Предрасположенность к тромбозам является актуальной проблемой современной медицины и нуждается в разработке достоверных
маркеров, обеспечивающих раннее определение тромбофилических состояний. Основной целью обзора является определение роли гомоцистеина, как значимого независимого патогенетического фактора в развитии тромбофилических состояний и его роль в ранней диагностике тромбофилии на основании данных полученных в исследованиях последних лет. Для достижения поставленной цели был выполнен систематический
поиск литературы в онлайн ресурсах PubMed, РИНЦ, MEDLINE, Cochrane Library. Было найдено 170 источников последних 10 лет, из которых
для последующего анализа было отобрано – 70. В обзоре рассматриваются новые данные о роли и механизмах воздействия гипергомоцистеинемии на сосудистую стенку, факторы коагуляции как основа запуска каскада коагуляционных процессов. В статье приведены данные последних
лет о роли гомоцистеина в глубокой дисфункции эндотелия, путем повышения тканевого фактора, индуцированием апоптоза, цитотоксичности и провоспалительного эффекта. На основании приведенных аргументов авторами получены результаты, указывающие на агрессорную роль
гомоцистеина во всех направлениях формирования тромба: повреждение и сужение стенки сосуда, активация когауляционных факторов
и ингибирование антикоагуляции, а также фибринолиза. Результаты позволяют сделать вывод о значимости гомоцистеина как независимого
фактора тромбофилических состояний и необходимости разработки мер ранней диагностики, профилактики гипергомоцистеинемии в свете
снижения бремени тромбозов.

1. Leng YP, Ma YS, Li XG, Chen RF, Zeng PY, Li XH,
Qiu CF, Li YP, Zhang Z, Chen AF. l-Homocysteine-induced cathepsin V mediates the vascular endothelial infl ammation in hyperhomocysteinaemia. British Journal
of Pharmacology. 2018;175(8):1157-1172.
2. Homocysteine Ye S. In: Gellman M.D. Encyclopedia
of Behavioral Medicine. 2020;(3):43-54.
3. Paganelli, F, Mottola, G, Fromonot J, Marlinge M,
Deharo P, Guieu R, Ruf J. Hyperhomocysteinemia and
cardiovascular disease: Is the adenosinergic system the
missing link? International Journal of Molecular Science.
2021;(22): 1690.
4. Chubarov AS. Homocysteine thiolactone: Biology
and chemistry. Encyclopedia 2021;1: 445–459.
5. Bajic Z, Sobot T, Skrbic R, Stojiljkovic MP,
Ponorac N, Matavulj A, Djuric DM. Homocysteine,
Vitamins B6 and Folic Acid in Experimental Models of
Myocardial Infarction and Heart Failure-How Strong Is
Th at Link? Biomolecules. 2022; 12(4):536. DOI: 10.3390/
biom12040536
6. Пизова НВ. Тромбофилии: генетические полиморфизмы и сосудистые катастрофы. Монография.
Москва:Има-Пресс. 2013: 227-229. [Pizova N.V.
Th rombophilias: genetic polymorphisms and vascular
disasters. Monograph. Moscow: Ima-Press. 2013: 227-
229.(In Russian)]
7. Kosti´c S, Mi´covic Ž, Andrejevi´c L, Cvetkovi´c S,
Stamenkovi´c A, Stankovi´c S, Obrenovi´c R, Labudovi´cBorovi´c M, Hrnˇci´c D, Jakovljevi´c V. Th e eff ects of
l-cysteine and N-acetyl-l-cysteine on homocysteine metabolism and haemostatic markers, and on cardiac and
aortic histology subchronically methionine-treated Wistar
male rats. Molecular Cell Biochemistry. 2019;(451): 43–54.
8. Каражанова ЛК, Жунуспекова АС.
Гипергомоцистеинемия как фактор риска сердечнососудистых заболеваний. Наука и Здравоохранение.
2016; (4): 129-144. [Karazhanova LK., Zhunuspekova AS.
Hyperhomocysteinemia as a risk factor for cardiovascular diseases. Nauka i Zdravoohranenie. 2016; (4):129-144.
(In Russian)]
9. Turnic TN, Arsic A, Vucic V, Petrovic S, RisticMedic D, Zivkovic V, Srejovic I, Jeremic J, Radonjic T,
Milosavljevic I. Hydroxymethylglutaryl coenzyme a reductase inhibitors diff erentially modulate plasma fatty
acids in rats with dietinduced-hyperhomocysteinemia:
Is ω-3 fatty acids supplementation necessary? Frontiers in
Physiology. 2019;(10): 892.
10. Alawneh I, Saymeh A, Daraghmeh M, Jabri D,
Yaseen L. Role of plasma homocysteine levels and other
associated factors with coronary artery disease among
Palestinian patients in North Palestine: a case control study. Pan African Medical Journal. 2022;(42):180.
DOI: 10.11604/pamj.2022.42.180.34264.11
11. Chrysant SG, Chrysant GS. Th e current status of
homocysteine as a risk factor for cardiovascular disease:
A mini review. Expert Review of Cardiovascular Th erapy.
2018;(16): 559–565.
12. Rehman T, Shabbir MA, Inam-Ur-Raheem M,
Manzoor MF, Ahmad N, Liu ZW, Ahmad MH, Siddeeg A,
Abid M, Aadil RM. Cysteine and homocysteine as biomarker of various diseases. Food Science Nutrition.
2020;12;8(9):4696-4707. DOI: 10.1002/fsn3.1818
13. Capatina N, Burton GJ, Yung HW. Elevated homocysteine activates unfolded protein responses and causes
aberrant trophoblast diff erentiation and mouse blastocyst development. Physiologycal Reports. 2022;10(18):
e15467. DOI: 10.14814/phy2.15467
14. Reddy VS, Trinath J, Reddy GB. Implication of homocysteine in protein quality control processes. Biochimie.
2019;(165):19-31. DOI: 10.1016/j.biochi.2019.06.017
15. Zaric BL, Obradovic M, Bajic V, Haidara MA,
Jovanovic M, Isenovic ER. Homocysteine and Hyperhomocysteinaemia. Current Medical Chemistry. 2019;26
(16):2948-2961. DOI: 10.2174/092986732566618031310
5949
16. Kositsawat J, Vogrin S, French C, Gebauer M,
Candow DG, Duque G, Kirk B. Relationship Between
Plasma Homocysteine and Bone Density, Lean Mass,
Muscle Strength and Physical Function in 1480 MiddleAged and Older Adults: Data from NHANES. Calcifi ed
Tissue International.2022; 112 (1): 45-54. DOI: 10.1007/
s00223-022-01037-0
17. Djuric D, Jakovljevic V, Zivkovic V, Srejovic I.
Homocysteine and homocysteine-related compounds:
An overview of the roles in the pathology of the cardiovascular and nervous systems. Canadian Journal of Physiology
and Pharmacology.2018;(96): 991–1003.
18. Pusceddu I, Herrmann W, Kleber ME, Scharnagl H,
Hoff mann MM, Winklhofer-Roob BM, März W,
Herrmann M. Subclinical infl fl ammation, telomere shortening, homocysteine, vitamin B6, and mortality: Th e
Ludwigshafen Risk and Cardiovascular Health Study.
European Journal of Nutrition. 2020;(59):1399–1411.
