritis: New Advances in Diagnosis and
Management. BMJ. 2021. (4):372. DOI: 10.1136/bmj.m4447
51. Rezaiemanesh A, Abdolmaleki M,
Abdolmohammadi K, Aghaei H, Pakdel FD, Fatahi
Y. Immune Cells Involved in the Pathogenesis of Ankylosing
Spondylitis. Biomedicine and Pharmacotherapy. 2018;
(100):198–204. DOI: 10.1016/j.biopha.2018.01.108
52. Yu H, Wu H, Zheng F, Zhu C, Yin L, Dai W,
LiuD, Tang D, Hong X, DaiY. Gene-Regulatory Network
Analysis of Ankylosing Spondylitis With a Single-Cell
Chromatin Accessible as Say. Scientific Reports. 2020;
(10):1–19411. DOI: 10.1038/s41598-020-76574-5
53. Watad A, Bridgewood C, McGonagle DG. Response
to: ‘Correspondence to ‘Normal Human Enthesis Harbours
Conventional CD4+ and CD8+ T Cells Wi Th Regulatory
Features and Inducible IL-17A and TNF Expression’’ by
Wang and Ma. Annals of the Rheumatic Diseases. 2022; 81
(12):e 255. DOI: 10.1136/annrheumdis-2020-219047
54. Gracey E, Yao Y, Qaiyum Z, Lim M, Tang M,
Inman RD. Altered Cytotoxicity Profile of CD8+ T Cells
in Ankylosing Spondylitis. Arthritis Rheumatology. 2020;
(72):3–428. DOI: 10.1002/art.41129
55. Nakamura A, Boroojeni SF, Haroon N. Aberrant
Antigen Processing and Presentation: Key Pathogenic
Factors Leading to Immune Activation in Ankylosing
Spondylitis. Seminars Immunopathology. 2021; (43):2–
245. DOI: 10.1007/s00281-020-00833-w
56. Xie Y, Yang KH, Lyu Q, Zheng Y, Huang CB,
Li ZB. Practice Guideline for Patients With Ankylosing
Spondylitis/Spondyloarthritis. Chinese Journal of
Internal Medicine. 2020; (59):7–511. DOI: 10.3760/
cma.j.cn112138-20200505-00448
57. Ranzoni AM, Tangherloni A, Berest I, Riva SG,
Myers B, Strzelecka PM. Integrative Single-Cell RNASeq and ATAC-Seq Analysis of Human Developmental
Hematopoiesis. Cell Stem Cell. 2021; (28):3–472. DOI:
10.1016/j.stem.2020.11.015

Несмотря на общемировую тенденцию к снижению показателей заболеваемости и смертности от новой коронавирусной инфекции, во
многих странах продолжается регистрация новых эпизодов COVID-19. Одно из самых обсуждаемых в последнее время заболеваний не обошло
стороной и беременных женщин. К сожалению, воздействие вируса на организм, подвергающийся известным физиологическим изменениям,
связанным с беременностью, часто не проходит бесследно как для женщины, так и для плода. Влияние вакцинации на здоровье и развитие плода,
несмотря на получение от многих исследователей данных о ее безопасности, все-таки остается дискутабельным вопросом, учитывая наличие
системных иммунных реакций. В обзоре представлены данные литературы о влиянии коронавируса на исходы беременности и родов, результаты
зарубежных исследований о последствиях вакцинации против COVID-19 для беременных и ее связи с лактацией и грудным вскармливанием.

1. Белокриницкая ТЕ, Артымук НВ, Филиппов
ОС, Фролова НИ. Клиническое течение, материнские
и перинатальные исходы новой коронавирусной инфекции COVID-19 у беременных Сибири и Дальнего
Востока. Акушерство и гинекология. 2021;(2):48-54.
[Belokrinickaja TE, Artymuk NV, Filippov OS, Frolova
NI. Сlinical course, maternal and perinatal outcomes of
2019 novel coronavirus infectious disease (covid-19) in
pregnant women in Siberia and Far East. Obstetrics and
Gynecology. 2021;(2):48-54. (In Russian)] DOI: 10.18565/
aig.2021.2.48-54
2. Петрова УЛ, Шмаков РГ. Новая коронавирусная инфекция 2019 и беременность: что мы знаем? Акушерство и гинекология. 2022; (2): 4-11. [Petrova
UL, Shmakov RG. The 2019 novel coronavirus infection
and pregnancy; what do we know? Obstetrics and
Gynecology. 2022;(2): 4-11. (In Russian)] DOI: 10.18565/
aig.2022.2.4-11
3. Морозов АМ, Сороковикова ТВ, Жуков СВ,
Морозова АД, Рыжова ТС, Муравлянцева ММ, Пичугова АН, Минакова ЮЕ. Актуальные маркеры
воспаления в клинической практике. Современные
проблемы науки и образования. 2022;3. [Morozov AM,
Sorokovikova TV, Zhukov SV, Morozova AD, Ryzhova
TS, Muravlyantseva MM, Pichugova AN, Minakova
YE. Current markers of inflammation in clinical
practice. Modern problems of science and education. 2022;3.
(In Russian)] DOI: 10.17513/spno.31653
4. Abu-Raya B, Michalski C, Sadarangani M, Lavoie
PM. Maternal Immunological Adaptation During Normal
Pregnancy. Frontiers in Immunology. 2020;(11):575197.
DOI: 10.3389/fimmu.2020.575197
5. Groth SW, Fernandez ID, Block RC, Thurston
SW, Wong E, Brunner J, Mayo N, Kapula N, Yu Y, Meng
Y, Yeh KL, Kinkade CW, Thornburg LL, O'Connor
TG, Barrett ES. Biological changes in the pregnancypostpartum period and subsequent cardiometabolic riskUPSIDE MOMS: A research protocol. Research in nursing
and health. 2021;44(4):608-619. DOI: 10.1002/nur.22141
6. Sass L, Urhoj SK, Kjærgaard J, Dreier J W ,
Strandberg-Larsen K, Nybo Andersen A-M. Fever in
pregnancy and the risk of congenital malformations: a
cohort study. British Medical Journal Pregnancy Childbirth.
2017;17(1):413. DOI: 10.1186/s12884-017-1585-0
7. Wong SF, Chow KM, Leung TN, Ng WF, Ng TK,
Shek CC, Ng PC, Lam PWY, Ho LC, To WK, Lai ST, Yan
WW, Tan PYH. Pregnancy and perinatal outcomes of
women with severe acute respiratory syndrome. American
Journal of Obstetrics and Gynecology. 2004;191(1):292-7.
DOI: 10.1016/j.ajog.2003.11.019.
8. Chen Y, Peng H, Wang L, Zhao Y, Zeng L, Gao
H, Liu Y. Infants born to mothers with a new coronavirus
(COVID-19). Frontiers in Pediatrics. 2020;(8):104. DOI:
10.3389/fped.2020.00104
9. Yazdanpanah F, Hamblin MR, Rezaei N. The
immune system and COVID-19: friend or foe. Life
Science Journal. 2020;(256):117900. DOI: 10.1016/j.
lfs.2020.117900
10. Zhu H, Wang L, Fang C, Peng S, Zhang L, Chang
G, Xia S, Zhou W. Clinical analysis of 10 neonates born
to mothers with 2019-nCoV pneumonia. Translational
Pediatrics. 2020;9(1):51-60. DOI: 10.21037/tp.2020.02.06
11. Chen S, Liao E, Cao D, Gao Y, Sun G, Shao Y.
Clinical analysis of pregnant women with 2019 novel
coronavirus pneumonia. Journal of Medical Virology.
2020;92(9):1556-1561. DOI: 10.1002/jmv.25789
12. Allotey J, Stallings E, Bonet M, Yap M, Chatterjee
S, Kew T, Debenham L, Clavé Llavall A, Dixit A, Zhou
D, Balaji R, Lee SI, Qiu X, Yuan M, Coomar D, Sheikh
J, Lawson H, Ansari K, Wely M, Leeuwen E, Kostova E,
Kunst H, Khalil A, Tiberi S, Brizuela V, Broutet N, Kara E,
Kim CR, Thorson A, Oladapo OT, Mofenson L, Zamora
J, Thangaratinam S. Clinical manifestations, risk factors,
and maternal and perinatal outcomes of coronavirus
disease 2019 in pregnancy: living systematic review and
meta-analysis. British Medical Journal. 2020;(370):m3320.
DOI: 10.1136/bmj.m3320
13. Villar J, Ariff S, Gunier RB, Thiruvengadam
R, Rauch S, Kholin A, Roggero P, Prefumo F, Vale MS,
Cardona-Perez JA, Maiz N, Cetin I, Savasi V, Deruelle P,
Easter SR, Sichitiu J, Conti CS, Ernawati E, Mhatre M, Teji
JS, Liu B, Capelli C, Oberto M, Salazar L, Gravett MG,
Cavoretto PI, Nachinab VB, Galadanci H, Oros D, Ayede
AI, Sentilhes L, Bako B, Savorani M, Cena H, García-May
PK, Etuk S, Casale R, Abd-Elsalam S, Ikenoue S, Aminu
MB, Vecciarelli C, Duro EA, Usman MA, John-Akinola
Y, Nieto R, Ferrazi E, Bhutta ZA, Langer A, Kennedy SH,
Papageorghiou AT. Maternal and neonatal morbidity
and mortality among pregnant women with and without
COVID-19 infection: the INTERCOVID Multinational
Cohort Study. Journal of the American Medical Association
Pediatrics. 2021;175(8):817–826. DOI: 10.1001/
jamapediatrics.2021.1050
14. Wei SQ, Bilodeau-Bertrand M, Liu S, Auger N.
The impact of COVID-19 on pregnancy outcomes: a
systematic review and meta-analysis. Canadian Medical
Association Journal. 2021; 193(16):E540–E548. DOI:
10.1503/cmaj.202604
15. Papageorghiou AT, Papageorghiou AT, Deruelle
P, Gunier RB, Rauch S, García-May PK, Mhatre M, Usman
MA, Abd-Elsalam S, Etuk S, Simmons LE, Napolitano R, Deantoni S, Liu B, Prefumo F, Savasi V, Vale MS, Baafi
E, Zainab G, Nieto R, Maiz N, Aminu MB, CardonaPerez JA, Craik R, Winsey A, Tavchioska G, Bako B, Oros
D, Rego A, Benski AN, Hassan-Hanga F, Savorani M,
Giuliani F, Sentilhes L, Risso M, Takahashi K, Vecchiarelli
C, Ikenoue S, Thiruvengadam R, Soto Conti CP 18,
Ferrazzi E, Cetin I, Nachinab VB, Ernawati E, Duro EA,
Kholin A, Firlit ML, Easter SR, Sichitiu J, Bowale A,
Casale R, Cerbo RM, Cavoretto PI, Eskenazi B, Thornton
JG, Bhutta ZA, Kennedy SH, Villar J. Preeclampsia and
COVID-19: results from the INTERCOVID prospective
longitudinal study. American Journal of Obstetrics and
Gynecology. 2021;225(3):289. e1-289.e17. DOI: 10.1016/j.
ajog.2021.05.014
16. Vintzileos WS., Muscat J, Hoffmann E, John
NS, Vertichio R, Vintzileos AM, Vo D. Screening all
pregnant women admitted to labor and delivery for the
virus responsible for coronavirus disease 2019. American
Journal of Obstetrics and Gynecology. 2020;223(2):284-
286. DOI: 10.1016/j.ajog.2020.04.024
17. Ellington S, Strid P, Tong V, Woodworth K, Gala
ng RR, Zambrano LD, Nahabedian J, Anderson K, Gilbo
a SM. Characteristics of women of reproductive age with
laboratory-confirmed SARS-CoV-2 infection by pregnancy
status—United States, January 22–June 7, 2020. Morbidity
and Mortality Weekly Report. 2020;69(25):769-775. DOI:
10.15585/mmwr.mm6925a1
18. Afshar Y, Gaw SL, Flaherman VJ, Chambers BD,
Krakow D, Berghella V, Shamshirsaz, Boatin AA,
Aldrovandi G, Greiner A, Riley L, Boscardin WJ,
Jamieson DJ, Jacoby VL; Pregnancy CoRonavIrus
Outcomes RegIsTrY (PRIORITY) Study. Clinical
presentation of coronavirus disease 2019 (COVID-19)
in pregnant and recently pregnant people. Obstetrics
and Gynecology. 2020; 136(6):1117-1125. DOI: 10.1097/
AOG.0000000000004178
19. Knight M, Bunch K, Vousden N, Morris E,
Simpson N, Gale C, O'Brien P, Quigley M, Brocklehurst P,
Kurinczuk JJ; UK Obstetric Surveillance System SARSCoV-2 Infection in Pregnancy Collaborative Group.
Characteristics and outcomes of pregnant women admitted
to hospital with confirmed SARS-CoV-2 infection in UK:
national population based cohort study. British Medical
Journal. 2020. 8;369: m2107. DOI: 10.1136/bmj.m2107.
20. Salvatore CM, Han JY, Acker K, Tiwari P, Jin J,
Brandler M, Cangemi C, Gordon L, Parow A, DiPace J,
DeLaMora P. Neonatal management and outcomes during
the COVID-19 pandemic: an observation cohort study.
The Lancet Child & Adolescent Health Home Page. 2020; 4
(10):721-727. DOI: 10.1016/S2352-4642(20)30235-2.
21. Логинова ИО, Вишнякова НН., Наркевич
АН. Психологические реакции людей с различной
устойчивостью жизненного мира в период пандемии COVID-19. Сибирское медицинское обозрение. 2020;(6):101-107. [Loginova I.O., Vishnyakova N.N.,
Narkevich A.N. Psychological reactions of people with
different stability of the life world during the COVID-19
pandemic. Siberian Medical Review. 2020;(6):101-107. (In
Russian)] DOI: 10.20333/2500136-2020-6-101-107
22. Saleki K, Banazadeh M, Saghazadeh A, Rezaei
N. The involvement of the central nervous system in
patients with COVID-19. Nature Reviews Neuroscience.
2020;31(4):453–456. DOI: 10.1515/revneuro-2020-0026
23. Dagan N, Barda N, Biron-Shental T, MakovAssif M, Calanit K, Kohane IS, Hernán MA, Lipsitch M,
Hernandez-Diaz S, Reis BY, Balicer RD. Effectiveness of
the BNT162b2 mRNA COVID-19 vaccine in pregnancy.
Nature Medicine. 2021;27(10):1693-1695. DOI: 10.1038/
s41591-021-01490-8
24. Atyeo C, DeRiso EA, Davis C, Bordt EA,
Guzman RMD, Shook LL, Yonker LM, Fasano A,
Akinwunmi B, Lauffenburger DA, Elovitz MA, Gray KJ,
Edlow AG, Alter COVID-19 mRNA vaccines drive
differential antibody Fc-functional profiles in pregnant,
lactating, and nonpregnant women. Science Translational
Medicine. 2021;13(617):eabi8631. DOI: 10.1126/
scitranslmed.abi8631
25. Rottenstreich A, Zarbiv G, OiknineDjian E,
Vorontsov O, Zigron R, Kleinstern G, Wolf DG, Shay
Porat Timing of SARS-CoV-2 vaccination during the
third trimester of pregnancy and transplacental antibody
transfer: a prospective cohort study. Clinical Microbiology
and Infection. 2021, 28(3):419-425. DOI: 10.1016/j.
cmi.2021.10.003
26. Oliver ES, Gargano JW, Marin M, Wallace M,
Curran KG, Chamberland M, McClung N, CamposOutcalt D, Morgan RL, Mbaeyi S, Romero JR, Talbot HK,
Lee GM, Bell BP, Dooling K. The Advisory Committee
on Immunization Practices' Interim Recommendation
for Use of Moderna COVID-19 Vaccine—United
States. Morbidity and Mortality Weekly Report. 2021;
69(50):1922-1924. DOI: 10.15585/mmwr.mm6950e2.
27. Munoz FM, Sheffield JS, Beigi RH, Read JS,
Swamy GK, Jevaji I, Rasmussen SA, Edwards KM,
Fortner KB, Patel SM, Spong CY, Ault K, Heine RP, Nesin
Research on vaccines during pregnancy: protocol design
and assessment of safety. Vaccine. 2013; 31 (40):4274-9.
DOI: 10.1016/j.vaccine.2013.07.042.
28. Byrne JJ, Saucedo AM, Spong CY. Task Force
on Research Specific to Pregnant Women and Lactating
Women. Report to Secretary, Health and Human
Services and Congress. Seminars in Perinatology. 2020;
44(3):151226. DOI: 10.1016/j.semperi.2020.151226.
29. S. Food and Drug Administration. Emergency use
authorization. Accessed December 13, 2020. https://www.
fda.gov/emergency-preparedness-and-response/mcmlegal-regulatory-and-policy-framework/emergency-useauthorization
30. Research Committee; Society for Maternal-Fetal
Medicine (SMFM); Boelig RS, Aagaard KM, Debbink MP,
Shamshirsaz AA; Society for Maternal-Fetal Medicine.
Society for Maternal-Fetal Medicine (SMFM) statement:
SARS-CoV-2 vaccination in pregnancy. American Journal
of Obstetrics and Gynecology. 2020; 225(6):B19-B31. DOI:
10.1016/j.ajog.2021.08.039.
31. Centers for Disease Control and Prevention.
COVID-19 (coronavirus disease): people with certain
medical conditions. Accessed December 13, 2020. https://www.cdc.gov/coronavirus/2019-ncov/need-extraprecautions/people-with-medical-conditions.html
32. American College of Obstetricians and
Gynecologists. Vaccinating pregnant and lactating
patients against COVID-19: practice advisory—December
2020. Accessed December 13, 2020. https://www.
acog.org/clinical/clinical-guidance/practice advisory/
articles/2020/12/covid-19-vaccination-considerationsfor-obstetric-gynecologic-care
33. Abu-Raya B. Vaccination of pregnant women
against coronavirus disease 2019 during the pandemic.
2021;22(9):e570-e573. DOI: 10.1542/neo.22-9-e570
34. Sebghati M, Khalil A. Uptake of vaccination
in pregnancy. Best Practice Research Clinical Obstetrics
Gynaecology. 2021; 76:53-65. DOI: 10.1016/j.
bpobgyn.2021.03.007
35. Stafford IA, Parchem JG, Sibai BM. The
coronavirus disease 2019 vaccine in pregnancy: risks,
benefits, and recommendations. American Journal of
Obstetrics and Gynecology. 2021;224(5):484–495. DOI:
10.1016/j.ajog.2021.01.022
36. Israel Society of Obstetrics and Gynecology.
Guidelines for COVID-19 vaccination in pregnant and
nursing women. Guidelines in Hebrew. Accessed February
24, 2021. https://www.cdc.gov/coronavirus/2019ncov/
vaccines/recommendations/pregnancy.html
37. Information about COVID-19 Vaccines for
People who are pregnant or breastfeeding. Centers for
Disease Control and Prevention. Accessed February 24,
2021. https://www.cdc.gov/coronavirus/2019-ncov/index.
html
38. Pace RM, Williams JE, Järvinen KM, Belfort MB,
Pace CDW, Lackey KA, Gogel AC, Nguyen-Contant P,
Kanagaiah P, Fitzgerald T, Ferri R, Young B, RosenCarole C, Diaz N, Meehan CL, Caffé B, Sangster MY,
Topham D, McGuire MA, Seppo A, Michelle K McGuire
Characterization of SARS-CoV-2 RNA, antibodies,
and neutralizing capacity in milk produced by women
with COVID-19. American Society for Microbiology.
2021;12(1):1-11. DOI: 10.1128/mBio.03192-20
39. Davanzo R, Moro G, Sandri F, Agosti M, Moretti
C, Mosca F. Breastfeeding and coronavirus disease-2019:
ad interim indications of the Italian Society of Neonatology
endorsed by the Union of European Neonatal & perinatal
societies. Maternal and Child Nutrition. 2020;16(3):e13010.
DOI: 10.1111/mcn.13010
40. Davanzo R. Controversies in
Breastfeeding Frontiers in Pediatrics. Frontiers in
Pediatrics. 2018;6:278. DOI: 10.3389/fped.2018.00278