19. Azzini E, Ruggeri S, Polito A. Homocysteine:
Its possible emerging role in at-risk population groups.
International Journal of Molecular Science. 2020; (21):
1421.
20. Moretti R, Caruso P. Th e Controversial Role of
Homocysteine in Neurology: From Labs to Clinical
Practice. International Journal of Molecular Science.
2019;8;20(1):231. DOI: 10.3390/ijms20010231
21. Kim J, Kim H, Roh H, Kwon Y. Causes of hyperhomocysteinemia and its pathological signifi cance.Archives of Pharmacology Research. 2018;41(4):372-383.
DOI: 10.1007/s12272-018-1016-4
22. Djurovic Z, Jovanovic V, Obrenovic R, Djurovic B,
Soldatovic I, Vranic A, Jakovljevic V, Djuric D, Zivkovic V.
Th e importance of the blood levels of homocysteine, folate
and vitamin B12 in patients with primary malignant brain
tumors. JBUON. 2021;(25): 2600–2607.
23. Jayedi A, Zargar MS. Intake of vitamin B6, folate,
and vitamin B12 and risk of coronary heart disease: A systematic review and dose-response meta-analysis of prospective cohort studies. Critical Reviews in Food Science
and Nutrition.2019;(59): 2697–2707.
24. Kang SS, Rosenson RS. Analytic Approaches
for the Treatment of Hyperhomocysteinemia and Its
Impact on Vascular Disease. Cardiovascular Drugs and
Th erapy. 2018;32(2):233-240. DOI: 10.1007/s10557-018-
6790-1
25. Xu R, Huang F, Wang Y, Liu Q, Lv Y, Zhang Q.
Gender- and age-related diff erences in homocysteine
concentration: a cross-sectional study of the general
population of China. Science Reports. 2020;10(1):17401.
DOI: 10.1038/s41598-020-74596-7
26. Shah AK, Dhalla NS. Eff ectiveness of Some
Vitamins in the Prevention of Cardiovascular Disease:
A Narrative Review. Frontiers Physiology. 2021;8(12):
729255. DOI: 10.3389/fphys.2021.729255
27. Yuyun MF, Ng LL, Ng GA. Endothelial dysfunction, endothelial nitric oxide bioavailability, tetrahydrobiopterin, and 5-methyltetrahydrofolate in cardiovascular disease. Microvascular Research. 2018;(119):7–12.
DOI: 10.1016/j.mvr.2018.03.012
28. Dai Z, Mentch SJ, Gao X, Sailendra N. Nichenametla,
Locasale Methionine metabolism infl uences genomic architecture and gene expression through H3K4me3 peak
width. Nature Communications. 2018;(2):29769529. DOI:
258259 10.1038/s41467-018-04426-y
29. Кириченко ЕН. Ген MTRR. Генокарта. Генетическая энциклопедия. 2019. Ссылка активна на
29.06.2022. [Kirichenko EN. Th e MTRR gene. Genocard.
Genetic Encyclopedia. 2019. Accessed June 29, 2022.
(In Russian)]
30. Yang Q, Lu Y, Deng Y, Xu J, Zhang X. Homocysteine
level is positively and independently associated with
serum creatinine and urea nitrogen levels in old
male patients with hypertension. Scientifi c Reports.
2020;10(1):18050. DOI: 10.1038/s41598-020-75073-x
31. Kujiraoka T, Kagami K, Kimura T, Ishinoda Y,
Shiraishi Y, Ido Y, Endo S, Satoh Y, Adachi T. Metabolic
Remodeling with Hepatosteatosis Induced Vascular
Oxidative Stress in Hepatic ERK2 Defi ciency Mice with
High Fat Diets. International Journal of Molecular Science.
2022;23(15):8521. DOI: 10.3390/ijms23158521
32. Koklesova L, Mazurakova A, Samec M, Biringer K,
Samuel SM, Büsselberg D, Kubatka P, Golubnitschaja
O. Homocysteine metabolism as the target for predictive medical approach, disease prevention, prognosis,
and treatments tailored to the person. EPMA Journal.
2021;12(4):1-29. DOI:1007/s13167-021-00263-0
33. Uzelac JJ, Djukic T, Mutavdzin S, Stankovic S,
Borovic ML, Rakocevic J, Milic N, Radojevic AS, Vasic M,
Zigon NJ. Th e infl uence of subchronic co-application of
vitamins B6 and folic acid on cardiac oxidative stress and
biochemical markers in monocrotaline-induced heart
failure in male wistar albino rats. Th e Canadian Journal of
Physiology and Pharmacology.2020;(98): 93–102.
34. Aghayan SS, Farajzadeh A, Bagheri-Hosseinabadi Z,
Fadaei H, Yarmohammadi M, Jafarisani M. Elevated homocysteine, as a biomarker of cardiac injury, in panic disorder patients due to oxidative stress. Brain and Behavior.
2020; 10(12):e01851. DOI: 10.1002/brb3.1851
35. Rabelo NN, Telles JPM, Pipek LZ, Farias Vidigal
Nascimento R, Gusmão RC, Teixeira MJ, Figueiredo
EG. Homocysteine is associated with higher risks of ischemic stroke: A systematic review and meta-analysis.
PLoS One. 2022;17(10):e0276087. DOI: 10.1371/journal.
pone.0276087
36. Korkmaz H, Hahn N, Jansen K, Musters R, van
Bezu J, van Wieringen W, van Zuijlen P, Ulrich M,
Niessen H, Krijnen P. Homocysteine-induced inverse
expression of tissue factor and DPP4 in endothelial
cells is related to NADPH oxidase activity. Physiology
International. 2019; 106(1): 29-38.
37. Esse R, Barroso M, Tavares de Almeida I,
Castro R. Th e Contribution of Homocysteine Metabolism
Disruption to Endothelial Dysfunction: State-of-the-Art.
International Journal of Molecular Science. 2019;20(4):
867. DOI: 10.3390/ijms20040867
38. Al Mutairi F. Hyperhomocysteinemia: Clinical
Insights. Journal of Central Nervous System Disease.
2020;(12):1179573520962230. DOI: 10.1177/11795735
2096
39. Roth GA, Mensah GA, Johnson CO, Addolorato G,
Ammirati E, Baddour LM, Barengo NC, Beaton A,
Benjamin EJ, Benziger CP. Global burden of cardiovascular diseases and risk factors, 1990–2019: Update From
the GBD 2019 Study. Journal of the American College of
Cardiology. 2020;(76): 2982–3021.
40. Nozaka M, Yokoyama H, Kitayama K, Nagawa D,
Hamadate M, Miura N, Kawamura Y, Nakata M,
Nishizaki F, Hanada K, Yokota T, Yamada M, Tomita H.
Clinical Outcomes of Acute Myocardial Infarction
Patients With a History of Malignant Tumor. In Vivo.
2020;34(6):3589-3595. DOI: 10.21873/invivo.12203
41. Levy J, Rodriguez-Guéant RM, Oussalah A,
Jeannesson E, Wahl D, Ziuly S, Guéant JL. Cardiovascular
manifestations of intermediate and major hyperhomocysteinemia due to vitamin B12 and folate defi ciency and/or inherited disorders of one-carbon
metabolism: a 3.5-year retrospective cross-sectional study of consecutive patients. Th e American
Journal of Clinical Nutrition.2021; 113(5):1157-1167.