Цель исследования. Оценить in vitro антимикробную активность трех вариантов экспериментальных гелей, а также изучить их эффективность в
отношении предупреждения развития имплантат-ассоциированного остеомиелита в эксперименте на крысах.
Материал и методы. В работе исследовали образцы трех вариантов антибактериальных гелей на основе среднемолекулярного поливинилпирролидона (ПВП), содержащие антибактериальные препараты. Эксперимент in vitro. На первом этапе была изучена чувствительность типового
штамма S.aureus АТСС 29213 к действующему веществу образцов геля. Эксперимент in vivo. Исследование проводили в условиях вивария ФГБУ
«НМИЦ ТО им. P.P. Вредена» на 23 половозрелых самках белых беспородных крыс. Всем животным имплантировали спицы в проксимальный
отдел бедренной кости в различных группах. Животным контрольной группы (n=5) инфицированную спицу гелем не обрабатывали. В опытных
группах 1, 2 и 3 (в каждой n=9) спицу обрабатывали исследуемым антимикробным гелем. Эвтаназию животных выполняли на 21-е сутки после
операции, в этот срок выполняли микробиологическое и дальнейшее морфологическое исследование.
Результаты. Наличие антибактериальной активности в отношении типового штамма S.aureus АТСС 29213 регистрировали у всех трех образцов
геля. Применение гелей 1 и 3 позволило достичь эрадикации стафилококков в двух случаях из трех. Наиболее выраженный антибактериальный
эффект установлен при использовании геля 2. Морфологические исследования продемонстрировали гистологическую картину острого остеомиелита у животных контрольной группы (секвестры и сегментоядерные нейтрофилы в скоплениях фибрина 17,9±9,4 в п/3), Среднее количество
нейтрофилов в группах 1, 2 и 3 было сопоставимо между ними, однако, значимо меньше (p<0,001), чем в контрольной: соответственно 3,4±2,7,
3,7±4,3 и 3,0±1,6 клеток в поле зрения.
Заключение. Применение всех трех вариантов экспериментальных гелей, не выявило существенных различий в их антибактериальной активности. Локальная антибактериальная терапия была эффективной и позволила предупредить развитие острого остеомиелита при имплантации
инфицированной металлоконструкции у всех экспериментальных животных, однако, в единичных наблюдениях были визуализированы зоны с
нейтрофильной инфильтрацией тканей, окружающих костномозговой канал. Проведенное исследование показало, что разработка полимерных
антибактериальных гелей является перспективным направлением исследований для разработки средств профилактики и лечения имплантат-ассоциированной инфекции в ортопедии и травматологии

1. Masters EA, Ricciardi BF, Bentley K, Moriarty TF,
Schwarz EM, Muthukrishnan G. Skeletal infections: microbial
pathogenesis, immunity and clinical management. Nature
Reviews. Microbiology. 2022; 20(7):385-400. DOI: 10.1038/
s41579-022-00686-0
2. Arias C, Tamayo Betancur MC, Pinzón MA, Cardona
Arango D, Capataz Taffur CA, Correa Prada E. Differences
in the Clinical Outcome of Osteomyelitis by Treating
Specialty. Orthopedics or Infectology. 2015;10(12):e0144736.
DOI: 1371/journal.pone.0144736
3. Simpfendorfer CS. Radiologic Approach to
Musculoskeletal Infections. Infectious Disease Clinics of North
America. 2017;31(2):299-324. DOI: 1016/j.idc.2017.01.004
4. Римашевский ДВ, Ахтямов ИФ, Федуличев ПН,
Wessam Z, Устазов К.А., Basith A., Молдакулов ЖМ, Зиновьев
МП, Микулич ЕВ. Патогенетические особенности лечения
хронического остеомиелита (обзор литературы). Гений ортопедии. 2021;27(5): 628-635. [Rimashevskiy DV, Akhtyamov
IF, Fedulichev PN, Zaalan Wessam, Ustazov KA, Basith Abdul,
Moldakulov JM, Zinoviev MP. Pathogenetic features of chronic
osteomyelitis treatment (literature review). Genij Ortopedii.
2021;27(5):628-635. DOI: 10.18019/1028-4427-2021-27-5-628-
635. (In Russian)]
5. Alcаntara JE J, Aguiar RA, Sampaio JGL NETO,
Azi ML, Sadigursky D, Alencar DF. Factors associated with
the development of early infection after surgical treatment of
fractures.Acta Ortopedica Brasileira. 2018;26(1):22-26. DOI:
1590/1413-785220182601173883
6. Сакович НВ, Андреев АА, Микулич ЕВ, Остроушко АП, Звягин ВГ. Современные аспекты этиологии,
диагностики и лечения остеомиелита. Вестник экспериментальной и клинической хирургии. 2018;11(1):70-
79. [Sakovich NV, Andreev AA, Mikulich EV, Ostroushko
AP, Zvyagin VG. Modern aspects of the etiology, diagnosis
and treatment of osteomyelitis. Bulletin of Experimental and
Clinical Surgery. 2018;11(1):70-79. (In Russian)]
7. Божкова СА, Новокшонова АА, Конев ВА. Современные возможности локальной антибиотикотерапии
перипротезной инфекции и остеомиелита (обзор литературы). Травматологияи ортопедия России. 2015; (3):92-
107.[Bozhkova SA, Novokshonova AA, Konev VA. Modern
possibilities of local antibiotic therapy for periprosthetic
infection and osteomyelitis (literature review). Traumatology
and Orthopedics of Russia. 2015; (3):92-107. (In Russian)]
8. Гордина ЕМ, Божкова СА. Бактериальные биопленки в ортопедии: проблема и возможные перспективы профилактики. Российский Медицинский Журнал. 2021;(8):29-32. [Gordina EM., Bozhkova SA. Bacterial biofilms in
orthopedics: the problem and possible prospects for prevention.
Russian Medical Journal. 2021;(8):29-32. (In Russian)]
9. Патент РФ на изобретение № 2746709/19.04.2021.
Бюль.№11. Легонькова ОА, Божкова СА, Терехова РП, Ахмедов БА, Оганнисян АС, Гордина ЕМ, Винокурова ТИ,
Чилилов АМ. Способ получения антимикробного геля.
Ссылка активна на 23.09.2022. [Patent RU № 2746709/April
19, 2021. № 11. Legonkova OA, Bozhkova SA, Terekhova RP,
Akhmedov BA, Oganesyan AS, Gordina EM, Vinokurova TI,
Chililov AM. A method for obtaining an antimicrobial gel.
Accessed September 23, 2022. (In Russian)]. http://www. https://
findpatent.ru/patent/274/2746709
10. Легонькова ОА, Васильев ВГ, Божкова СА, Терехова РП, Оганнисян АС, Григорьев ММ, Винокурова ТИ,
Чилилов АМ, Ахмедов БГ. Свойства поливинилпирролидоновых гелей после стерилизующих воздействий. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии.2019;11(1): 19-24. [Legonkova OA, Vasiliev VG, Bozhkova
SA, Terekhova RP, Oganisyan AS, Grigoriev MM, Vinokurova TI,
Chililov AM, Akhmedov BG. Properties of polyvinylpyrrolidone
gels after sterilizing effects. Questions of biological, medical and
pharmaceutical chemistry. 2019;11(1): 19-24. (In Russian)]
11. Council Directive 86/609/EEC of 24 November 1986
on the approximation of laws, regulations and administrative
provisions of the Member States regarding the protection of
animals used for experimental and other scientific purposes.
Accessed September 23, 2022. https://www.eumonitor.
eu/9353000/1/j9vvik7m1c3gyxp/vitgbgh631ys.
12. Washington DC. National Research Council. Guide
for the Care and Use of Laboratory Animals: The National
Academies Press; 1996. Р.246.
13. Duygu Sütekin S, Güven O. Application of radiation
for the synthesis of poly(n-vinyl pyrrolidone) nanogels
with controlled sizes from aqueous solutions. Applied
Radiationand Isotopes. 2019; 145:161-169. DOI: 1016/j.
apradiso.2018.12.028
14. Rodríguez-Merchán EC, Davidson DJ, Liddle
AD. Recent Strategies to Combat Infections from BiofilmForming Bacteria on Orthopaedic Implants. International
Journal of MolecularSciences. 2021;22(19):10243. DOI:10.3390/
ijms221910243
15. Shivaee A, Sadeghi Kalani B, Talebi M, DarbanSarokhalil D. Does biofilm formation have different
pathways in Staphylococcus aureus? Iranian Journalof Basic
Medical Sciences. 2019;22(10):1147-1152. DOI: 10.22038/
ijbms.2019.34888.8281
16. Lamret F, Colin M, Mongaret C, Gangloff SC,
Reffuveille F. Antibiotic Tolerance of Staphylococcus
aureusBiofilm in Periprosthetic Joint Infections and Antibiofilm
Strategies. Antibiotics (Basel). 2020;9(9):547. DOI:10.3390/
antibiotics9090547.
17. Romanò CL, De Vecchi E, Bortolin M, Morelli I, Drago
L. Hyaluronic Acid and Its Composites as a Local Antimicrobial/
Antiadhesive Barrier. Journal Bone Joint 2017;2(1):63-72.
DOI:10.7150/jbji.17705
18. Оганнисян АС, Стаффорд ВВ, Легонькова ОА,
Ахмедов БГ, Божкова СА. Гистологические исследования
ответной реакции организма животных на применение
антимикробного геля локального воздействия. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии 2021;24 (10):36-41. [Ogannisyan AS, Stafford VV,
Legon'kova OA, Ahmedov BG, Bozhkova SA.. Histological
studies of the response of the animal organism to the use of
local antimicrobial gel. Questions of biological, medical and
pharmaceutical chemistry. 2021;24(10):36-41. (In Russian)].
DOI: 10.29296/25877313-2021-10-00
19. McNally M, Sousa R, Wouthuyzen-Bakker M, Chen
AF, Soriano A, Vogely HC, Clauss M, Higuera CA, Trebše R.
The EBJIS definition of periprosthetic joint infection. Bone Joint
Journal. 2021;103-B(1):18-25. DOI:1302/0301-620X.103B1.BJJ2020-1381.R1