DOI: 10.1093/ajcn/nqaa43242. Wannamethee SG, Jeff eris BJ, Lennon L,Papaco
sta O, Whincup PH, Hingorani AD. Serum Conjugated
Linoleic Acid and Risk of Incident Heart Failure in Older
Men: Th e British Regional Heart Study. Journal of the
American Heart Association. 2018;(7):e006653.
43. Mangge H, Becker K, Fuchs D, Gostner JM.
Antioxidants, infl ammation and cardiovascular disease.
World Journal of Cardiology. 2014;6(6):462–77. DOI:
10.4330/wjc.v6.i6.462
44. Bosevski M, Zlatanovikj N, Petkoska D,
Gjorgievski A, Lazarova E, Stojanovska L. Plasma
Homocysteine in Patients with Coronary and Carotid
Artery Disease: A Case Control Study. Pril (Makedon
Akad Nauk Umet Odd Med Nauki). 2020;41(1):15-22.
DOI: 10.2478/prilozi-2020-0019. PMID: 32573476
45. Sugijo H, Sargowo D, Widjajanto E, Romdoni R. Th e
role of methylenetetrahydrofolate reductase C677T gene
polymorphism as a risk factor for coronary artery disease:
a cross-sectional study in the Sidoarjo Regional General
Hospital. Pan African Medical Journal. 2022;(41):212.
DOI: 10.11604/pamj.2022.41.212.24916
46. Li N, Cai X, Zhu Q, Yao X, Lin M, Gan L, Sun L,
Yue N, Ren Y, Hong J, Ma Y, Wang R, Yili J, Luo Q.
Association between Plasma Homocysteine Concentrations
and the First Ischemic Stroke in Hypertensive Patients with
Obstructive Sleep Apnea: A 7-Year Retrospective Cohort
Study from China. Disease Markers. 2021;28(2021):9953858.
DOI: 10.1155/2021/9953858
47. Holmen M, Hvas AM, Arendt JFH. Hyperhomocysteinemia and Ischemic Stroke: A Potential
Dose-Response Association-A Systematic Review and
Meta-analysis. Th e Open. 2021;24;5(3):e420-e437. DOI:
10.1055/s-0041-1735978
48. Ahmed S, Bogiatzi C, Hackam DG, Rutledge AC,
Sposato LA, Khaw A, Mandzia J, Azarpazhoo MR,
Hachinski V, Spence JD. Vitamin B 12 defi ciency and
hyperhomocysteinaemia in outpatients with stroke or
transient ischaemic attack: a cohort study at an academic medical centre. BMJ Open. 2019;21;9(1):e026564. DOI:
10.1136/bmjopen-2018-026564
49. Genoud V, Lauricella AM, Kordich LC, Quintana I.
Impact of homocysteine-thiolactone on plasma fi -
brin networks. Journal of Th rombosis and Gemostasis.
2014;38(4):540-5. DOI: 10.1007/s11239-014-1063-8
50. Li LL, Yang Y, Wu S, Deng XF, Li JP, Ning N, et
al. Meta-analysis of association between MTHFR C677T
polymorphism and risk of myocardial infarction: evidence from forty-four case-control studies. International
Journal of Clinical and Experimental Medicine.2016;9(3):
5630–42.
51. Mundi S, Massaro M, Scoditti E, Carluccio MA,
Van Hinsbergh VWM, Iruela-Arispe ML, De Caterina R.
Endothelial permeability, LDL deposition, and cardiovascular risk factors – A review. Cardiovascular Research.
2018; (114): 35–52.
52. Zhao J, Chen H, Liu N, Chen J, Gu Y, Chen J,
Yang K. Role of hyperhomocysteinemia and hyperuricemia in pathogenesis of atherosclerosis. Journal of Stroke
and Cerebrovascular Disease. 2017;(26): 2695–2699.
53. Kumar A, Palfrey HA, Pathak R, Kadowitz PJ,
Gettys TW, Murthy SN. Th e metabolism and signifi cance
of homocysteine in nutrition and health. Nutrition and
Metabolism(Lond). 2017;(14):78. DOI: 10.1186/s12986-
017-0233-z
54. Pang X, Liu J, Zhao J, Mao J, Zhang X, Feng L,
Han C, Li M, Wang S, Wu D.. Homocysteine induces
the expression of C - reactive protein via NMDAr-ROSMAPK-NF-κB signal pathway in rat vascular smooth
muscle cells. Journal of Atherosclerosis. 2014;(236):73–81.
DOI: 10.1016/j.atherosclerosis.2014.06.021
55. Seema B. Th e Clinical Application of Homocysteine.
Springer Nature Singapore Pte Ltd. 2018; 96p. 
56. Anghel D, Sîrbu CA, Hoinoiu EM, Petrache OG,
Pleșa CF, Negru MM, Ioniţă-Radu F. Infl uence of anti-TNF
therapy and homocysteine level on carotid intima-media
thickness in rheumatoid arthritis patients. Experimental
and Th erapeutic Medicine. 2022;23(1):59. DOI: 10.3892/
etm.2021.10981
57. Brütting C, Hildebrand P, Brandsch C, Stangl GI.
Ability of dietary factors to aff ect homocysteine levels in mice: a review. Nutrition and Metabolism (Lond).
2021;18(1):68. DOI: 10.1186/s12986-021-00594-9
58. Снежитский ВА, Снежитский ВА, Пирочкина ВМ. Клинические аспекты гипергомоцистеинемии. Гродно: ГрГМУ. 2011: 292. [Snezhitskii V.A.,
Snezhitskii V.A., Pyrochkina V.M. Clinical aspects of
hyperhomocysteinemy. Grodno: GrGMU. 2011: 292.
(In Russian)].
59. Amanda J MacFarlane. Hyperhomocysteinemia
in patients with cardiovascular manifestations: to treat or
not to treat. Th e American Journal of Clinical Nutrition.
2021;113(5):1081–1082.
60. Capelli I, Cianciolo G, Gasperoni L, Zappulo F,
Tondolo F, Cappuccilli M, La Manna G. Folic Acid and
Vitamin B12 Administration in CKD, Why Not? Nutrients.
2019;11(2):383. DOI: 10.3390/nu11020383

Выявление детей с положительным скрининговым тестом на муковисцидоз (МВ), но безрезультатным диагностическим тестированием
в зарубежной литературе трактуется как метаболический синдром, связанный с трансмембранным регулятором проводимости (cystic fi brosis
transmembrane conductance regulator related metabolic syndrome, CRMS), либо положительный, неубедительный диагноз МВ (cystic fi brosis screen
positive, inconclusive diagnosis, CFSPID). Цель исследования – анализ публикаций отечественных и зарубежных авторов по данной теме. Был использован аналитический метод изучения литературы по проблеме неубедительного муковисцидоза за последние 12 лет (2010-2022 гг.) по базам: PubMed, EMBASE database, Cochrane Library, Wiley, Springer Link, Elsevier, Киберленинка. В статье описаны алгоритмы наблюдения за пациентами с сомнительным диагнозом муковисцидоза, представлены варианты прогнозов CRMS / CFSPID.

1. Skov M, Baekvad-Hansen M, Hougaard DM,
Skogstrand K, Lund AM, Pressler T, Olesen HV,
Duno M. Cystic fi brosis newborn screening in Denmark:
Experience from the fi rst 2 years. Pediatric Pulmonology.