Цель исследования. Оценить результаты скрининга поражений костно-мышечной системы при псориазе и клиническую характеристику больных псориатическим артритом в Красноярском крае.
Материал и методы. В исследование за период с 12.03.2022 по 01.12.2022 включено 336 больных ПсО (42.0 [32.0/56.0] лет), в том
числе 178 (53%) мужчин (40,5 [31.0/54.0] лет) и 158 (47%) женщин (43.5 [34.0/59.0] лет, р=0.039). Большая часть пациентов находилась на стационарном лечении: 140 (42.4%) в дневном и 96 (29.1%) в круглосуточном стационаре, остальные 94 пациента (28.5%) наблюдались амбулаторно. Подавляющее большинство больных - 307 (91.4%) имели бляшечную форму ПсО. Всем больным проводилась оценка тяжести поражения кожи (Psoriasis Area and Severity Index – PASI), качества жизни (The Dermatology Life Quality Index
– DLQI); скрининг поражений костно-мышечной системы включал опросники mPEST (modified Psoriasis Epydemiology Screening Too) l,
BASDAI (Bath Ankylosing Spondylitis Disease Activity Index) и воспалительной боли в спине (A.Calin et al., M.Rudwaleit et al., ASAS). Исследование проводилось с соблюдением требований надлежащей клинической практики, все пациенты подписывали информированное согласие.
Результаты. Нами не было выявлено статистически значимых гендерных различий по тяжести поражения кожи и оценке качества жизни больных ПсО. Так, 168 пациентов (50.0%) имели тяжелое поражение кожи (PASI ≥ 20 баллов), р=0.537, 91 пациент (27.1%) – среднюю степень тяжести
(PASI 10-19 баллов), р=0.513, 77 (22.9%) – легкое поражение кожи (PASI ˂ 10 баллов), р=0.203. Более половины всех пациентов - 145 (52.2%) имели
11-20 баллов (очень сильное влияние на качество жизни) и 21-30 баллов (чрезвычайно сильное влияние) по DLQl (р=0.083). При этом выявлено
значительное превалирование коморбидного фона у женщин, страдающих ПсО. Всего сопутствующую патологию имели 183 больных (54.5%), у
женщин – 99 (62.7%), у мужчин – 84 (42.7%), р=0.004. Женщины в сравнении с мужчинами чаще страдали нарушениями сердечного ритма (7.0%
и 0.0%, р<0.001), заболеваниями печени и поджелудочной железы (13.9% и 4.5%, р=0.002), сахарным диабетом (8.2% и 2.2%, р=0.013). Два и более
сопутствующих заболевания имела каждая третья женщина – 61 (38.6%) и каждый четвертый мужчина – 44 (24.7%), р=0.006. Вероятный ПсА
(mPEST ≥ 3 баллов) диагностирован у трети больных – 117 (34.8%). Выявлена ассоциация mPEST ≥3 с возрастом (46.0 [37.0;57.0] против 40.0
[30.0;56.0] лет, р=0.012), более длительным стажем заболевания (18.0 [7.0;30.0] против 12.0 [5.0;23.0] лет, р=0.048), с более выраженным влиянием
на качество жизни (DLQI 13.5 [9.0;19.0] против 10.0 [6.0;15.0] баллов, р=0.001), тяжестью поражения кожи (PASI 30.7 [26.7; 37.3] против 25.6 [22.0;
31.0] баллов, р=0.00) почти у каждого второго пациента (49.6%). Всего жалобу на боль в позвоночнике различного характера отметили 143 (42.6%)
пациента. При этом у больных с mPEST ≥3 этот симптом был у 85 из 117 пациентов (72.6%), тогда как среди больных с mPEST менее 3 баллов лишь
у 58 из 219 (26.5%), р<0,001. Однако воспалительной боли в спине (ВБС) по критериям ASAS соответствовали лишь 33 из 143 (23.1%) пациента,
тогда как ВБС, как минимум, по одним из использовавшихся четырех критериев соответствовали более половины пациентов - 73 из 143 (51.0%).
Заключение. Своевременная диагностика ПсА является актуальной и нерешенной задачей здравоохранения. Междисциплинарное взаимодействие дерматолога и ревматолога и проведение углубленного обследования на основании результатов скрининга mPEST необходимо фактически
каждому третьему пациенту (34.8%), а уточнение характера аксиального поражения – каждому пятому пациенту (21.7%).

1. Клинические рекомендации. Псориаз артропатический. Псориатический артрит. [Clinical
recommendations. Arthropathic psoriasis. Psoriatic
arthritis. 2021 (In Russian)]. URL: https:// cr.minzdrav.
gov.ru/recomend/562_2 (Accessed: 05 Feb 2023)
2. Poddubnyy D, Jadon DR, Van den Bosch F,
Philip J Mease, Dafna D Gladman. Axial involvement
in psoriatic arthritis: An update for rheumatologists.
Seminars Arthritis Rheumatology. 2021; 51(4): 880-887.
DOI: 10.1016/j.semarthrit.2021.06.006
3. Губарь ЕЕ, Коротаева ТВ. Поражение позвоночника при псориатическом артрите. Научно-практическая ревматология. 2022; 60(6): 546–56. [Gubar
EE, Korotaeva TV. Axial involvement in psoriatic arthritis.
Nauchno-Prakticheskaya Revmatologia = Rheumatology
Science and Practice. 2022; 60(6): 546–560. (In Russian)].
DOI: 10.47360/1995-4484-2022-546-560
4. Proft F, Lüders S, Hunter T, Luna G, Rodriguez
VR, Protopopov M, Meier K, Kokolakis G, Ghoreschi
K, Poddubnyy D. Early identification of axial psoriatic
arthritis among patients with psoriasis: a prospective
multicenter study. Annals of the Rheumatic Diseases: 2022;
(81): 1534-1540. DOI:10.1136/annrheumdis-2022-222562
5. Губарь ЕЕ, Логинова ЕЮ, Корсакова ЮЛ,
Глухова СИ, Коротаева ТВ. Возможности скрининга высокого риска поражения осевого скелета при
псориатическом артрите. Современная ревматология. 2020; 14(3): 34–38. [Gubar EE, Loginova EYu,
Korsakova YuL, Glukhova SI, Korotaeva TV. Possibilities
of screening for a high-risk axial skeletal lesion in
psoriatic arthritis. Sovremennaya Revmatologiya=Modern
Rheumatology Journal. 2020;14(3):34–38. (In Russian)]
DOI: 10/14412/1996-7012-2020-3-34-38
6. Чамурлиева МН, Логинова ЕЮ, Коротаева ТВ.
Выявляемость периферических и аксиальных проявлений псориатического артрита у больных псориазом
в дерматологической практике. Современная ревматология. 2019;13(4):48–54. [Chamurlieva MN, Loginova
EYu, Korotaeva TV. Detectability of the peripheral and
axial manifestations of psoriatic arthritis in patients
with psoriasis in dermatological practice. Sovremennaya
Revmatologiya=Modern Rheumatology Journal.
2019;13(4):48–54. (In Russian)] DOI: 10/14412/1996-
7012-2019-4-48-54
7. Логинова ЕЮ, Коротаева ТВ, Корсакова ЮЛ, Губарь ЕЕ, Тремаскина ПО,
Василенко ЕА, Кушнир ИН, Патрикеева ИМ, Кудишина СС, Шестерня ПА, Петров АВ, Кузнецова НА., Насонов ЕЛ. Клинический статус и
трудоспособность пациентов, включенных в Общероссийский регистр пациентов с псориатическим
артритом. Современная ревматология. 2020;14(3):19–
26. [Loginova EYu, Korotaeva TV, Korsakova YuL,
Gubar EE, Tremaskina PO, Vasilenko EA, Kushnir IN,
Patkikeeva IM, Kudishina SS, Shesternya PA, Petrov AV,
Kuznetsova NA, Nasonov EL. The clinical status and working
capacity in patients included in the AllRussian Psoriatic
Arthritis Registry. Sovremennaya Revmatologiya=Modern
Rheumatology Journal. 2020;14(3):19–26. (In Russian)]
DOI: 10/14412/1996-7012-2020-3-19-26
8. Armstrong A, Bohannan B, Mburu S, Alarcon I,
Kasparek T, Toumi J, Frade S, Fernandez Barrio S, Augustin
M. Impact of Psoriatic Disease on Quality of Life: Interim
Results of a Global Survey. Dermatol Ther (Heidelb). 2022;
(12): 1055–1064. DOI: 10.1007/s13555-022-00695-0
9. Бабкова МИ, Оттева ЭН. Субклинический
псориатический артрит в популяции больных псориазом. Здравоохранение Дальнего Востока. 2022;
(3): 15-22. [Babkova MI, Otteva EN. Subclinical psoriatic
arthritis in a population of patients with psoriasis. 'Public
Health of the Far East. 2022; (3): 15-22. (In Russian)] DOI:
10.33454/1728-1261-2022-3-15-22
10. Виноградова ЕВ, Майорова АВ, Базина ИБ,
Козырев ОА, Павлова МВ, Кречикова ДГ. Сердечно-сосудистые заболевания и их осложнения у больных псориатическим артритом. Вестник Смоленской
государственной медицинской академии. 2022; 21(2):
79-83. [Vinogradova EV, Mayorova AV, Bazina IB, Kozyrev
OA, Pavlova MV, Krechikova DG. Cardiovascular diseases
and their complications in patients with psoriatic arthritis.
Vestnik of the Smolensk State Medical Academy. 2022; 21(2):
79-83. (In Russian)] DOI: 10.37903/vsgma.2022.2.11
11. Fredriksson T, Pettersson U. Severe psoriasis
- oral therapy with a new retinoid. Dermatologica.
1978;157(4):238-44.
12. Sieper J, Van der Heijde D, Landewe R, Brandt
J, Burgos-Vagas R, Collantes-Estevez E, Dijkmans B,
Dougados M, Khan MA, Leirisalo-Repo M, Van der Linden
S, Maksymowych WP, Mielants H, Olivieri I, Rudwaleit
M. New criteria for inflammatory back pain in patients
with chronic back pain: a real patient exercise by experts
from the Assessment of SpondyloArthritis International
Society (ASAS). Annals of Rheumatic Diseases. 2009;
68(6): 784-788. DOI: 10.1136/ard. 2008.101501
13. Rudwaleit M, Metter A, Listing J, Sieper J, Braun
J. Inflammatory back pain in ankylosing spondylitis: a
reassessment of the clinical history for application as classification and diagnostic criteria. Arthritis Rheum.
2006; 54(2): 569-578. DOI: 10.1002/art.21619
14. Корсакова ЮЛ, Коротаева ТВ, Логинова ЕЮ,
Губарь ЕЕ, Василенко ЕА, Василенко АА, Кузнецова
НА, Патрикеева ИМ, Насонов ЕЛ. Распространенность коморбидных и сопутствующих заболеваний
при псориатическом артрите по данным Общероссийского регистра больных псориатическим артритом.
Научно-практическая ревматология. 2021;59(3):275–
281. [Korsakova YuL, Korotaeva TV, Loginova EIu,
Gubar EE, Vasilenko EA, Vasilenko AA, Kuznetsova NA,
Patrikeeva IM, Nasonov EL. The prevalence of comorbid
and concomitant diseases in psoriatic arthritis patients,
data from Russian register. Nauchcno-Prakticheskaya
Revmatologia = Rheumatology Science and Practice.
2021;59(3):275–281 (In Russian)]. DOI: 10.47360/1995-
4484-2021-275-281
15. Федорова ВИ, Саввина НА, Суханова НИ.
Применение скринингового опросника mPEST в
ранней диагностике псориатического артрита у пациентов с псориазом в клинической практике врача-дерматолога. Вестник Северо-Восточного федерального университета имени М.К. Аммосова. Серия
«Медицинские науки». 2021; 24 (3): 39-48. [Fedorova
VI, Savvina NA, Sukhanova NI. The application of the
screening mPEST questionnaire in early diagnostics
of psoriatic arthritis in patients with psoriasis in the
dermatological clinical practice. Vestnik of the M.K.
Ammosov North-Eastern Federal University. 2021; 24 (3):
39-48. (In Russian)] DOI: 10.25587/SVFU.2021.24.3.006
16. Чамурлиева МН, Логинова ЕЮ, Коротаева ТВ.
Поражение костно-суставного аппарата у больных
псориазом по данным скринингового опросника PEST
(Psoriasis Epydemiology Screening Tool) и ревматологического клинико-инструментального обследования.
Научно-практическая ревматология. 2014;52(6):636–
42. [Chamurlieva MN, Loginova EYu, Korotaeva TV.
Osteoarticular injury in psoriatic patients according to
the data of PEST (psoriasis epidemiology screening tool)
questionnaire and rheumatological clinicoinstrumental
examination. Nauchno-prakticheskaya revmatologiya =
Rheumatology Science and Practice. 2014;52(6):636–42.
(In Russian)] DOI: 10.14412/1995-4484-2014-636-642

Цель исследования. Изучить коморбидные ассоциации рецидивирующих цефалгий у подростков сельского населения Хакасии.
Материал и методы. Объект исследования – случайные выборки подростков 12-18 лет 6-ти школ 3-х сельских районов Хакасии в количестве
612 человек, 254 (41,5%) мальчиков и 358 (58,5%) девочек, медиана (Ме) возраста обследованных 15,0 [14,0; 16,0] лет. Рецидивирующие цефалгии
(РЦ), боли в животе, спине (дорсалгии) и астенический синдром (АС) верифицированы по скрининговой анкете. Онлайн-поведение оценено по
шкале Чена (CIAS), уровень тревожности–по тесту Ч.Д. Спилбергера и Ю.Л. Ханина. Сравнили показатели в группах по полу и возрасту (12-14 и
15-18 лет). Данные обработаны в программе «Statistica 12».
Результаты. Редкие цефалгии регистрируются у 32,3% общей выборки, частые – у 5,7%. Суммарная встречаемость цефалгий (редких и частых)
выше среди девочек (49,2% и 22,4%, р<0,0001), и выше у старших подростков (46,8% и 23,1%, р<0,0001). Возрастно-половая структура включает
большую распространенность цефалгий (и редких, и частых) у девочек, и у старших подростков. АПИ чаще ассоциировано с отсутствием цефалгий, НПИ и ППИ – с редкими, а ППИ – с частыми цефалгиями. Наиболее значимы ассоциации частых цефалгий с АС (ОШ=14,37, ДИ 5,90-35,09),
частыми болями в животе (ОШ=10,58, ДИ 4,53-24,74), в спине (ОШ=7,43, ДИ 3,38-16,37), ППИ (ОШ=4,26, ДИ 1,57-11,58), НПИ (ОШ=2,21, ДИ 1,06-
4,63), ДПИ (ОШ=4,17, ДИ 1,82-9,58), с высокой личностной тревожностью (ОШ=4,41, ДИ 2,16-9,01). Редкие цефалгии значимо чаще ассоциированы с АС (ОШ=4,92, ДИ 2,50-9,68), частыми болями в спине (ОШ=4,83, ДИ 2,96-7,90), высокой реактивной тревожностью (ОШ=2,59, ДИ 1,73-3,89),
игровой интернет-зависимостью (ОШ=11,24, ДИ 1,34-94,59) и сочетанными болями в спине (ОШ=11,27, ДИ 1,31-97,58).
Заключение. На примере обследованной выборки установлена распространенность и структура рецидивирующих цефалгий у подростков сельского населения Хакасии, их возрастно-половые различия и значимые ассоциации с рядом показателей.

Цель исследования. Изучение хемилюминесцентной активности нейтрофильных гранулоцитов и моноцитов крови у детей с Helicobacter pylori –
ассоциированного эрозивно-язвенного поражения желудка и 12-перстной кишки.
Материал и методы. Объектами исследования служили нейтрофильные гранулоциты и моноциты крови, выделенные у 46 детей с H. pylori-ассоциированным эрозивно–язвенным поражением желудка и 12-перстной кишки в возрасте от 11 до 18 лет и 55 практически здоровых лиц. Для
постановки диагноза использовались: клинические и лабораторные исследования. Определение кислородозависимого фагоцитоза моноцитов и
нейтрофильных гранулоцитов крови проводили хемилюминесцентным методом.
Результаты. Исследование кислородозависимого фагоцитоза нейтрофильных гранулоцитов крови в группе больных показало значимое
снижение времени выхода на пик и повышение интенсивности и площади под кривой люминол-зависимой спонтанной и зимозан-индуцированной реакции относительно контрольного диапазона. Индекс активации в группе больных достоверно снижался. Интенсивность моноцитов крови в группе больных снижена относительно контрольной группы. Сравнительное изучение респираторной активности показало
увеличение интенсивности в люминол-зависимом спонтанном и зимозан-индуцированном процессе у нейтрофильных гранулоцитов, при
этом площадь под кривой снижена относительно моноцитов крови. Исследование люцигенин-зависимого процесса показало достоверное
повышение активности общей популяции нейтрофильных гранулоцитов (интенсивность и площадь под кривой) как при спонтанной реакции, так и в зимозан-индуцированном процессе относительно моноцитов крови. При этом повышен индекс активации в нейтрофилах крови
относительно моноцитов.
Заключение. Таким образом наблюдается интенсификация «респираторного взрыва» в общей фракции нейтрофильных гранулоцитов крови,
выделенных у больных с H. pylori-ассоциированным эрозивно– язвенным поражением желудка и 12-перстной кишки, в спонтанном процессе
и при индукции зимозаном относительно контроля. Активность моноцитов крови значительно снижена. Результаты сравнительного аспекта
характеризуют недостаточность цитотоксической активности моноцитов по сравнению с нейтрофилами у больных с H. pylori-ассоциированного
эрозивно–язвенного поражения желудка и 12-перстной кишки.

1. Коленчукова ОА, Гвоздев ИИ, Горбачева
НН, Литвинова ИС. Кислородзависимый фагоцитоз моноцитов крови у детей с Helicobacter pylori-ассоциированным эрозивно- язвенным поражением
желудка и 12-перстной кишки. Инфекция и иммунитет. 2018;8(2):157–162. DOI: 10.15789/2220-7619-2018-
2-157-162 [Kolenchukova OA, Gvozdev II, Gorbacheva
NN, Litvinova IS. Oxygen-dependent phagocytosis
of blood monocytes in children with Helicobacter
pylori-associated erosive and ulcerative lesions of the
stomach and duodenum. Russian Journal of Infection
and Immunity. 2018;8(2):157–162. (In Russian)] DOI:
10.15789/2220-7619-2018-2-157-162. 
2. Поливанова ТВ, Пуликов АС, Манчук ВТ, Вшивков ВА. Распространенность Helicobacter pylori и характеристика ассоциированного с инфекцией гастрита у
детей коренных жителей Тывы и Эвенкии. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2014;(11):469-3. [Polivanova TV, Pulikov AS, Manchuk
VT, Vshivkov VA. Helicobacter pylori prevalence and
characteristics of the infection-associated gastritis in native
children of Tyva and Evenkia. International Journal of Applied
and Fundamental research. 2014;(11):469-3. (In Russian)]
3. Поливанова ТВ, Вшивков ВА, Муравьева НГ. Заболевания гастродуоденальной зоны, ассоциированные
с Helicobacter рylori, у детей — коренных жителей Тывы и
Эвенкии. Детские инфекции. 2015;(2):25-3. [Polivanova TV,
Vshivkov VA, Muravjeva NG. Association of Gastroduodenal
Diseases with Helicobacter Pylori Infection in Native Children
of Tuva and Evenkia. Journal Children Infections. 2015;(2):25-
3. (In Russian)]
4. Sabbagh P, Javanian M. Helicobacter pylori
infection in children: an overview of diagnostic
methods. European Journal of Clinical Microbiology and
Infectious Diseases. 2019;38(6):1035-1045.
5. Peng W, Zhao X, Li X. Helicobacter bilis Contributes
to the Occurrence of Inflammatory Bowel Disease by
Inducing Host Immune Disorders. BioMed Research
International. 2022;PMC9381287.
6. Weng C, Xu J, Sun S. Helicobacter pylori eradication:
Exploring its impacts on the gastric mucosa. World Journal of
Gastroenterology. 2021;27(31):5152-5170.
7. Ożańska A, Szymczak D, Rybka J. Pattern of human
monocyte subpopulations in health and disease. Scandinavian
Journal of Immunology. 2020;92(1):e12883.
8. Narasimhan P, Marcovecchio P. Nonclassical
Monocytes in Health and Disease. Annual Review of
Immunology. 2019;(10):2035.
9. Patel A, Yona S. Inherited and Environmental Factors
Influence Human Monocyte Heterogeneity. Frontiers in
Immunology. 2019;(10):2581.
10. Orozco S, Canny S, Hamerman J. Signals governing
monocyte differentiation during inflammation. Current Opinion
in Immunology. 2021;(73):16-24.
11. Grondman I, Arts R, Koch R. Frontline Science:
Endotoxin-induced immunotolerance is associated with loss
of monocyte metabolic plasticity and reduction of oxidative
burst. Journal of Leukocyte Biology. 2019;106(1):11-25.
12. Aschenbrenner D, Quaranta M, Banerjee S.
Deconvolution of monocyte responses in inflammatory bowel
disease reveals an IL-1 cytokine network that regulates IL-23
in genetic and acquired IL-10 resistance. Inflammatory Bowel
Diseases. 2020;70(6):1023-1036.
13. Kim H, Lim J, Kim H. Korean Red Ginseng
Extract Inhibits IL-8 Expression via Nrf2 Activation in
Helicobacter pylori-Infected Gastric Epithelial Cells. Nutrients.
2022;14(5):1044.

Цель исследования. Изучить сывороточные уровни RANKL и OPG у девочек-подростков при недифференцированной дисплазии соединительной
ткани (НДСТ) с нарушениями менструального цикла (НМЦ).
Материал и методы. Проведено обследование 216 девочек-подростков возрастом 11-17 лет (средний возраст - 14,0±0,15 лет). Все исследуемые
были разделены на 2 группы: 176 пациенток с установленным НМЦ и НДСТ (основная группа) и 40 здоровых девочек-подростков (контрольная
группа). В образцах сыворотки крови, выделенной утром натощак, определялись уровни лиганда активатора рецептора ядерного фактора κВ
(RANKL) и остеопротегерина (OPG). Концентрация цитокинов определялась методом иммуноферментного анализа.
Результаты. У девочек-подростков с НДСТ и НМЦ установлен статистически значимый рост концентраций RANKL (р<0,05) с тенденцией к
повышению значений OPG (р<0,1). Кроме того, у девочек-подростков с НДСТ и НМЦ значительно чаще регистрировались уровни RANKL cвыше
3,0 пг/мл (56,8% против 35,0% в контрольной группе; p=0,020) и OPG свыше 110 пг/мл (19,3% против 2,5% в контрольной группе; р=0,018).
Заключение. Установленное увеличение продукции цитокинов RANKL и OPG может отражать особенности регуляции метаболизма костной
ткани у девочек-подростков с НМЦ и НДСТ и может быть использовано для разработки эффективных индивидуализированных схем лечебно-профилактических мероприятий.

1. Сметанин МЮ, Чернышова ТЕ, Пименов ЛТ,
Кононова НЮ. Вегетативная дисфункция как проявление дисплазии соединительной ткани у женщин. Медицинский вестник Северного Кавказа. 2018;13(4):594-
596. [Smetanin MYu, Chernyshova TE, Pimenov LT,
Kononova NYu. Autonomic dysfunction as a manifestation
of connective tissue dysplasia in women. Medical Bulletin
of the North Caucasus. 2018;13(4):594-596. (In Russian)]
DOI: 14300/mnnc.2018.13112
2. Акимова АВ, Миронов ВА, Гагиев ВВ, Палабугина ПА, Тарасова ЕВ. Фенотипические и клинико-психологические особенности лиц с недифференцированной дисплазией соединительной
ткани. Вестник УГМУ. 2018;(2):10-12. [Akimova AV,
Mironov VA, Gagiev VV, Palabugina PA, Tarasova EV.
Phenotypic and clinical and psychological characteristics
of individuals with undifferentiated connective tissue
dysplasia. Vestnik USMU. 2018;(2):10-12. (In Russian)]
3. Золото ЕВ, Золото ММ. Влияние гормонального фона и электролитов на минеральную плотность
костной ткани у девочек-подростков с нарушениями репродуктивного здоровья при недифференцированной дисплазии соединительной ткани. Медико-социальные проблемы семьи. 2020;25(3):115. [Zoloto
EV, Zoloto MM. The effect of hormonal levels and
electrolytes on bone mineral density in adolescent girls
with reproductive health disorders with undifferentiated
connective tissue dysplasia. Medical and Social Problems
of the Family. 2020;25(3):115. (In Russian)]
4. Кравченко АИ, Золотухин СЕ, Шпаченко
НН. Минеральная плотность и метаболизм костной ткани при синдроме недифференцированной
дисплазии шейного отдела позвоночника у детей. Вестник гигиены и эпидемиологии. 2018;22(4):33-
36. [Kravchenko AI, Zolotukhin SE, Shpachenko
NN. Mineral density and metabolism of bone tissue
in the syndrome of undifferentiated dysplasia of the
cervical spine in children. Bulletin of Hygiene and
Epidemiology. 2018;22(4):33-36. (In Russian)]
5. Чайка ВК, Железная АА, Лунева НН. Диагностика недифференцированной дисплазии соединительной ткани у женщин детородного возраста по
фенотипическим и висцеральным признакам. Университетская клиника. 2019; 3(32): 60-64. [Chaika VK,
Zheleznaya AA, Luneva NN. Diagnosis of undifferentiated
connective tissue dysplasia in women of childbearing
age by phenotypic and visceral features. University
Сlinic. 2019;3(32): 60-64. (In Russian)]
6. Акимова АВ, Миронов ВА, Гагиев ВВ, Палабугина ПА, Тарасова ЕВ. Фенотипические и клинико-психологические особенности лиц с недифференцированной дисплазией соединительной
ткани. Вестник Уральского государственного медицинского университета. 2018;(2):10-12. [Akimova AV,
Mironov VA, Gagiev VV, Palabugina PA, Tarasova EV.
Phenotypic and clinical and psychological characteristics
of individuals with undifferentiated connective tissue
dysplasia. Bulletin of the Ural State Medical University.
2018;(2):10-12. (In Russian)]
7. Усова АВ, Савченко ДВ, Галенок РБ. Анализ
репродуктивного сценария у молодых женщин с недифференцированной дисплазией соединительной
ткани. Сибирский медицинский вестник. 2020; (2):25-
30. [Usova AV, Savchenko DV, Galenok RB. Analysis
of the reproductive scenario in young women with
undifferentiated connective tissue dysplasia. Siberian
Medical Bulletin. 2020;(2):25-30. (In Russian)]
8. Дума СН, Щербакова ЛВ. Болевые синдромы
у пациентов с недифференцированной дисплазией
соединительной ткани и подходы к их коррекции. Лечебное дело. 2019; (3):23-33. [Duma SN, Shcherbakova
LV. Pain syndromes in patients with undifferentiated
connective tissue dysplasia and approaches to their
correction. Medical Care. 2019;(3):23-33. (In Russian)]
9. Луценко ЮА, Черкасов НС, Давыдова ОВ,
Ледяев МЯ, Макухина ЛП. Клинико-инструментальная оценка форм и синдромов недифференцированной дисплазии соединительной ткани у
детей. Вестник Волгоградского государственного медицинского университета. 2019;3(71):58-61. [Lutsenko
YuA, Cherkasov NS, Davydova OV, Ledyaev MYa,
Makukhina LP. Clinical and instrumental assessment
of forms and syndromes of undifferentiated connective tissue dysplasia in children. Bulletin of the Volgograd State
Medical University. 2019;3(71):58-61. (In Russian)]
10. Pope MK, Ratajska A, Johnsen H, Rypdal
KB, Sejersted Y, Paus B. Diagnostics of hereditary
connective tissue disorders by genetic next-generation
sequencing. Genetic Testing and Molecular Biomarkers.
2019;23(11):783-790. DOI: 1089/gtmb.2019.0064
11. Antunes M, Scirè CA, Talarico R, Tobias A,
Avcin T, Belocchi C, Doria A, Franceschini F, Galetti I,
Govoni M, Hachulla E, Launay D, Lepri G, Macieira
C, Matucci-Cerinic M, Montecucco CM, MoraesFontes MF, Mouthon L, Paolino S, Ramoni V, Tani
C, Tas SW, Tincani A, Vollenhoven RV, Zen M, Fonseca
J, Bombardieri S, Fonseca JE, Schneider M, Smith V,
Cutolo M, Mosca M, Beretta Undifferentiated connective
tissue disease: state of the art on clinical practice
guidelines. RMD Open. 2019;4(1):e000786. DOI: 10.1136/
rmdopen-2018-000786
12. Coles W, Copeman A, Davies K. Hypermobility
in children. Paediatrics and Child Health. 2018;28(2):50–
56. DOI:1016/j.paed.2017.12.001
13. Filiz T. Prevalence of joint hypermobility,
hypermobility spectrum disorder and hypermobile
Ehlers-Danlos syndrome in a university population:
an observational study. The European Research
Journal. 2019;6(2):120-129. DOI: 18621/EURJ.466831
14. Babamuradova ZB, Shodikulova GZ. Сontent
of type i collagen antibodies and their association with
clinical manifestations of undifferentiated connective
tissue dysplasia. European Science. 2020;2-1(51):82-85.
15. Babamuradova ZB, Shodikulova GZ. Features
of Diagnosis and Treatment of Articular Syndrome in
Undifferentiated Connective tissue dysplasia. American
Journal of Medicine and Medical Sciences. 2020;10(4):192-
196. DOI: 10.5923/j.ajmms.20201004.03
16. Pavlov SB, Pavlova GB. Study the role of intercellular
mediators in the metabolism of connected tissue in
children with cardiomyopathy and osteopeny. Journal of
Education, Health and Sport. 2016;6(9):902-916. DOI:
5281/zenodo.163528
17. Ostrowska Z, Morawiecka-Pietrzak M,
Pluskiewicz W, Swietochowska E, Strzelczyk J, Golabek
K, Gazdzicka J, Ziora K. The relationship between
chemerin, bone metabolism, the RANKL/RANK/OPG
system, and bone mineral density in girls with anorexia
nervosa. Endokrynologia Polska.2021; 73(1):26-34. DOI:
10.5603/EP.a2021.0103

Развитие венозной тромбоэмболии у пациентов со злокачественной глиомой головного мозга является одной из причин, снижающих у них продолжительность жизни. Вот почему выявление склонности к тромбообразованию является актуальной проблемой современной нейроонкологии.
Цель исследования. Сравнительный анализ коагуляторных показателей крови у пациентов с опухолевой патологией головного мозга в дооперационном периоде, с последующим изучением перспективы использования полученных результатов для увеличения продолжительности жизни.
Материал и методы. В исследование включены 48 пациентов с опухолевой патологией головного мозга: злокачественная опухоль (1 группа)
диагностирована у 25 (52,1%) пациентов, доброкачественная опухоль (2 группа) - у 23(47,9%) пациентов. В дооперационном периоде гиперкоагуляцию устанавливали по результатам теста «Тромбодинамика» и на основании параметров коагулограммы.
Результаты. Венозная тромбоэмболия диагностирована у 4(8,3%) пациентов. По данным теста «Тромбодинамика» и коагулограммы гиперкоагуляция выявлялась значительно чаще - у 37(77,1%) и у 19(39,6%) пациентов соответственно. Результаты теста «Тромбодинамика» указывали,
во-первых, на более значимое увеличение скорости образования индуцированного сгустка в 1 группе чем во 2 группе (55[33; 66] мкм/мин и 40[32;
52] мкм/мин; р=0,043), во-вторых – на тенденцию укорочения времени образования спонтанного сгустка в 1 группе. Параметры коагулограммы
указывали на снижение значения показателя АЧТВ в 1 группе (р=0,003).
Заключение. В дооперационном периоде у пациентов с опухолевой патологией головного мозга гиперкоагуляция выявляется значительно чаще,
чем венозная тромбоэмболия. У пациентов со злокачественной опухолью отмечается более высокая склонность к тромбообразованию. Результаты теста «Тромбодинамика» могут стать ключевыми при разработке схем профилактических мероприятий, направленных на снижение степени
гипоксии в зоне опухолевой патологией головного мозга и обеспечения повышения эффективности адьювантной лучевой терапии.