2020; 55(2):549-555. DOI: 10.1002/ppul.24564
2. Bierlaagh MC, Muilwijk D, Beekman JM, van
der Ent CK. A new era for people with cystic fi brosis.
European Journal of Pediatrics. 2021; 180(9):2731-2739.
DOI: 10.1007/s00431-021-04168-y
3. Boardman F, Clark ,We,re kind of like genetic
nomads›: Parents› experiences of biographical disruption and uncertainty following in/conclusive results
from newborn cystic fi brosis screening. Social Science
and Medicine. 2022; 301:114972. DOI: 10.1016/j.
socscimed.2022.114972
4. Özdemir A, Doğruel D. Newborn Screening for
Cystic Fibrosis in Mersin Province: Yearly Assessment
of the National Program. Turkish Th oracic Journal. 2020;
21(2):100-104. DOI: 10.5152/TurkTh oracJ.2019.18187
5. Barben J, Southern Why Do We Screen Newborn
Infants for Cystic Fibrosis? International Journal of
Neonatal Screening. 2020; 6(3):56. DOI: 10.3390/
ijns6030056
6. Ooi CY, Sutherland R, Castellani C, Keenan K,
Boland M, Reisman J, Bjornson C, Chilvers MA, van
Wylick R, Kent S, Price A, Mateos-Corral D, Hughes D,
Solomon M, Zuberbuhler P, Brusky J, Durie PR, Ratjen F,
Gonska T. Immunoreactive trypsinogen levels in newborn
screened infants with an inconclusive diagnosis of cystic
fi brosis. BMC Pediatrics. 2019;19(1):369. DOI: 10.1186/
s12887-019-1756-4 
7. Schlosser T, Fischer D, Büttner S, Blank V,
Hoff meister A. Cystic fi brosis transmembrane conductance regulator function in patients with chronic pancreatitis. Medicine (Baltimore). 2022;101(8):e28904. DOI:
10.1097/MD.0000000000028904
8. Barben J, Castellani C, Munck A, Davies JC,
de Winter-de Groot KM, Gartner S, Kashirskaya N,
Linnane B, Mayell SJ, McColley S, Ooi CY, Proesmans M,
Ren CL, Salinas D, Sands D, Sermet-Gaudelus I,
Sommerburg O, Southern KW; European CF Society
Neonatal Screening Working Group (ECFS NSWG).
Updated guidance on the management of children with
cystic fi brosis transmembrane conductance regulator-related metabolic syndrome/cystic fi brosis screen positive, inconclusive diagnosis (CRMS/CFSPID). Journal
of Cystic Fibrosis. 2021;20(5):810-819. DOI: 10.1016/j.
jcf.2020.11.006
9. Barben J, Southern KW. Cystic fi brosis screen
positive, inconclusive diagnosis. Current Opinion in
Pulmonary Medicine. 2016;22(6):617-22. DOI: 10.1097/
MCP.0000000000000314
10. Terlizzi V, Claut L, Tosco A, Colombo C,
Raia V, Fabrizzi B, Lucarelli M, Angeloni A, Cimino G,
Castaldo A, Marsiglio L, Timpano S, Cirilli N, Moroni L,
Festini F, Piccinini P, Zavataro L, Bonomi P, Taccetti G,
Southern KW, Padoan R. A survey of the prevalence, management and outcome of infants with an inconclusive diagnosis following newborn bloodspot screening for cystic
fi brosis (CRMS/CFSPID) in six Italian centres. Journal
of Cystic Fibrosis. 2021;20(5):828-834. DOI: 10.1016/j.
jcf.2021.03.015
11. Ren CL, Borowitz DS, Gonska T, Howenstine MS,
Levy H, Massie J, Milla C, Munck A, Southern KW.
Cystic Fibrosis Transmembrane Conductance RegulatorRelated Metabolic Syndrome and Cystic Fibrosis Screen
Positive, Inconclusive Diagnosis. Th e Journal of Pediatrics.
2017;181S:S45-S51.e1. DOI: 10.1016/j.jpeds.2016.09.066
12. Sinclair G, McMahon V, Schellenberg A, Nelson TN,
Chilvers M, Vallance H. Performance of a Th ree-Tier (IRTDNA-IRT) Cystic Fibrosis Screening Algorithm in British
Columbia. International Journal of Neonatal Screening.
2020;6(2):46. DOI: 10.3390/ijns6020046
13. Farrell PM, White TB, Ren CL, Hempstead SE,
Accurso F, Derichs N, Howenstine M, McColley SA,
Rock M, Rosenfeld M, Sermet-Gaudelus I, Southern KW,
Marshall BC, Sosnay PR. Diagnosis of Cystic Fibrosis:
Consensus Guidelines from the Cystic Fibrosis
Foundation. Th e Journal of Pediatrics. 2017;181S:S4-S15.
e1. DOI: 10.1016/j.jpeds.2016.09.064
14. Sinha A, Southern KW. Cystic fi brosis transmembrane conductance regulator-related metabolic syndrome/
cystic fi brosis screen positive, inconclusive diagnosis
(CRMS/CFSPID). Breathe (Sheff ). 2021;17(3):210088.
DOI: 10.1183/20734735.0088-2021
15. Hatton A, Bergougnoux A, Zybert K, Chevalier B,
Mesbahi M, Altéri JP, Walicka-Serzysko K, Postek M,
Taulan-Cadars M, Edelman A, Hinzpeter A, Claustres M,
Girodon E, Raynal C, Sermet-Gaudelus I, Sands D.
Reclassifying inconclusive diagnosis aft er newborn
screening for cystic fi brosis. Moving forward. Journal
of Cystic Fibrosis. 2022;21(3):448-455. DOI: 10.1016/j.
jcf.2021.12.010
16. Ramsey BW, Davies J, McElvaney NG, Tullis E,
Bell SC, Dřevínek P, Griese M, McKone EF, Wainwright CE,
Konstan MW, Moss R, Ratjen F, Sermet-Gaudelus I,
Rowe SM, Dong Q, Rodriguez S, Yen K, Ordoñez C,
Elborn JS; VX08-770-102 Study Group. A CFTR potentiator in patients with cystic fi brosis and the G551D mutation. New England Journal Medicine. 2011;365(18):1663-
72. DOI: 10.1056/NEJMoa1105185
17. Salinas DB, Peng YH, Horwich B, Wee CP,
Frisbee E, Maarek JM. Image-based β-adrenergic sweat
rate assay captures minimal cystic fi brosis transmembrane conductance regulator function. Pediatric Research.
2020;87(1):137-145. DOI: 10.1038/s41390-019-0503-8
18. Januska MN, Marx L, Walker PA, Berdella MN,
Langfelder-Schwind E. Th e CFTR variant profi le of
Hispanic patients with cystic fi brosis: Impact on access to
eff ective screening, diagnosis, and personalized medicine.
Journal of Genetic Counseling. 2020;29(4):607-615. DOI:
10.1002/jgc4.1271
19. Cirilli N, Southern KW, Barben J, Vermeulen F,
Munck A, Wilschanski M, Nguyen-Khoa T, Aralica M,
Simmonds NJ, De Wachter E; ECFS Diagnostic Network
Working Group. Standards of care guidance for sweat
testing; phase two of the ECFS quality improvement programme. Journal of Cystic Fibrosis. 2022;21(3):434-441.