1. Воробьев АВ, Макацария АД, Чабров АМ,
Савченко АА. Синдром Труссо: современный взгляд
на проблему. Журнал акушерства и женских болезней. 2015;64(4): 85-94. [Vorobyov AV, Makatsaria AD,
Chabrova M, Savchenko A A. Trousseau syndrome: a
modern view of the problem. Journal of Obstetrics and
Women Diseasrs. 2015;64(4): 85-94. (In Russian)] DOI:
10.17816/JOWD64485-94
2. Rinaldo L, Brown DA, Bhargav AG, Rusheen AE,
Naylor RM, Gilder HE, Monie DD, Youssef SJ, Parney IF.
Venous thromboembolic events in patients undergoing
craniotomy for tumor resection: incidence, predictors,
and review of literature. Journal of Neurosurgery.
2019;132(1):10-21. DOI: 10.3171/2018.7.JNS181175
3. Kaewborisutsakul A, Tunthanathip T, Yuwakosol
P, Inkate S, Pattharachayakul S. Incidence and risk factors
for venous thromboembolism following craniotomy
for intracranial tumors: a cohort study. Asian Journal
of Neurosurgery. 2020;15(1):31-38. DOI: 10.4103/ajns.
AJNS_351_19
4. Buchanan IA, Lin M, Donoho DA, Patel A, Ding L,
Amar AP, Giannotta SL, Mack WJ, Attenello F. Predictors of
venous thromboembolism after nonemergent craniotomy:
a nationwide readmission database analysis. World
Neurosurgery. 2019;(122):e1102-e1110. DOI: 10.1016/j.
wneu.2018.10.237
5. Gupta S, Dawood H, Giantini Larsen A, Fandino
L, Knelson EH, Smith TR, Lee EQ, Aizer A, Dunn IF, Bi
WL. Surgical and peri-operative considerations for brain
metastases. Frontiers in Oncology. 2021;(11):662943. DOI:
10.3389/fonc.2021.662943
6. Gerber DE, Segal JB, Salhotra A, Olivi A,
Grossman SA, Streiff MB. Venous thromboembolism
occurs infrequently in meningioma patients receiving
combined modality prophylaxis. Cancer. 2007;109(2):300-
5. DOI: 10.1002/cncr.22405
7. Parmontree P, Ketprathum P, Ladnok T, Meeaium
S, Thanaratsiriworakul T, Sonhorm U. Predictive risk factors
for venous thromboembolism in neurosurgical patients: A
retrospective analysis single center cohort study. Annals of
Medicine and Surgery (London). 2022;(77):103628. DOI:
10.1016/j.amsu.2022.103628
8. Muster V, Gary T. Contrasts in glioblastomavenous thromboembolism versus bleeding risk. Cells.
2021;10(6):1414. DOI: 10.3390/cells10061414
9. Thaler J, Ay C, Kaider A, Reitter E, Haselböck J
, MannhalterC, ZielinskiC, Marosi C, Pabinger Biomark
ers predictive of venous thromboembolism in patients with
newly diagnosed high-grade gliomas. Neuro-Oncology.
2014;16(12):1645-1651. DOI: 10.1093/neuonc/nou106
10. Kaptein FHJ, Stals MAM, Kapteijn MY,
Cannegieter SC, Dirven l, van Duinen SG, van Eijk
R, Huisman MV, Klaase EE, Taphoorn MJB, Versteeg
HH, Buijs JT, Koekkoek JAF, Klok FA. Incidence and
determinants of thrombotic and bleeding complications
in patients with glioblastoma. Journal of Thrombosis
and Haemostasis. 2022;20(7):1665-1673. DOI: 10.1111/
jth.15739
11. Streiff MB, Ye X, Kickler TS, Desideri S, Jani J,
Fisher J, Grossman SA. A prospective multicenter study
of venous thromboembolism in patients with newlydiagnosed high-grade glioma: hazard rate and risk
factors. Journal of Neuro-Oncology. 2015;124(2):299-305.
DOI: 10.1007/s11060-015-1840-z
12. Yekula A, Yekula A, Muralidharan K, Kang K,
Carter BS, Balaj L. Extracellular Vesicles in Glioblastoma
Tumor Microenvironment. Frontiers in immunology.
2020;(10):3137. DOI: 10.3389/fimmu.2019.03137
13. Sabbagh Q, André-Grégoire G, Alves-Nicolau
C, Dupont A, Bidère N, Jouglar E, Guével L, Frénel JS,
Gavard J. The von Willebrand factor stamps plasmatic
extracellular vesicles from glioblastoma patients. Scientific
Reports. 2021;11(1):22792. DOI: 10.1038/s41598-021-
02254-7
14. Урнова ЕС, Покровская ОС, Грачева МА,
Васильев СА, Гемджян ЭГ, Тарандовский ИД, Менделеева ЛП. Гиперкоагуляционный синдром
при множественной миеломе. Терапевтический архив. 2014;86(7):73-79. [Urnova ES, Pokrovskaia OS,
Gracheva MA, Vasil'ev SA, Gemdzhian ÉG, Tarandovskiĭ
ID, Mendeleeva LP. Hypercoagulability in multiple
myeloma. Terapevticheskii Arkhiv. 2014. 86(7): 73-79. (In
Russian)]
15. Sjoberg DD, Whiting K, Curry M, Lavery JA,
Larmarange J. Reproducible summary tables with the
gtsummary package. The R Journal 2021;(13):570–80.
DOI: 10.32614/RJ-2021-053
16. Mahajan A, Brunson A, Keegan THM, Rosenberg
A, Wun T. High incidence of venous thromboembolism
and major bleeding in patients with primary CNS
lymphoma. Leukemia and Lymphoma. 2020; 61(11):2605-
2613. DOI: 10.1080/10428194.2020.1780584
17. Perry JR. Thromboembolic disease in patients
with high-grade glioma. Neuro Oncology. 2012;14 (4):73-
80. DOI: 10.1093/neuonc/nos197
18. van Es N, Ventresca M, Di Nisio M, Zhou Q, Noble
S, Crowther M, Briel M, Garcia D, Lyman GH, Macbeth F, Griffiths G, Iorio A, Mbuagbaw L, Neumann I, Brozek J,
Guyatt G, Streiff MB, Baldeh T, Florez ID, Gurunlu Alma
O, Agnelli G, Ageno W, Marcucci M, Bozas G, Zulian
G, Maraveyas A, Lebeau B, Lecumberri R, Sideras K,
Loprinzi C, McBane R, Pelzer U, Riess H, Solh Z, Perry
J, Kahale LA, Bossuyt PM, Klerk C, Büller HR, Akl EA,
Schünemann HJ; IPDMA heparin use in cancer patients
research group. The Khorana score for prediction of venous
thromboembolism in cancer patients: An individual patient
data meta-analysis. Journal of Thrombosis and Haemostasis.
2020;18(8):1940-1951. DOI: 10.1111/jth.14824
19. Han S, Qu FW, Wang PF, Liu YX, Li SW, Yan CX.
Development and validation of a nomogram model based
on hematological indicators for predicting the prognosis
of diffused gliomas. Frontiers in Surgery. 2022;(9):803237.
DOI: 10.3389/fsurg.2022.803237
20. Wang PF, Meng Z, Song HW, Yao K, Duan
ZJ, Yu CJ, Li SW, Yan CX. Preoperative changes in
hematological markers and predictors of glioma grade
and survival. Frontiers in Pharmacology. 2018;9:886. DOI:
10.3389/fphar.2018.00886
21. Zhao C, Li L, Guo X, Song D, Wang M, Zhai Y,
Yang F, Xue Y, Wei X. Preoperative predictors of early
mortality risk in isocitrate dehydrogenase-wild-type
glioblastoma patients treated with standard therapy. Cancer
Management and Research. 2021;(13):1159-1168. DOI:
10.2147/CMAR.S290053
22. Aiyappa-Maudsley R, Chalmers AJ, Parsons
JL. Factors affecting the radiation response in
glioblastoma. Neuro-Oncology Advances. 2022;4(1):156.
DOI: 10.1093/noajnl/vdac156
23. Eisele A, Seystahl K, Rushing EJ, Roth P, Le Rhun
E, Weller M, Gramatzki D. Venous thromboembolic
events in glioblastoma patients: An epidemiological
study. European Journal of Neurology. 2022;29(8):2386-
2397. DOI: 10.1111/ene.15404
24. Guo X, Jiao H, Zhang T, Zhang Y. Pre-Treatment
and Preoperative Neutrophil-to-Lymphocyte Ratio
Predicts Prognostic Value of Glioblastoma: A MetaAnalysis. Brain Sciences. 2022;12(5):675. DOI: 10.3390/
brainsci12050675
25. Lei YY, Li YT, Hu QL, Wang J, Sui AX. Prognostic
impact of neutrophil-to-lymphocyte ratio in gliomas: a
systematic review and meta-analysis. Journal of Surgical
Oncology. 2019;17(1):152. DOI: 10.1186/s12957-019-1686-5
26. Lopes M, Carvalho B, Vaz R, Linhares P.
Influence of neutrophil-lymphocyte ratio in prognosis
of glioblastoma multiforme. Journal of Neuro-Oncology.
2018;136(1):173-180. DOI: 10.1007/s11060-017-2641-3
27. Wang DP, Kang K, Lin Q, Hai J. Prognostic
significance of preoperative systemic cellular
inflammatory markers in gliomas: a systematic review
and meta-analysis. Clinical and Translational Science.
2020;13(1):179-188. DOI: 10.1111/cts.12700
28. Jarmuzek P, Kot M, Defort P, Stawicki J,
Komorzycka J, Nowak K, Tylutka A, Zembron-Lacny A.
Prognostic values of combined ratios of white blood cells
in glioblastoma: a retrospective study. Journal of Clinical
Medicine 2022;11(12):3397. DOI: 10.3390/jcm11123397

Цель исследования. Изучить и сопоставить между собой нарушения метаболизма при аллоксановом диабете, а также оценить целесообразность
применения метформина и инсулина у лабораторных животных на фоне экспериментального диабета.
Материал и методы. Исследование проводили на 30 самках крыс линии Вистар. Лабораторные животные были разделены на 4 группы (контрольная группа, группа с моделированным диабетом, группа с экспериментальным диабетом, которым вводили метформин, группа с экспериментальным диабетом, которым вводили инсулин). Для исследования кровь бралась из ретроорбитальной пазухи глаза. Исследовались биохимические показатели - уровень глюкозы, триглицеридов, общий холестерин, анализ электрофоретических профилей липопротеинов: ЛПОНП, ЛПНП, ЛПВН.
Результаты. Результаты показали, что аллоксан вызывает снижение массы тела экспериментальных животных. Это снижение более выражено
у животных, получавших инсулин. Оценка уровня глюкозы выявила, что у животных получавших метформин в течение 2-х месяцев снижение
уровня глюкозы составило 15%, у животных, получавших инсулин – 56%. Прием метформина вызывал значительное снижение триглицеридемии
после одного месяца лечения с сохранением показателей и во второй месяц. Прием инсулина не вызвал улучшения гипертриглицеридемии после
одного месяца лечения, результат был достигнут только после второго месяца лечения. Введение инсулина и метформина привело к снижению
уровня холестерина после двух месяцев лечения, причем при использовании метформина результат был значимым в течение первого месяца
лечения. При анализе электрофоретических профилей липопротеидов, лечение метформином показало снижение площади ЛПНП. Площади
ЛПОНП и ЛПВП были мало изменены. В случае лечения инсулином зафиксировали улучшение электрофоретического профиля - оценка площадей показала их уменьшение для ЛПОНП, ЛПНП, и ЛПВП.
Заключение. Аллоксан приводит к развитию диабета, который характеризуется гипергликемией, гиперхолестеринемией и гипертриглицеридемией. Введение инсулина и метформина привело к регрессу метаболических нарушений – антигипергликемическое действие, снижение уровня
холестерина, триглицеридов, ЛПОН, ЛПНП, ЛПВП. При сравнительной характеристике инсулина и метформина обнаружено, что инсулин оказывает более сильное гипогликемическое действие, метформин значительнее влияет на уровень триглицеридов и холестерина и действует через
более короткий период времени.

1. Кузнецова ЛА, Давыдова ДВ, Чернавский СВ, Стремоухов АА. Классификация сахарного диабета: новый взгляд
на проблему. Лечащий врач.2022;(5-6):84-90. [Kuznetsova LA,
Davydova DV, Chernavsky SV, Stremoukhov AA. Classification
of diabetes mmellitus: a new look at the problem. The Attending
Physician. 2022;(5-6):84-90. (In Russian)] DОI:10.51793/
OS.2022.25.6.015
2. Даренская МА, Колесникова ЛИ, Колесников СИ.
Окислительный стресс: патогенетическая роль в развитии сахарного диабета и его осложнений, терапевтические подходы
к коррекции. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2021; 2(171):136-149. [Darenskaya MA, Kolesnikova LI,
Kolesnikov SI. Oxidative stress: patogenetic role in the development
of diabetes mellitus and its complications, therapeutic approaches
to correction. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2021;
2(171):136-149. (In Russian)]
3. Яшанова МИ, Щербатюк ТГ, Николаев ВЮ. Валидность моделей экспериментального диабета для изучения окислительного стресса. Журнал медико-биологических
исследований. 2019; 1(7): 66-78. [Yashanova MI, Shcherbatyuk
TG, Nikolaev VU. Validity of experimental diabetes models for
the study of oxidative stress. Journal of Biomedical Research. 2019;
1(7):66-78. (In Russian)] DOI: 10.17238/issn2542-1298.2019.7.1.66
4. Тронько НД, Зак КП. Современные достижения клинической патофизиологии в изучении патогенеза сахарного диабета 1-го и 2-го типа у человека. Международный эндокринологиченский журнал. 2019; 6(15):422-434. [Tronko ND, Zak
KP. Modem achievements of clinical pathophysiology in the study
of the pathogenesis of type1 and type 2 diabetes mellitus in humans.
International Endocrinological Journal. 2019; 6(15):422-434. (In
Russian)] DOI: 10.22141/2224-0721.15.6.2019.185403
5. Батищева ГА, Бибик ЕЮ, Кетова ЕС. Экспериментальные модели сахарного диабета (литературный обзор). Научно-медицинский вестник Центрального Черноземья. 2022;
90:25-31. [Batishcheva GA, Bibik EV, Ketova EU. Experimental
models of diabetes mellitus (Literature review). Scientific and
Medical Bulletin of the Central Chernozem region. 2022; (90):25-31.
(In Russian)]
6. Бафаев ЖТ, Мавланов АА, Хамидова ЗН. Особенности типологических свойств животных в клиническом течении экспериментальной модели аллоксанового диабета. Новый день в медицине. 2022; 1(39):257-263. [Bafaev ZT, Mavlanov
AA, Khamidova ZN. Features of typological ptoperties of animals
in the clinical course of the experimental model of alloxan diabetes.
A New Day in Medicine. 2022; 1(39):257-263. (In Russian)]
7. Косимова ДС. Изучение элементного спектрав крови
у мышей с сахарным диабетом. Современные инновации. 2020;
4(38):11-12. [Kosimova DS. Study of the elemental spectrumm of
blood in the mice with diabetes mellitus. Modern Innovations. 2020;
4(38):11-12. (In Russian)]
8. Ральченко ИВ, Герберт ИЯ, Грачева НВ, Ральченко
ЕС. Состояние липидного обмена, гемокоагуляции и антиоксидантная активность у больных с инсулинзависимым
сахарным диабетом при обычной терапии и терапии дополненной Компливитом. Вестник гинекологии. 2011; 1(7):118-
118. [Ralchenko IV, Herbert IA, Gracheva NV, Ralchenko EC.
The state of lipid metaboism, hemocoagulation and antioxidant
activity in patients with unsulin-dependent diabetes mellitus with
conventional therapy and therapy supplemmented with Complivit.
Bulletion of Gynecology. 2011; 1(7):118-118. (In Russian)]
9. Среднева ЛА, Клюева ЮН, Емельянов ВВ, Мухлынина ЕА, Гетте ИФ, Данилова ИГ. Взаимосвязь между морфофункциональным состоянием эндокринного аппарата
и островковым фиброзом поджелудочной железы старых
крыс с экспериментальным аллоксановым диабетом и при
его коррекции альфа-липоевой кислотой. Вестник уральской медицинской академической науки. 2022; 3(19):210-221.
[Sredneva LA, Klyueva YN, Emelyanov BB, Mukhlynina EA, Gette
IF, Danilova IG. The ralationship between the morphofunctional
state of the endocrine apparatus and islet fibrosis of the pancreas of
old rats with experimental alloxan diabetes and its correction with
alpha-lipoic acid. Bulletin of the Ural Medical Academic Science.
2022; 3(19):210-221. (In Russian)] DOI: 10.22138/2500-0918-
2022-19-3-210-221
10. Деркач КВ, Романова ИВ, Зорина ИИ, Бахтюков АА,
Перминова АА, Иванцов АО, Шпаков АО. Влияние высокой
дозы метформина на метаболические показатели и функциональное состояние печени у мышей линии AGOUTIC
меланокортиновым типом ожирения. Успехи геронтологии. 2019; 3(32):431-438. [Derkach KV, Rommanova IV, Zorina II,
Bakhtyukov AA, Perminova AA, Ivantsov AO, Shpakov AO. The
effect of a high dose of metformmin on metabolic parammeters and
functoinal state of the liver in AGOUTIC mice with mmelanocortin
type of obesity. The Successes of Gerontology. 2019; 3(32):431-438.
(In Russian)]
11. Телушкин ПК, Потапов ПП, Медведева НБ. Инсулиновая гипогликемия и активация глюконеогенеза в печени
крыс с сахарным диабетом. Современные проблемы науки и
образования. 2022; (1):90. [Telushkin PC, Potapov PP, Medvedeva
NB. Insulin hypoglycemia and activation of gluconeogenesis in the
liver of rats with diabetes mellirus. Modern Problems of Science and
Education.2022; (1):90. (In Russian)] DOI: 10.17513/spno.31510
12. Паштаев НП, Поздеева НА, Гаглоев БВ, Школьник
ГС, Крестов ДС, Аль Дарраджи ИОХ. Влияние краткосрочной
инсулинотерапии на концентрацию сосудистого эндотелиального фактора роста А (VEGF-A) во внутриглазной жидкости в эксперименте. Вестник офтальмологии. 2020; 3(136):59-
63. [Pashataev NP, Pozdeyeva NA, Gagloev BV, Shokolnik GS,
Krestov DS, Al Darraji IOH. The effect of short-term insulin
therapy on the concentration of vascular endothelial growth factor
A (VEGF-A) in the intraocular fluid in the experiment. Bulletin of
Ophthalmology. 2020; 3(136):59-63. (In Russian)] DOI: 10.17116/
oftalma202013603159
13. Куркин ДВ, Морковин ЕИ, Бакулин ДА, Горбунова
ЮВ, Стрыгин АВ, Робертус АИ, Макаренко ИЕ, Сапарова ВБ,
Драй РВ, Петров ВИ. Современные представления о патогенезе сахарного диабета 2-го типа. Вестник волгоградского государственного медицинского университета. 2022; 4(19):34-49.
[Kurkin DV, Morkovin EI, Bakulin DA, Gorbunova YV, Strygin
AV, Robertus AI, Makarenko IE, Saparova WB, Dry RV, Petrov VI.
Modern ideas about the pathogenesis of type 2 diabetes mellitus.
Bulletin of the Volgograd State Medical University. 2022; 4(19):34-49.
(In Russian)] DOI: 10.19163/1994-9480-2022-19-4-34-49
14. Телесманич НР, Микашенович ЗИ, Коновальчик
МА. Молекулярно-метаболические механизмы сахарного диабета 1 и 2 типа, лабораторная диагностика. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2022; 7(203):177-184.
[Tyelesmanich NR, Mikashenovich ZI, Konovalchik MA. Molecular
and metabolic mechanisms of type 1 and type 2 diabetes mellitus,
laboratory diagnostics. Experimental and Clinical Gastroenterology.
2022; 7(203):177-184. (In Russian)] DOI: 10.31146/1682-8658-ecg203-7-177-184
15. Вольхина ИВ. Бутолин ЕГ. Оксидативный стресс и
изменения показателей обмена сиалогликоконьюгатов печени крыс с аллоксановым сахарным диабетом. Сахарный диабет. 2022; 3(25):249-255. [ Volkhina IV, Butolin EG. Oxidative
stress and changes in liver sialoglycoconjugate metabolism in rats
with alloxan diabetes mellitus. Diabetes Mellitus. 2022; 3(25):249-
255. (In Russian)] DOI: 10.14341/DM12763

Цель исследования. Оценить возможности использования комплексного анализа содержания некоторых хемокинов сыворотки крови в качестве
диагностических биомаркеров формы тяжести COVID-19 у детей дошкольного возраста.
Материал и методы. Мультиплексный анализ использовался для количественного определения содержания хемокинов CXCL1 (GROα), CXCL5
(ENA-78), CXCL9 (MIG), CXCL11 (I-TAC), CCL3 (MIP-1α), CCL4 (MIP-1β), CCL5 (RANTES), CCL11 (Eotaxin), CCL17 (TARC), CCL20 (MIP-3α) в сыворотке крови с помощью проточной цитометрии у детей с COVID-19 (основная группа, n=21), классифицированный как бессимптомные (n=7),
легкие (n=7) и среднетяжелые (n=7) формы, по сравнению со здоровыми детьми (группа контроля, n=25).
Результаты. Уровни хемокинов CXCL1 (GROα), CXCL5 (ENA-78), CCL3 (MIP-1α), CCL4 (MIP-1β), CCL5 (RANTES), CCL11 (Eotaxin), CCL17
(TARC), CCL20 (MIP-3α) у дошкольников выше, чем у здоровых. Концентрация CXCL9 (MIG) и CXCL11 (I-TAC) не различалась между двумя группами. Не зарегистрировано статистически значимых различий между содержанием хемокинов сыворотки крови и тяжестью течения
COVID-19. Комплексная оценка уровней CXCL1 (GROα), CXCL5 (ENA-78), CXCL9 (MIG), CXCL11 (I-TAC), CCL3 (MIP-1α), CCL4 (MIP-1β), CCL5
(RANTES), CCL11 (Eotaxin), CCL17 (TARC), CCL20 (MIP-3α) служит показателями ранней диагностики тяжести COVID-19 у детей.
Заключение. Определение иммунных биомаркеров может помочь дифференцировать различные варианты формы тяжести COVID-19 у детей
дошкольного возраста на момент поступления в стационар. Подробный анализ хемокинового профиля представляет дополнительную информацию для оценки степени тяжести COVID-19 у детей, что будет определять дальнейшую тактику ведения пациентов.

1. Chi Y, Ge Y, Wu B, Zhang W, Wu T, Wen T, Liu
J, Guo X, Huang C, Jiao Y, Zhu F, Zhu B, Cui L. Serum
Cytokine and Chemokine Profile in Relation to the
Severity of Coronavirus Disease 2019 in China. The
Journal of Infectious Diseases. 2020;4;222(5):746-754.
DOI: 10.1093/infdis/jiaa363
2. Bacon K, Baggiolini M, Broxmeyer H, Horuk
R, Lindley I, Mantovani A, Maysushima K, Murphy
P, Nomiyama H, Oppenheim J, Rot A, Schall T, Tsang
M, Thorpe R, Van Damme J, Wadhwa M, Yoshie O,
Zlotnik A, Zoon K; IUIS/WHO Subcommittee on
Chemokine Nomenclature. Chemokine/chemokine
receptor nomenclature. Journal of interferon and cytokine
research: the official journal of the International Society
for Interferon and Cytokine Research. 2002;22(10):1067-8.
DOI: 10.1089/107999002760624305
3. Sozzani S, Allavena P, Vecchi A, Van Damme J,
Mantovani A. Chemokine receptors: interaction with
HIV-1 and viral-encoded chemokines. Pharmaceutica
acta Helvetiae. 2000;74(2-3):305-12. DOI: 10.1016/s0031-
6865(99)00040-0
4. Rotondi CF, Latrofa M, Chiovato L. Role of
chemokines in thyroid cancermicroenvironment: is CXCL8
the main player? Frontiers in Endocrinology. (Lausanne).
2018; (9):314.DOI: 10.3389/fendo.2018.00314
5. Rotondi M, Chiovato L, Romagnani S, Serio
M, Romagnani P. Role of chemokines in endocrine
autoimmune diseases. Endocrine Reviews. 2007;28(5):492-
520. DOI: 10.1210/er.2006-0044
6. Bachelerie F, Ben-Baruch A, Burkhardt AM,
Combadiere C, Farber JM, Graham GJ, Horuk R,
Sparre-Ulrich AH, Locati M, Luster AD, Mantovani A,
Matsushima K, Murphy PM, Nibbs R, Nomiyama H,
Power CA, Proudfoot AE, Rosenkilde MM, Rot A, Sozzani
S, Thelen M, Yoshie O, Zlotnik A. International Union
of Basic and Clinical Pharmacology. LXXXIX. Update
on the extended family of chemokine receptors and
introducing a new nomenclature for atypical chemokine
receptors. Pharmacological Reviews. 2013;11;66(1):1-79.
DOI: 10.1124/pr.113.007724
7. Tiberio L, Del Prete A, Schioppa T, Sozio F,
Bosisio D, Sozzani S. Chemokine and chemotactic
signals in dendritic cell migration. Cellular and Molecular
Immunology. 2018;15(4):346-352. DOI: 10.1038/s41423-
018-0005-3
8. Coperchini F, Chiovato L, Croce L, Magri F,
Rotondi M. The cytokine storm in COVID-19: An overview
of the involvement of the chemokine/chemokine-receptor
system. Cytokine and Growth Factor Reviews. 2020;(53):25-
32. DOI: 10.1016/j.cytogfr.2020.05.003
9. Gebremeskel S, Schanin J, Coyle KM, Butuci
M, Luu T, Brock EC, Xu A, Wong A, Leung J, Korver W,
Morin RD, Schleimer RP, Bochner BS, Youngblood BA.
Mast Cell and Eosinophil Activation Are Associated
With COVID-19 and TLR-Mediated Viral Inflammation:
Implications for an Anti-Siglec-8 Antibody. Frontiers
in Immunology. 2021;10(12):650331. DOI: 10.3389/
fimmu.2021.650331
10. Xu ZS, Shu T, Kang L, Wu D, Zhou X, Liao BW,
Sun XL, Zhou X, Wang YY. Temporal profiling of plasma
cytokines, chemokines and growth factors from mild,
severe and fatal COVID-19 patients. Signal Transduction
and Targeted Therapy. 2020;19;5(1):100. DOI: 10.1038/
s41392-020-0211-1
11. Yang Y, Shen C, Li J, Yuan J, Wei J, Huang F, Wang
F, Li G, Li Y, Xing L, Peng L, Yang M, Cao M, Zheng H, Wu
W, Zou R, Li D, Xu Z, Wang H, Zhang M, Zhang Z, Gao
GF, Jiang C, Liu L, Liu Y. Plasma IP-10 and MCP-3 levels
are highly associated with disease severity and predict
the progression of COVID-19. The Journal of Allergy
and Clinical Immunology. 2020;146(1):119-127.e4. DOI:
10.1016/j.jaci.2020.04.027
12. Zhang Y, Xu C, Agudelo Higuita NI, Bhattacharya
R, Chakrabarty JH, Mukherjee P. Evaluation of I-TAC as
a potential early plasma marker to differentiate between
critical and non-critical COVID-19. Cell Stress. 2021;
21;6(1):6-16. DOI: 10.15698/cst2022.01.262
13. Методические рекомендации: особенности клинических проявлений и лечения заболевания, вызванного новой коронавирусной инфекцией (COVID-19)
у детей; версия 1 (утв. Министерством здравоохранения Российской Федерации 24.04.2020). Министерство
здравоохранения Российской Федерации. 2020. Ссылка активна на 02.03.2023. [Guidelines: features of clinical
symptoms and treatment of the disease caused by a new
coronavirus infection (COVID-19) in children; version 1
(approved by the Ministry of Health of the Russian Federation
24.04.2020). Ministry of Health of the Russian Federation.
2020. Accessed March 02, 2023. (In Russian).] https://static-3.
rosminzdrav.ru/system/attachments/attaches/000/050/100/
original/24042020_child_COVID-19_1_Final.pdf
14. Приказ Министерства здравоохранения РФ
от 19 марта 2020 г. N 198н «О временном порядке организации работы медицинских организаций в целях
реализации мер по профилактике и снижению рисков
распространения новой коронавирусной инфекции
COVID-19». Ссылка активна на 02.03.2023. [Order of
the Ministry of Health of the Russian Federation №198n
from March 19th 2020 «On the temporary procedure for
organizing the work of medical organizations in order to
implement measures to prevent and reduce the risks of
the spread of a new coronavirus infection COVID-19».
Accessed March 02, 2023. (In Russian)] https://base.
garant.ru/73769697/
15. Мудров ВА. Алгоритмы статистического
анализа данных биомедицинских исследований с помощью пакета программ SPSS (доступным языком):
учебное пособие. М. : Логосфера. 2022. 143 c. [Mudrov
VA. Algorithms for statistical analysis of biomedical
research data using the SPSS software package (in plain
language): a tutorial. 2022. 143 p. (In Russian)]
16. Kalinina O, Golovkin A, Zaikova E, Aquino A,
Bezrukikh V, Melnik O, Vasilieva E, Karonova T, Kudryavtsev
I, Shlyakhto E. Cytokine Storm Signature in Patients with
Moderate and Severe COVID-19. International Journal of
Molecular Sciences. 2022;10;23(16):8879. DOI: 10.3390/
ijms23168879 
17. Guo L, Li N, Yang Z, Li H, Zheng H, Yang J,
Chen Y, Zhao X, Mei J, Shi H, Worthen GS, Liu L. Role of
CXCL5 in Regulating Chemotaxis of Innate and Adaptive
Leukocytes in Infected Lungs Upon Pulmonary Influenza
Infection. Frontiers in Immunology. 2021;18;12:785457.
DOI: 10.3389/fimmu.2021.785457
18. Mei J, Liu Y, Dai N, Favara M, Greene T, Jeyaseelan
S, Poncz M, Lee JS, Worthen GS. CXCL5 regulates
chemokine scavenging and pulmonary host defense to
bacterial infection. Immunity. 2010;23;33(1):106-17. DOI:
10.1016/j.immuni.2010.07.009
19. Ozsurekci Y, Aykac K, Er AG, Halacli B, Arasli
M, Oygar PD, Gürlevik S, Cura Yayla BC, Karakaya J, Alp
A, Topeli A, Cengiz AB, Akova M, Ceyhan M. Predictive
value of cytokine/chemokine responses for the disease
severity and management in children and adult cases with
COVID-19. Journal of Medical Virology. 2021;93(5):2828-
2837. DOI: 10.1002/jmv.26683
20. Moratto D, Giacomelli M, Chiarini M, Savarè
L, Saccani B, Motta M, Timpano S, Poli P, Paghera S,
Imberti L, Cannizzo S, Quiros-Roldan E, Marchetti
G, Badolato R. Immune response in children with
COVID-19 is characterized by lower levels of T-cell
activation than infected adults. European Journal of
Immunology. 2020;50(9):1412-1414. DOI: 10.1002/
eji.202048724
21. Venkataraman A, Kumar NP, Hanna LE, Putlibai
S, Karthick M, Rajamanikam A, Sadasivam K, Sundaram
B, Babu S. Plasma biomarker profiling of PIMS-TS,
COVID-19 and SARS-CoV2 seropositive children - a
cross-sectional observational study from southern India.
2021;(66):103317. DOI: 10.1016/j.ebiom.2021.103317
22. Lippi G, Henry BM. Eosinophil count in severe
coronavirus disease 2019. QJM: monthly journal of the
Association of Physicians. 2020;1;113(7):511-512. DOI:
10.1093/qjmed/hcaa137
23. Grant RA, Morales-Nebreda L, Markov NS,
Swaminathan S, Querrey M, Guzman ER, Abbott DA,
Donnelly HK, Donayre A, Goldberg IA, Klug ZM,
Borkowski N, Lu Z, Kihshen H, Politanska Y, Sichizya
L, Kang M, Shilatifard A, Qi C, Lomasney JW, Argento
AC, Kruser JM, Malsin ES, Pickens CO, Smith SB,
Walter JM, Pawlowski AE, Schneider D, Nannapaneni
P, Abdala-Valencia H, Bharat A, Gottardi CJ, Budinger
GRS, Misharin AV, Singer BD, Wunderink RG; NU
SCRIPT Study Investigators. Circuits between infected
macrophages and T cells in SARS-CoV-2 pneumonia.
Nature. 2021;590(7847):635-641. DOI: 10.1038/s41586-
020-03148-w
24. Soares-Schanoski A, Sauerwald N, Goforth
CW, Periasamy S, Weir DL, Lizewski S, Lizewski R, Ge
Y, Kuzmina NA, Nair VD, Vangeti S, Marjanovic N,
Cappuccio A, Cheng WS, Mofsowitz S, Miller CM, Yu
XB, George MC, Zaslavsky E, Bukreyev A, Troyanskaya
OG, Sealfon SC, Letizia AG, Ramos I. Asymptomatic
SARS-CoV-2 Infection Is Associated With Higher
Levels of Serum IL-17C, Matrix Metalloproteinase 10
and Fibroblast Growth Factors Than Mild Symptomatic
COVID-19. Frontiers in Immunology. 2022;5(13):821730.
DOI: 10.3389/fimmu.2022.821730
25. Ngo B, Lapp SA, Siegel B, Patel V, Hussaini
L, Bora S, Philbrook B, Weinschenk K, Wright L,
Anderson EJ, Rostad CA, Gombolay GY. Cerebrospinal
fluid cytokine, chemokine, and SARS-CoV-2 antibody
profiles in children with neuropsychiatric symptoms
associated with COVID-19. Multiple Sclerosis and
Related Disorders. 2021;(55):103169. DOI: 10.1016/j.
msard.2021.103169
26. Önal P, Kılınç AA, Aygün FD, Aygün F, Durak
C, Akkoç G, Ağbaş A, Elevli M, Çokuğraş H. Diagnostic
and Prognostic Biomarkers of Coronavirus Disease 2019
in Children. Journal of Tropical Pediatrics. 2022;3;68(2):f
mac003. DOI: 10.1093/tropej/fmac003