DOI: 10.1016/j.jcf.2022.01.004
20. Barben J, Chudleigh J. Processing Newborn
Bloodspot Screening Results for CF. International Journal
of Neonatal Screening. 2020;6(2):25. DOI: 10.3390/
ijns6020025
21. Ramalho AS, Boon M, Proesmans M, Vermeulen F, Carlon MS, Boeck K. Assays of CFTR Function
In Vitro, Ex Vivo and In Vivo. International Journal
of Molecular Sciences. 2022;23(3):1437. DOI: 10.3390/
ijms23031437
22. Krishnananthan T, Pao C. Th e implications and
management of cystic fi brosis screen positive, inconclusive diagnosis patients. Paediatric Respiratory Reviews.
2019;31:21-24. DOI: 10.1016/j.prrv.2019.02.009
23. Middleton PG, House HH. Measurement of airway ion transport assists the diagnosis of cystic fi brosis.
Pediatric Pulmonology. 2010;45(8):789-95. DOI: 10.1002/
ppul.21253
24. Sands D. Transepithelial nasal potential diff erence
(NPD) measurements in cystic fi brosis (CF). Problemy
Medycyny Wieku Rozwojowego. 2013 Jan-Mar;17(1):13-7.
25. Bagheri-Hanson A, Nedwed S, Rueckes-Nilges C,
Naehrlich L. Intestinal current measurement versus nasal
potential diff erence measurements for diagnosis of cystic
fi brosis: a case-control study. BMC Pulmonary Medicine.
2014;14:156. DOI: 10.1186/1471-2466-14-156.
26. Wilschanski M, Yaakov Y, Omari I, Zaman M,
Martin CR, Cohen-Cymberknoh M, Shoseyov D,
Kerem E, Dasilva D, Sheth S, Uluer A, OʼSullivan BP,
Freedman S. Comparison of Nasal Potential Diff erence
and Intestinal Current Measurements as Surrogate
Markers for CFTR Function. Journal of Pediatric
Gastroenterology and Nutrition. 2016;63(5):e92-e97. DOI:
10.1097/MPG.0000000000001366
27. Silva IAL, Duarte A, Marson FAL, Centeio R,
Doušová T, Kunzelmann K, Amaral MD. Assessment
of Distinct Electrophysiological Parameters in Rectal
Biopsies for the Choice of the Best Diagnosis/Prognosis
Biomarkers for Cystic Fibrosis. Frontiers in Physiology.
2020;11:604580. DOI: 10.3389/fphys.2020.604580
28. Minso R, Schulz A, Dopfer C, Alfeis N,
Barneveld AV, Makartian-Gyulumyan L, Hansen G,
Junge S, Müller C, Ringshausen FCC, Sauer-Heilborn A,
Stanke F, Stolpe C, Tamm S, Welte T, Dittrich AM,
Tümmler B. Intestinal current measurement and nasal
potential diff erence to make a diagnosis of cases with
inconclusive CFTR genetics and sweat test. BMJ Open
Respiratory Research. 2020;7(1):e000736. DOI: 10.1136/
bmjresp-2020-000736
29. Fernandez Elviro C, Blanchon S, Hoehnel S,
Schumacher U, Sauty A, Brandenberg N, Regamey N.
Diagnostic tools and CFTR functional assays in cystic fi -
brosis: utility and availability in Switzerland. Swiss Medical
Weekly. 2021;151:w20496. DOI: 10.4414/smw.2021.20496
30. Graeber SY, Vitzthum C, Mall MA. Potential
of Intestinal Current Measurement for Personalized
Treatment of Patients with Cystic Fibrosis. Personalized
Medicine. 2021;11(5):384. DOI: 10.3390/jpm11050384
31. De Boeck K, Vermeulen F, Dupont L. Th e diagnosis of cystic fi brosis. La Presse médicale.2017;46 (6 Pt
2):e97-e108. DOI: 10.1016/j.lpm.2017.04.010
32. Wine JJ. How the sweat gland reveals levels of
CFTR activity. Journal of Cystic Fibrosis. 2022;21(3):
396-406. DOI: 10.1016/j.jcf.2022.02.001
33. Reynaerts A, Vermeulen F, Mottais A, Gohy S,
Lebecque P, Frédérick R, Vanbever R, Leal T. Needle-free
iontophoresis-driven β-adrenergic sweat rate test. Journal
of Cystic Fibrosis. 2022;21(3):407-415. DOI: 10.1016/j.
jcf.2021.08.012
34. Saint-Criq V, Gray MA. Role of CFTR in epithelial physiology. Cellular and Molecular Life Sciences.
2017;74(1):93-115. DOI: 10.1007/s00018-016-2391-y
35. Gokdemir Y, Vatansever P, Karadag B, Seyrekel T,
Baykan O, Bas Ikızoglu N, Ersu R, Karakoc F, Haklar G.
Performance Evaluation of a New Coulometric Endpoint
Method in Sweat Testing and Its Comparison With Classic
Gibson&Cooke and Chloridometer Methods in Cystic
Fibrosis. Frontiers in Pediatrics. 2018;6:133. DOI: 10.3389/
fped.2018.00133
36. Ginsburg D, Wee CP, Reyes MC, Brewington JJ,
Salinas DB. When CFSPID becomes CF. Journal of
Cystic Fibrosis. 2022;21(1):e23-e27. DOI: 10.1016/j.jcf.
2021.06.012
37. Gonska T, Keenan K, Au J, Dupuis A, Chilvers MA,
Burgess C, Bjornson C, Fairservice L, Brusky J, Kherani T,
Jober A, Kosteniuk L, Price A, Itterman J, Morgan L,
Mateos-Corral D, Hughes D, Donnelly C, Smith MJ, Iqbal S,
Arpin J, Reisman J, Hammel J, van Wylick R, Derynck M,
Henderson N, Solomon M, Ratjen F. Outcomes of Cystic
Fibrosis Screening-Positive Infants With Inconclusive
Diagnosis at School Age. 2021;148(6):e2021051740.
DOI: 10.1542/peds.2021-051740
38. Arrudi-Moreno M, García-Romero R, SamperVillagrasa P, Sánchez-Malo MJ, Martin-de-Vicente C.
Neonatal cystic fi brosis screening: Analysis and diff erences in immunoreactive trypsin levels in newborns with
a positive screen. Anales de Pediatría (English Edition).
2021;95(1):11-17. DOI: 10.1016/j.anpede.2020.04.022
39. Pagin A, Sermet-Gaudelus I, Burgel PR. Genetic
diagnosis in practice: From cystic fi brosis to CFTR-related
disorders. Archives de Pediatrie. 2020;27 Suppl 1:eS25-
eS29. DOI: 10.1016/S0929-693X(20)30047-6
40. Terlizzi V, Padoan R, Claut L, Colombo C,
Fabrizzi B, Lucarelli M, Bruno SM, Castaldo A, Bonomi P,
Taccetti G, Tosco A. CRMS/CFSPID Subjects Carrying
D1152H CFTR Variant: Can the Second Variant Be a
Predictor of Disease Development? Diagnostics (Basel).