Цель исследования. Изучить в сравнительном аспекте течение раневого процесса на модели гнойной раны при применении разработанного
многокомпонентного раневого покрытия.
Материал и методы. Материалом для исследования послужило разработанное авторами и запатентованное (патент на изобретение 2603490)
раневое покрытие в виде пленки, которое применяли для лечения на модели гнойной раны в опытной группе. В контрольной группе животных
лечение проводили официальной диоксометилтетрагидропиримидиновой мазью с хлорамфениколом. Предварительно официальный препарат
и разработанное раневое покрытие были изучены на предмет спектра противомикробной и фунгицидной активности, а также была изучена
местноанестезирующая активность разработанного покрытия в сравнении с лидокаиновой мазью. В последующем был выполнен эксперимент
на 72 лабораторных крысах, разделенных на две равные группы, которым моделировали гнойную рану. Течение раневого процесса оценивали
по внешнему состоянию раны, рассчитывали процент уменьшения площади ран, скорость заживления, уровень обсемененности ран, а также
проводили подсчет клеточных элементов на микропрепаратах срезов ран (процентное содержание фибробластов, макрофагов, лимфоцитов и
гранулоцитов), рассчитывали клеточный индекс и определяли уровень рН раневой поверхности.
Результаты. В опытной группе сокращение площади ран наступало быстрее по сравнению с контрольной группой, и к 15 суткам сократилась
более чем на 98%, а в контрольной на 88,3%, максимальная скорость заживления приходилась на первые 5 суток эксперимента. В опытной группе
достоверно быстрее происходило снижение обсемененности раны, и восстанавливались показатели рН раневой поверхности. Морфометрические показатели указывали на быстрый прирост фибробластов и снижение уровня гранулоцитов в опытной группе по сравнению с контрольной,
различия были статистически достоверны. Преобладание пролиферативных процессов над воспалительными наступало достоверно раньше в
опытной группе (клеточный индекс был более 1 уже на 3 сутки лечения).
Заключение. Комплексное изучение особенностей течения раневого процесса показало, что применение разработанного раневого покрытия
благоприятно влияло на процесс заживления гнойной раны.

1. Martinengo L, Olsson M, Bajpai R, Soljak M, Car J,
Järbrink K, Upton Z, Schmidtchen A. Prevalence of chronic
wounds in the general population: systematic review and metaanalysis of observational studies. Annals of Epidemiology.
2019;(29):8-15. DOI: 10.1016/j.annepidem.2018.10.005
2. Курлаев ПП, Гриценко ВА, Белозерцева ЮП.
Предикторы неблагоприятного течения раневого процесса в послеоперационном периоде у больных с гнойно-некротическими осложнениями нейропатической
и нейроишемической форм синдрома диабетической
стопы. Курский научно-практический вестник «Человек
и его здоровье». 2020;(4):4-10. [Kurlaev PP, Gritsenko VA,
Belozertseva YuP. Predictors of unfavorable course of wound
process in postoperative period in patients with purulentnecrotic complications of neuropathic and neuroischemic
forms of diabetic foot syndrome. Kursk Scientific and
Practical Bulletin Man and His Health. 2020;(4):4-10. (In
Russian)] DOI: 10.21626/vestnik/2020-4/01
3. Каторкин СЕ, Быстров СА, Лисин ОЕ, Розанова
АА, Безбородов АИ. Оценка эффективности применения современных перевязочных материалов в комплексном лечении гнойных ран. Амбулаторная хирургия.
2019;(1-2):146-152. [Katorkin SE, Bystrov SA, Lisin OE,
Rozanova AA, Bezborodov AI. Evaluation of the efficacy
of modern wound care dressings in the complex treatment
of purulent wounds. Ambulatornaya khirurgiya. 2019;(1-
2):146-152. (In Russian)] DOI:10.21518/1995-1477-2019-1-
2-146-152
4. Остроушко АП, Глухов АА, Андреев АА, Маркин
ДА, Лаптиёва АЮ. Физико-химические основы инновационных методов и технологий в лечении ран мягких
тканей. Вестник Дагестанской государственной медицинской академии. 2021;(4(41)):64-72. [Ostroushko AP, Glukhov
AA, Andreev AA, Markin DA, Laptiyova AYu. Physical and
chemical bases of innovative methods and technologies in the
treatment of soft tissue wounds. Bulletin of the Dagestan State
Medical Academy. 2021;(4(41)):64-72. (In Russian)]
5. Архипов ДВ, Андреев АА, Атякшин ДА, Глухов
АА, Остроушко АП. Струйная кислородо-сорбционная
обработка в местном лечении гнойных ран мягких тканей. Вестник экспериментальной и клинической хирургии. 2020;13(1):41-45. [Arkhipov DV, Andreev AA, Atyakshin
DA, Glukhov AA, Ostroushko AP. Inkjet Oxygen-Sorption
Treatment in Local Treatment Purulent Soft Tissue Wounds.
Journal of Experimental and Clinical Surgery. 2020;13(1):41-
45. (In Russian)] DOI: 10.18499/2070-478X-2020-13-1-41-45
6. Морозов АМ, Сергеев АН, Кадыков ВА, Аскеров ЭМ, Жуков СВ, Минакова ЮЕ, Морозова АД, Беляк
МА. О развитии антибиотикорезистентности в аспекте
поликлинической службы. Вестник современной клинической медицины. 2021;14(5):43-50. [Morozov AM, Sergeev
AN, Kadykov VA, Askerov EM, Zhukov SV, Minakova
JuE, Morozova AD, Belyak MA. Development of antibiotic
resistance in the aspect of outpatient services. Bulletin of
Contemporary Clinical Medicine. 2021;14(5):43-50. (In
Russian)] DOI: 10.20969/VSKM.2021.14(5).43-50.
7. Намазова-Баранова ЛС, Баранов АА. Антибиотикорезистентность в современном мире. Педиатрическая фармакология. 2017;14(5):341-354. [NamazovaBaranova LS, Baranov AA. Antibiotic Resistance in Modern
World. Pediatric Pharmacology. 2017;14(5):341-354. (In
Russian)] DOI: 10.15690/pf.v14i5.1782
8. Морозов АМ, Сергеев АН, Жуков СВ, Морозова АД, Муравлянцева ММ, Соболь ЕА. Золотистый
стафилококк и его роль в развитии инфекции области
хирургического вмешательства. Врач. 2022;33(10):33-
36. [Morozov AM, Sergeev AN, Zhukov SV, Morozova AD,
Muravlyantseva MM, Sobol EA. Staphylococcus aureus and
its role in the development of surgical site infection. Vrach
(The Doctor). 2022;33(10):33-36. (In Russian)] DOI:
10.29296/25877305-2022-10-05
9. Hatlen TJ, Miller LG. Staphylococcal Skin and Soft
Tissue Infections. Infectious Disease Clinics of North America.
2021;35(1):81-105. DOI: 10.1016/j.idc.2020.10.003
10. Суббот АМ, Нестерова ТВ, Габашвили АН, Егорова ГБ, Аверич ВВ. Цитотоксичность бензалкония хлорида в составе антиглаукомного препарата в эксперименте на культуре клеток лимба роговицы и возможности ее
снижения. Экспериментальная и клиническая фармакология. 2019;82(7):33-37. [Subbot AM, Nesterova TV, Gabashvili
AN, Egorova GB, Averich VV. Experimental study of the
cytotoxicity of benzalkonium chloride as a component of the
antiglaucoma preparation on the culture of corneal limbal cells
and the possibility of cytotoxicity reduction. Experimental and
Clinical Pharmacology. 2019;82(7):33-37. (In Russian)] DOI:
10.30906/0869-2092-2019-82-7-33-37
11. Бутрин ЯЛ, Чмырёв ИВ. Сравнительная характеристика различных методов лечения глубоких ожогов лица. Вестник Российской Военно-медицинской академии. 2017;(3(59)):56-62. [Butrin YaL, Chmyrev IV. The
comparative characteristics of different methods of treatment
of deep burns of the face. Bulletin of the Russian Military
Medical Academy. 2017;(3(59)):56-62. (In Russian)]
12. Безусова НИ, Цунтимагомедова ПН, Климкина ЕА. Изучение современной номенклатуры мазей
для лечения ран и ожогов. Известия Российской Военно-медицинской академии. 2019;38(S1-1):43-44. [Bezusova
NI, Tsuntimagomedova PN, Klimkina EA. The study of
the modern nomenclature of ouintments for treatment
of wounds and burns. Russian Military Medical Academy
Reports. 2019;38(S1-1):43-44. (In Russian)]

Бактериальные церебральные аневризмы - грозное осложнение инфекционного эндокардита, их разрыв сопровождается высокой летальностью. Лечение данной патологии в остром периоде кровоизлияния представляет сложную задачу. В настоящее время отсутствуют стандарты и клинические рекомендации по ведению таких пациентов, а современные публикации представлены только анализом отдельных серий
наблюдений. В статье представлен опыт лечения 10 пациентов с бактериальными аневризмами в остром и подостром периодах инфекционного
эндокардита. 6 пациентам проведено микрохирургическое, а 1 — рентгенэндоваскулярное выключение аневризмы. Во всех случаях аневризма
выключалась вместе с несущим сосудом. Ни в одном наблюдении после операции не отмечалось появления (нарастания) неврологического дефицита или формирования зон ишемии в области хирургии. В связи с этим деструктивные вмешательства при дистальной локализации бактериальных аневризм являются безопасным методом лечения в большинстве случаев.

1. Данилов АИ, Козлов СН, Сливкин МД.
Неврологические осложнения инфекционного эндокардита. Клиническая фармакология и
терапия. 2020;29(1):48-52. [Danilov AI, Kozlov
SN, Slivkin MD. Neurological complications of
infective endocarditis. Clinical Pharmacology And
Therapy. 2020;29(1):48-52. (In Russian)]
2. Люсов ВА, Соболева ВН, Евсиков ВМ. К вопросу о микотических аневризмах при инфекционном эндокардите. Лечебное дело. 2004;(2):72-76.
[Lyusov VA, Soboleva VN, Evsikov VM. To the question
of mycotic aneurysms in infective endocarditis. Medical
Business. 2004;(2):72-76. (In Russian)]
3. Alawieh А, Chaudry MI, Turner RD. Infectious
intracranial aneurysms: a systematic review of
epidemiology, management, and outcomes. Journal of
NeuroInterventional Surgery 2018;10(7):708-716.
4. Allen LM, Fowler AM, Walker C Retrospective
review of cerebral mycotic aneurysms in 26 patients:
focus on treatment in strongly immunocompromised
patients with a brief literature review. American Journal of
Neuroradiology. 2013;34(4):823-827.
5. Ding D, Raper DM, Carswell AJ.
Endovascular stenting for treatment of mycotic
intracranial aneurysms. Journal of Clinical
Neuroscience. 2014;21(7):1163-1168.
6. Ducruet AF, Hickman ZL, Zacharia BE.
Intracranial infectious aneurysms: a comprehensive
review. Neurosurgical Review. 2010;33(1):37-46.
7. Esenkaya A, Duzgun F, Cinar C. Endovascular
treatment of intracranial infectious. Neuroradiology.
2016;58(3):277-284.
8. FukudaW, Daitoku K, Minakawa M. Infective
endocarditis with cerebrovascular complications: timing
of surgical intervention. Interactive Cardiovascular and
Thoracic Surgery. 2012;14(1):26-30.
9. Fusco MR, Stapleton CJ, Griessenaue CJ.
Endovascular treatment of intracranial infectious aneurysms
in eloquent cortex with super-selective provocative
testing: Case series and literature review. Interventional
Neuroradiology. 2016;229(2):48-152.
10. Glucksman A, Naut E. Cerebral aneurysm from
cardiobacterium hominis endocarditis. Connecticut
Medicine. 2016;80(5):297-300.