2020;10(12):1080. DOI: 10.3390/diagnostics10121080
41. Sermet-Gaudelus I, Brouard J, Audrézet MP,
Couderc Kohen L, Weiss L, Wizla N, Vrielynck S, LLerena K,
Le Bourgeois M, Deneuville E, Remus N, Nguyen-Khoa T,
Raynal C, Roussey M, Girodon E. Recommandations
pour la prise en charge et le suivi des nourrissons pour
lesquels un diagnostic de mucoviscidose n’a pu être conclu
après dépistage néonatal [Management of infants whose
diagnosis is inconclusive at neonatal screening for cystic fi brosis]. Archives de Pediatrie. 2017;24(4):401-414.
[In French]. DOI: 10.1016/j.arcped.2017.01.019
42. Sermet-Gaudelus I, Brouard J, Audrézet MP,
Couderc Kohen L, Weiss L, Wizla N, Vrielynck S,
LLerena K, Le Bourgeois M, Deneuville E, Remus N,
Nguyen-Khoa T, Raynal C, Roussey M, Girodon E.
Guidelines for the clinical management and follow-up of
infants with inconclusive cystic fi brosis diagnosis through
newborn screening. Archives de Pediatrie. 2017;24(12):e1-
e14. DOI: 10.1016/j.arcped.2017.07.015
43. Kilinc AA, Alishbayli G, Taner HE, Cokugras FC,
Cokugras H. Clinical characteristics and genetic analysis
of cystic fi brosis transmembrane conductance receptor-related disease. Pediatrics International. 2020;62(5):629-633.
DOI: 10.1111/ped.14173
44. Nayir Buyuksahin H, Emiralioglu N, Ozsezen B,
Ademhan Tural D, Sunman B, Guzelkas I, Tezel B,
Dayangaç Erden D, Yalçın E, Dogru D, Ozcelik U, Kiper N.
Cystic fi brosis newborn screening: Five-year experience from a tertiary care center. Pediatric Pulmonology.
2022;57(2):403-410. DOI: 10.1002/ppul.25778
45. Terlizzi V, Claut L, Colombo C, Tosco A, Castaldo A,
Fabrizzi B, Lucarelli M, Cimino G, Carducci C, Dolce D,
Biffi A, Bonomi P, Timpano S, Padoan R. Outcomes of
early repeat sweat testing in infants with cystic fi brosis
transmembrane conductance regulator-related metabolic syndrome/CF screen-positive, inconclusive diagnosis. Pediatric Pulmonology. 2021;56(12):3785-3791.
DOI: 10.1002/ppul.25683
46. Tosco A, Castaldo A, Colombo C, Claut L,
Carnovale V, Iacotucci P, Lucarelli M, Cimino G,
Fabrizzi B, Caporelli N, Majo F, Ciciriello F, Padoan R,
Poli P, Taccetti G, Centrone C, Casciaro R, Castellani C,
Salvatore D, Colangelo C, Bonomi P, Castaldo G, Terlizzi V.
Clinical outcomes of a large cohort of individuals with
the F508del/5T;TG12 CFTR genotype. Journal of Cystic
Fibrosis. 2022:S1569-1993(22)00109-6. DOI: 10.1016/j.
jcf.2022.04.020
47. Terlizzi V, Mergni G, Buzzetti R, Centrone C,
Zavataro L, Braggion C. Cystic fi brosis screen positive
inconclusive diagnosis (CFSPID): Experience in Tuscany,
Italy. Journal of Cystic Fibrosis. 2019;18(4):484-490.
DOI: 10.1016/j.jcf.2019.04.002

Представлены сведения о наиболее частых изменениях в шейном отделе позвоночника (ШОП), создающие предпосылки для недостаточности кровообращения в вертебробазилярном бассейне, у пациентов с недифференцированной дисплазией соединительной ткани (НДСТ).
Основанием для литературного обзора послужило широкая распространенность признаков НДСТ, выраженность некоторых из них многие исследователи используют как диагностические критерии костно-связочных дисплазий ШОП. Для анализа литературных данных использовались
научные публикации за последние 5-10 лет из баз данных eLIBRARY и MEDLINE с поиском по ключевым словам – недифференцированная
дисплазия соединительной ткани, фенотип, экстравазальные факторы, шейный отдел позвоночника, позвоночные артерии, вертебробазилярная
недостаточность.

1. Недифференцированные дисплазии соединительной ткани (проект клинических рекомендаций). Терапия. 2019;7(33):50 с. [Undiff erentiated
connective tissue dysplasia (draft clinical guidelines).
Th erapy. 2019;7(33):50 p. (In Russian)] DOI: 10.18565/
Th erapy.2019;7[33]:9-42
2. Наднациональные (международные) рекомендации по структурным аномалиям сердца. Медицинский вестник Северного Кавказа.
2018;13(1,2):272-316. [Supranational (international)
guidelines for structural heart anomalies. Medical Bulletin
of the North Caucasus. 2018;13(1,2):272-316. (In Russian)]
DOI: 10.14300/mnnc.2018/13040
3. Наследственные и многофакторные нарушения
соединительной ткани у детей (алгоритмы диагностики, тактика ведения). Проект Российских рекомендаций. Педиатрия. 2014;93(5) (Приложение 1):39 с.
[Hereditary and multifactorial connective tissue disorders
in children (diagnostic algorithms, management tactics).
Draft Russian recommendations. Pediatrics. 2014;
93(5) (Annex 1): 39 p. (In Russian)] DOI: 10.14300/
mnnc.2015.10001
4. Аверьянова НИ, Коломеец НЮ, Семерикова
АИ, Старкова АИ. Внешние недифференцированные дисплазии соединительной ткани у младших
школьников. Современные проблемы науки и образования. 2020;4. Ссылка активна на 02.01.2023.
[Averyanova NI, Kolomeets NY, Semerikova AI, Starkova
AI. External undiff erentiated connective tissue dysplasia
in younger schoolchildren. Modern problems of science
and education. 2020;4. Accessed January 02, 2023.
(In Russian)] DOI: 10.17513/spno.30050
5. Захарова ИН, Творогова ТМ, Соловьева ЕА,
Степурина ЛЛ, Воробьева АС. Дисплазия соединительной ткани: факторы риска остеопении у детей
и подростков. Медицинский совет. 2020;(1):30-40.
[Zakharova IN, Tvorogova TM, Solovieva EA, Stepurina
LL, Vorobieva AS. Connective tissue dysplasia: risk factors
for osteopenia in children and adolescents. Medical Advice.
2020;(1):30-40. (In Russian)] DOI: 10.21518/2079-701X2020-1-30-40
6. Гусева ЕИ, Коновалова АН, Гехт АБ. Неврология:
национальное руководство. Краткое издание. Москва:
ГЭОТАР-Медиа; 2018. 688с. [Guseva EI, Konovalova
AN, Gecht AB. Neurology. National guide. Short edition.
Moscow: GEOTAR-Media; 2018. 688 p. (In Russian)]
7. Ишемический инсульт и транзиторная ишемическая атака у взрослых. Клинические рекомендации.
2022;215 с. [Ischemic stroke and transient ischemic attack
in adults. Clinical guidelines. 2022;215 p. (In Russian)]
8. Карнеев АН, Амелина ИП. Экстравазальные
факторы недостаточности кровообращения в вертебрально-базилярной артериальной системе. Трудный
пациент. 2019;17(4):23-29. [Karneev AN, Amelina
IP. Extravasal factors of circulatory failure in the vertebrobasilar arterial system. Diffi cult Patient. 2019;17(4):23-
29. (In Russian)] DOI: 10.24411/2074-1995-2019-10026
9. Верещагин НВ. Недостаточность кровообращения в вертебрально-базилярной системе. Consillium
Medicum. 2003;5(2):56-60. [Vereshchagin NV. Circulatory
failure in the vertebrobasilar system. Consillium Medicum.
2003;5(2):56-60. (In Russian)]
10. Максимова МЮ, Пирадов МА. Синдром недостаточности кровотока в артериях вертебробазилярной системы. Русский медицинский журнал. 2018;7:4-8.
[Maksimova MJ, Piradov MA. Syndrome of insuffi ciency
of blood fl ow in the arteries of the vertebrobasilar system.
Russian Medical Journal. 2018;(7):4-8. (In Russian)]
11. Кравченко АИ, Золотухин СЕ, Шпаченко НН,
Кривенко СН. Диспластическая нестабильность шейного отдела позвоночника у детей. Травматология,
ортопедия и военная медицина. 2020;(4):59-67.
[Kravchenko AI, Zolotukhin SE, Shpachenko NN,
Krivenko SN. Dysplastic instability of the cervical spine
in children. Traumatology, Orthopedics and Military
Medicine. 2020;(4):59-67. (In Russian)] 
12. Золото ЕВ. Дисплазия соединительной ткани –
проблема в современной медицине. Университетская
клиника. 2018;4(29):109-116. [Gold EV. Connective tissue
dysplasia is a problem in modern medicine. University
Clinic. 2018;4(29):109-116. (In Russian)] DOI: 10.26435/
uc.voi4(29).252
13. Смирнова ТЛ, Герасимова ЛИ. Особенности
клинических проявлений синдрома недифференцированной дисплазии соединительной ткани. Доктор.
Ру. 2018;8(152):40-44. [Smirnova TL, Gerasimova LI.
Features of clinical manifestations of the syndrome of
undiff erentiated connective tissue dysplasia. Doctor.Ru.
2018;8(152):40-44. (In Russian)] DOI: 10.31550/1727-
2378-2018-152-8-40-44
14. Мешков АН, Калугина ЕВ, Киселева АВ,
Жарикова АА, Дивашук МГ, Скрико ОП, Ефимова
ИА, Покровская МС, Ершова АИ, Драпкина ОМ.
Генетический скрининг в семье пациента с синдромом
дисплазии соединительной ткани и новым патогенным вариантом гена FBN1. Практическая медицина.
2020;23(2):109-116. [Meshkov AN, Kalugina EV, Kiseleva
AV, Zharikova AA, Divashuk MG, Skriko OP, Efi mova
IA, Pokrovskaya MS, Ershova AI, Drapkina OM. Genetic
screening in the family of a patient with connective tissue
dysplasia syndrome and a new pathogenic variant of the
FBN1 gene. Practical Medicine. 2020;23(2):109-116. (In
Russian)] DOI: 10.17116/profmed202023021109
15. Яковлев ВМ. Современное состояние и перспективы развития проблемы наследственной дисплазии соединительной ткани: мнение клинициста.
Медицинский вестник Северного Кавказа. 2008;(2):5-7.
[Yakovlev VM. Current state and development prospects
of the problem of hereditary connective tissue dysplasia:
the opinion of a clinician. Medical Bulletin of the North
Caucasus. 2008;(2):5-7. (In Russian)]
16. Клинические рекомендации Российского научного медицинского общества терапевтов по диагностике, лечению и реабилитации пациентов
с дисплазиями соединительной ткани (первый пересмотр). Медицинский вестник Северного Кавказа.
2018;13(1,2):137-210. [Clinical guidelines of the Russian
Scientifi c Medical Society of Physicians for the diagnosis,
treatment and rehabilitation of patients with connective
tissue dysplasia (fi rst revision). Medical Bulletin of the
North Caucasus. 2018;13(1,2):137-210 (In Russian)]
DOI: 10.14300/mnnc.2018.13037
17. Трушина ОВ, Орлова ВС, Калашникова ИВ.
Физическое развитие и соматический фон девушек
подростков, страдающих дисменореей, сочетанной
с дисплазией соединительной ткани. Научные ведомости Белгородского государственного университета. Серия: Медицина. Фармация. 2018;41(1):36-45.
[Trushina OV, Orlova VS, Kalashnikova IV. Physical
development and somatic background of adolescent girls
suff ering from dysmenorrhea combined with connective
tissue dysplasia. Scientifi c statements of the Belgorod State
University. Series: Medicine. Pharmacy. 2018;41(1):36-45.
(In Russian)] DOI: 10.18413/2075-4728-2018-41-1-36-45
18. Эверт ЛС, Потупчик ТВ, Реушева СВ,
Гришкевич НЮ, Зайцева ОИ, Боброва ЕИ,
Ахмельдинова ЮР. Уровень мозгового нейротрофического фактора BDNF у подростков с дисплазией
соединительной ткани и различными психосоматическими синдромами. Современные проблемы науки
и образования. 2018;5. Ссылка активна на 03.01.2023.
[Evert LS, Potupchik TV, Reusheva SV, Grishkevich
NYu, Zaitseva OI, Bobrova EI, Akhmeldinova YUR. Th e
level of the brain-derived neurotrophic factor BDNF in
adolescents with connective tissue dysplasia and various
psychosomatic syndromes. Modern Problems of Science
and education. 2018;5. Accessed January 03, 2023.
(In Russian)] https://science-education.ru/ru/article/
view?id=28072
19. Мальцева ИВ, Шереметьева ИИ, Котовщикова ЕФ, Строганов АЕ, Берестенников АВ, Ломакина НА,
Аносова МК. Влияние уровня мозгового нейротрофического фактора BDNF на психовегетативный
статус и нервно-психические расстройства у студентов-медиков с недифференцированной дисплазией соединительной ткани. Бюллетень медицинской
науки. 2022;1(25):75-81. [Maltseva IV, Sheremetyeva
II, Kotovshchikova EF, Stroganov AE, Berestennikov
AV, Lomakina NA, Anosova MK. Infl uence of the level
of the brain-derived neurotrophic factor BDNF on the
psychovegetative status and neuropsychiatric disorders in
medical students with undiff erentiated connective tissue
dysplasia. Bulletin of Medical Science. 2022;1(25):75-81.
(In Russian)] DOI: 10.31684/25418475_2022_1_75
20. Нохсорова МА, Борисова НВ, Аммосова АМ.
Возможность диагностики недифференцированной
дисплазии соединительной ткани с помощью биологических маркеров. Вестник новых медицинских
технологий. Электронное издание. 2019;(4):138-142.
[Nokhsorova MA, Borisova NV, Ammosova AM. Th e
possibility of diagnosing undiff erentiated connective
tissue dysplasia using biological markers. Bulletin of New
Medical Technologies. Electronic edition. 2019;(4):138-142.
(In Russian)] DOI: 10.24411/2075-4094-2019-16435
21. Тимофеев ЕВ, Земцовский ЭВ. Наследственные
нарушения соединительной ткани: современное состояние проблемы. Медицина: теория и практика. 2018;3(3):34-45. [Timofeev EV, Zemtsovsky EV.