Цель исследования. Изучение причин кровотечений после дуоденумсохраняющих резекций, и разработка тактики хирургической коррекции.
Материал и методы. Обследовано 164 больных хроническим панкреатитом. Средний возраст больных достигал 47,5 лет. Мужчин было 122
(74,4%), женщин – 42 (25,6%). В анамнезе перенесенный острый панкреатит был у 47. Операция Фрея была выполнена 157 (95,7%) больным, семи
(4,3%) была выполнена операция Бегера. Все больные обследованы с применением клинических анализов, компьютерной томографии с болюсным контрастированием, в ряде случае ЭУС.
Результаты. Кровотечения в просвет панкреатокишечного анастомоза возникли у 14 (8,5%) больных. Летальность составила 4% (7 больных). У 5
(3%) больных предпринята экстренная катетеризация и эмболизация гастродуоденальной артерии. В 4 случаях достигнут стойкий гемостаз. В случае,
когда не представлялось возможным выполнить ангиографию предпринята релапаротомия, снятие передней губы панкреатокишечного анастомоза,
ревизия анастомотической камеры, промывание, гемостаз. После эмболизации у одного больного регистрировались признаки острого панкреатита. В
двух наблюдениях возникала несостоятельность панкреатокишечного анастомоза. У одной больной возник рецидив кровотечения после прошивания.
Предложена технология профилактики кровотечений, включающая применение оригинального фибринового композита в анастомотическую камеру.
Заключение. Кровотечения в просвет панкреатокишечного анастомоза после операции Фрея характеризуется снижением артериального давления и появлением мелены. Наиболее точная диагностика осуществляется ангиографией после катетеризации гастродуоденальной артерии.
Последующая эмболизация может быть эффективной. При тяжелом состоянии больного показана экстренная релапаротомия, снятие передней
губы панкреатокишечного анастомоза и осуществление гемостаза путем прошивания паренхимы с последующим восстановлением целостности
анастомоза. Применение оригинального фибринового композита позволяет уменьшить риск возникновения кровотечения.

1. Petrov MS, Yadav D. Global epidemiology
and holistic prevention of pancreatitis. Nature Reviews
Gastroenterology and Hepatology. 2019;16(3):175-184.
DOI: 10.1038/s41575-018-0087-5
2. Kichler A, Jang S. Chronic Pancreatitis:
Epidemiology, Diagnosis, and Management
Updates. Drugs. 2020;80(12):1155-1168. DOI:10.1007/
s40265-020-01360-6
3. Beyer G, Hoffmeister A, Lorenz P, Lynen P, Lerch
MM, Mayerle J. Acute and Chronic Pancreatitis. Deutsches
Ärzteblatt International. 2022;119(29-30):495-501.
DOI:10.3238/arztebl.m2022.0223
4. Haber PS, Kortt NC. Alcohol use disorder and
the gut. Addiction. 2021;116(3):658-667. DOI:10.1111/
add.15147
5. Hammad AY, Ditillo M, Castanon L.
Pancreatitis. Surgical Clinics of North America.
2018;98(5):895-913. DOI:10.1016/j.suc.2018.06.001
6. Ray S, Basu C, Dhali A, Dhali GK. Frey procedure
for chronic pancreatitis: A narrative review. Annals of
Medicine and Surgery (Lond). 2022;80:104229. Published
2022 Aug 4. DOI:10.1016/j.amsu.2022.104229
7. Sato H, Ishida M, Motoi F, et al. Frey's procedure
for chronic pancreatitis improves the nutritional status
of these patients. Surgery Today. 2018;48(1):80-86.
DOI:10.1007/s00595-017-1557-z
8. Frey CF, Mayer KL. Comparison of local
resection of the head of the pancreas combined with
longitudinal pancreaticojejunostomy (Frey procedure)
and duodenum-preserving resection of the pancreatic head (Beger procedure). World Journal Surgery. 2003;
(27): 11: 1217-1230. doi: 10.1007/s00268-003-7241-z.
9. Gloor B, Friess H, Uhl W, Büchler MW, A
Modified Technique of the Beger and Frey Procedure in
Patients with Chronic Pancreatitis. Digestive Surgery. 2001;
(18): 21-25. DOI: 10.1159/000050092
10. Bassi C, Marchegiani G, Dervenis C, Sarr M,
Abu Hilal M, Adham M, Allen P, Andersson R, Asbun
HJ, Besselink MG, Conlon K, Del Chiaro M, Falconi M,
Fernandez-Cruz L, Fernandez-Del Castillo C, Fingerhut
A, Friess H, Gouma DJ, Hackert T, Izbicki J, Lillemoe
KD, Neoptolemos JP, Olah A, Schulick R, Shrikhande SV,
Takada T, Takaori K, Traverso W, Vollmer CR, Wolfgang
CL, Yeo CJ, Salvia R, Buchler M; International Study
Group on Pancreatic Surgery (ISGPS). The 2016 update
of the International Study Group (ISGPS) definition and
grading of postoperative pancreatic fistula: 11 Years After.
2017;161(3):584-591. DOI: 10.1016/j.surg.2016.11.014
11. Воробей АВ, Шулейко АЧ, Гришин ИН, Лурье
ВН, Орловский ЮН, Вижинис ЮИ, Бутра ЮВ, Лагодич НА. Послеоперационные осложнения резекционно-дренирующих операций на поджелудочной железе
у пациентов с хроническим панкреатитом. Кубанский
научный медицинский вестник. 2013;7(142):68-73.
[Vorobei AV, Shuleiko ACh, Grishin IN, Lur’e VN, Orlovsky
YuN, Vizhinis YuI, Butra YuV, Lagodich NA. Postoperative
complications of resection-drainage operations on the
pancreas in patients with chronic pancreatitis. Kuban
Scientific Medical Bulletin. 2013;7(142):68-73. (In Russian)]
12. След НЮ, След ОН, Мерзликин НВ, Цхай
ВФ, Наркевич АН, Бушланов ПС. Анализ ближайших и отдаленных результатов традиционных дуоденумсохраняющих резекций головки поджелудочной
железы и оригинальной резекционно-дренирующей
методики при хроническом панкреатите. Хирургия.
Журнал им. Н.И. Пирогова. 2021;(8):116-124. [Sled
NY, Sled ON, Merzlikin NV, Tskhai VF, Narkevich AN,
Bushlanov PS. Analysis of the immediate and long-term
results of traditional duodenum-preserving resections of
the pancreatic head and the original resection-drainage
technique in chronic pancreatitis. Pirogov Journal of
Surgery. 2021;(8):116-124. (In Russian)] DOI:10.17116/
hirurgia2021081116
13. Кригер АГ, Горин ДС, Гоев АА, Варава АБ,
Берелавичус СВ, Ахтанин ЕА. Послеоперационное
кровотечение в хирургии поджелудочной железы. Анналы хирургической гепатологии. 2017;2(22):36-44.
[Krieger AG, Gorin DS, Goev AA, Varava AB, Berelavichus
SV, Akhtanin EA. Postoperative bleeding in pancreatic
surgery. Annals of Surgical Hepatology. 2017;2(22):36-44.
(In Russian)] DOI: 10.16931/1995-5464.2017236-44
14. Пропп АР, Деговцов ЕН. Сравнительный анализ результатов различных способов резекции головки поджелудочной железы при хроническом панкреатите. Журнал им. Н. В. Склифосовского Неотложная
медицинская помощь. 2020;2(9):238-250. [Propp AR,
Degovtsov EN. Comparative analysis of the results of
various methods of pancreatic head resection in chronic
pancreatitis. Russian Sklifosovsky Journal of "Emergency
Medical Care. 2020;2(9):238-250. (In Russian)] DOI:
10.23934/2223-9022-2020-9-2-238-250 
15. Патент РФ на изобретение
№2749983/21.06.2021 Лубянский ВГ, Сероштанов ВВ,
Момот АП. Способ герметизации панкреато-кишечного анастомоза с применением фибринового
композита. Ссылка активна на 05.10.2022 [Patent RU
№2749983/June 21, 2021, Lubyanskii VG., Seroshtanov
VV., Momot AP A method for sealing pancreatointestinal anastomosis using a fibrin composite. Accessed
October 05, 2022.(In Russian)]. https://findpatent.ru/
patent/274/2749983.html

Беременность, наступившая с применением вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ), имеет высокие акушерские и перинатальные риски, к которым относится приращение плаценты. Частота приращения плаценты возрастает как при использовании ВРТ в целом, так
и при отдельных процедурах - криоконсервация эмбрионов, заместительная гормональная терапия при переносе эмбриона. В статье сообщается
о двух случаях благоприятного исхода доношенной беременности, наступившей с применением ВРТ и осложненной частичным приращением
плаценты. В обоих случаях выполнено плановое кесарево сечение. Интраоперационно диагностировано частичное приращение плаценты, объем
операции расширен и выполнена резекция и реконструкция стенки матки. Кровопотеря во время операции 1100,0 мл и 1450,0 мл. Послеоперационный период протекал без особенностей. Через 2 и 3 месяца после операции хорионический гонадотропин в крови <2 мМЕ/мл

1. Matsuzaki S, Ueda Y, Nagase Y, Matsuzaki S,
Kakuda M, Kakuda S, Sakaguchi H, Hisa T, Kamiura
S. Placenta Accreta Spectrum Disorder Complicated
with Endometriosis: Systematic Review and MetaAnalysis. Biomedicines. 2022;10(2):390. DOI: 10.3390/
biomedicines10020390
2. Kong F, Fu Y, Shi H, Li R, Zhao Y, Wang Y,
Qiao J. Placental Abnormalities and Placenta-Related
Complications Following In-Vitro Fertilization: Based
on National Hospitalized Data in China. Frontiers
in Endocrinology. 2022;(13):924070. DOI: 10.3389/
fendo.2022.924070
3. Tanaka H, Tanaka K, Osato K, Kusaka
H, Maegawa Y, Taniguchi H, Ikeda T. Evaluation
of Maternal and Neonatal Outcomes of Assisted
Reproduction Technology: A Retrospective Cohort
Study. Medicina (Kaunas, Lithuania). 2020;56(1):32. DOI:
10.3390/medicina56010032
4. Ogawa K, Jwa SC, Morisaki N, Sago H. Risk factors
and clinical outcomes for placenta accreta spectrum with
or without placenta previa. Archives of Gynecology and
Obstetrics. 2022;305(3):607-615. DOI: 10.1007/s00404-
021-06189-2
5. Roque M, Valle M, Sampaio M, Geber S.
Obstetric outcomes after fresh versus frozen-thawed
embryo transfers: A systematic review and meta-analysis.
JBRA assisted reproduction. JBRA Assist Reproduction.
2018;22(3):253-260. DOI: 10.5935/1518-0557.20180049
6. Sakai Y, Ono M, Iizuka T, Kagami K, Masumoto S,
Nakayama M, Nakade K, Shitano Y, Yamazaki R, Fujiwara
H. Embryo transfer associated with hormone replacement
therapy cycles using assisted reproductive technology
increases placenta accrete spectrum. The Journal of
Obstetrics and Gynaecology Research. 2019;45(12):2394-
2399. DOI: 10.1111/jog.14111
7. Imafuku H, Tanimura K, Shi Y, Uchida A,
Deguchi M, Terai Y. Clinical factors associated with a
placenta accreta spectrum. Placenta. 2021;(112):180-184.
DOI: 10.1016/j.placenta.2021.08.001
8. Wang J, Liu Q, Deng B, Chen F, Liu X, Cheng
J. Pregnancy outcomes of Chinese women undergoing
IVF with embryonic cryopreservation as compared to
natural conception. BMC Pregnancy and Childbirth.
2021;21(1):39. DOI: 10.1186/s12884-020-03486-7
9. Барановская ЕИ, Воронецкий АН. Мультидисциплинарный подход в хирургическом лечении
placenta accreta. Проблемы репродукции. 2022; 28(3):120
-127. [Baranouskaya EI, Voronetsky AN. Multidisciplinary
approach in placenta accreta surgical treatment. Russian
Journal of Human Reproduction. 2022; 28(3):120-127.
(In Russian)] DOI: 10.17116/repro202228031120
10. Chevalier G, Devisme L, Coulon C. Placenta
du spectre accreta : prise en charge et morbidité dans
une maternité française de niveau 3 [Placenta accreta
spectrum disorder: Management and morbidity in a
French type-3 maternity]. Gynécologie, obstétrique,
fertilité & sénologie. 2020;48(6):500-505. (In French) DOI:
10.1016/j.gofs.2020.03.010
11. Allen L, Jauniaux E, Hobson S, Papillon-Smith
J, Belfort MA; FIGO. Placenta Accreta Diagnosis and
Management Expert Consensus Panel FIGO consensus
guidelines on placenta accreta spectrum disorders:
Nonconservative surgicalmanagement. International
Journal of Gynaecology and Obstetrics. 2018;140(3):281-
290. DOI: 10.1002/ijgo.12409
12. Dahiya P, Nayar KD, Gulati AJ, Dahiya K.
Placenta Accreta Causing Uterine Rupture in Second
Trimester of Pregnancy after in vitro Fertilization: A
Case Report. Journal of Reproduction and Infertility.
2012;13(1):61-3
13. Okunowo AA, Ohazurike EO, HabeebuAdeyemi FM. Undiagnosed placenta praevia percreta: A
rare case report and review of management. The Nigerian
Postgraduate Medical Journal. 2019;26(1):61-64. DOI:
10.4103/npmj.npmj_191_18
14. Kassas JM, Blue LM, Brenner CA. In Vitro
Fertilization in a Nulliparous Female Resulting in
Placenta Increta and Postpartum Hemorrhage. Cureus.
2021;13(9):e18042. DOI: 10.7759/cureus.18042
15. Jin T, Kyozuka H, Fujimori M, Nomura S,
Hakozaki Y, Suzuki D, Nomura Y. Unexpected placenta
accreta spectrum after the use of assisted reproductive
technology in women with adenomyomectomy.
Fukushima Journal of Medical Science. 2021;67(1):45-48.
DOI: 10.5387/fms.2021-02
16. Canda MT, Demir N, Doganay L. Velamentous
and Furcate Cord Insertion with Placenta Accreta in an
IVF Pregnancy with Unicornuate Uterus. Case Report of
Obstetrics and Gynecology. 2013;(2013):539379. DOI:
10.1155/2013/539379