Hereditary connective tissue disorders: the current state of
the problem. Medicine: Th eory and Practice. 2018;3(3):34-
45. (In Russian)]
22. Ибрагимова ЭЭ. Анализ частоты встречаемости гипермобильного синдрома среди студентов. Вестник Сургутского государственного университета. 2018;4(22):73-79. [Ibragimova EE.
Analysis of the frequency of occurrence of hypermobility
syndrome among students. Bulletin of SurSU.
2018;4(22):73-79. (In Russian)]
23. Луценко ЮА, Черкасов НС, Давыдова ОВ,
Ледяев МЯ, Макухина ЛП. Клинико-инструментальная оценка форм и синдромов недифференцированной дисплазии соединительной ткани. Вестник
Волгоградского государственного медицинского университета. 2019;3(71):58-61. [Lutsenko YuA, Cherkasov
NS, Davydova OV, Ledyaev MJ, Makukhina LP. Clinical
and instrumental assessment of forms and syndromes of
undiff erentiated connective tissue dysplasia. Bulletin of the
Volgograd State Medical University. 2019;3(71):58-61. (In
Russian)] DOI: 10.19163/1994-9480-2019-3(71)-58-61
24. Рожкова НС, Коваленко АД. Фенотипические
маркеры дисплазии соединительной ткани в деятельности врача общей практики. Бюллетень медицинских Интернет-конференций. 2021;11(7):155-157.
[Rozhkova NS, Kovalenko AD. Phenotypic markers of
connective tissue dysplasia in the activities of a general
practitioner. Bulletin of medical Internet conferences.
2021;11(7):155-157. (In Russian)]
25. Калаева ГЮ, Хохлова ОИ. Недифференцированная дисплазия соединительной ткани у подростков. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2014;59(5):52-58. [Kalaeva GYu., Khokhlova
OI. Undiff erentiated connective tissue dysplasia in
adolescents. Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics.
2014;59(5):52-58. (In Russian)]
26. Викторова ИА, Иванова ДС, Коншу НВ,
Рожина МВ. Роль гипермобильности суставов в диагностике синдромальных форм дисплазии соединительной ткани и ревматических заболеваний.
Терапия. 2018;(6): 59-64. [Viktorova IA, Ivanova DS,
Konshu NV, Rozhina MV. Th e role of joint hypermobility
in the diagnosis of syndromic forms of connective tissue
dysplasia and rheumatic diseases. Th erapy. 2018;(6): 59-
64. (In Russian)] DOI: 10.18565/therapy.2018.6.59-64
27. Викторова ИА, Киселева ДС, Савостеева ИС,
Коншу НВ, Багишева НВ. Особенности гипермобильности суставов у детей. Педиатрические аспекты дисплазии соединительной ткани. Достижения
и перспективы. Российский сборник научных трудов
с международным участием. Москва–Тверь–СанктПетербург. 2013;(3):70-75. [Viktorova IA, Kiseleva DS,
Savosteeva IS, Konshu NV, Bagisheva NV. Features of
joint hypermobility in children. Pediatric aspects of
connective tissue dysplasia. Achievements and prospects.
Russian Сollection of Scientifi c Papers with International
Participation. Moscow–Tver–St. Petersburg. 2013;(3):
70-75. (In Russian)]
28. Борзунов АВ, Мишина ОВ. Распространенность гипермобильности суставов у детей
с психоневрологической патологией. Актуальные
вопросы современной науки и образования: сборник
статей VIII международной научно-практической
конференции. 2021:227-231. [Borzunov AV, Mishina OV.
Th e prevalence of joint hypermobility in children with
neuropsychiatric pathology. Topical issues of modern science and education: collection of articles of the VIII international scientifi c and practical conference. 2021:227-231.
(In Russian)]
29. Курбанова ИМ, Тимофеева ЛВ. Состояние
позвоночника у детей с синдромом гипермобильности суставов. Смоленский медицинский альманах.
2021;(4):141-144. [Kurbanova IM, Timofeeva LV. Th e
state of the spine in children with joint hypermobility
syndrome. Smolensk Medical Almanac. 2021;(4):141-144.
(In Russian)] DOI: 10.37963/SMA.2021.4.230
30. Кадурина ТИ, Аббакумова ЛН. Педиатрические
аспекты диагностики синдрома гипермобильности
суставов. Педиатрические аспекты дисплазии соединительной ткани. Достижения и перспективы.
Российский сборник научных трудов с международным участием. Москва–Тверь–Санкт-Петербург.
2013;3:86-99. [Kadurina TI, Abbakumova LN. Pediatric
aspects of the diagnosis of joint hypermobility syndrome.
Pediatric aspects of connective tissue dysplasia.
Achievements and prospects. Russian collection of scientifi c
papers with international participation. Moscow–Tver–
St. Petersburg. 2013;(3):86-99. (In Russian)]
31. Ибрагимова ЭЭ. Скрининг нарушений опорно-двигательной системы у обучающихся ВУЗа.
Ученые записки Крымского федерального университета имени В.И. Вернандского. Биология. Химия.
2020;(1):63-72. [Ibragimova EE. Screening of disorders
of the musculoskeletal system in university students.
Scientifi c notes of the Crimean Federal University named
aft er V.I. Vernandsky. Biology. Chemistry. 2020;(1):63-72.
(In Russian)]
32. Мансурова ГШ, Мальцев СВ, Рябчиков ИВ.
Особенности формирования опорно-двигательной системы у школьников: заболевания, причины
и возможные пути коррекции. Практическая медицина. 2019;17(5):51-55. [Mansurova GSh, Maltsev
SV, Ryabchikov IV. Features of the formation of the
musculoskeletal system in schoolchildren: diseases,
causes and possible ways of correction. Practical Medicine.
2019;17(5):51-55. (In Russian)] DOI: 10.32000/2072-
1757-2019-5-51-55
33. Иванова ИИ, Гнусаев СФ, Макарова ИИ,
Иванова АА. Сравнительный анализ распространенности гипермобильности суставов в детской популяции Твери и других регионов Российской Федерации.
Вопросы современной педиатрии. 2014;13(4):102-
109. [Ivanova II, Gnusaev SF, Makarova II, Ivanova AA.
Comparative analysis of the prevalence of joint hypermobility in the children’s population of Tver and
other regions of the Russian Federation. Questions of
Modern Pediatrics. 2014;13(4):102-109. (In Russian)]
34. Реева СВ, Тимофеев ЕВ, Земцовский ЭВ.
Гипермобильность суставов у лиц молодого возраста:
от доброкачественного феномена до клинически значимого синдрома. Терапия. 2018;6. [Reeva SV, Timofeev
EV, Zemtsovsky EV. Joint hypermobility in young people:
from a benign phenomenon to a clinically signifi cant
syndrome. Th erapy. 2018;6. (In Russian)] DOI: 10.18565/
therapy.2018.6.65-71
35. Изможерова НВ, Гетманова НА, Попов АА,
Перетолчина ТФ. Дисплазия соединительной ткани у женщин с первичным остеоартрозом коленных и тазобедренных суставов. Казанский медицинский журнал. 2018;99(2):194–200. [Izmozherova NV,
Getmanova NA, Popov AA, Peretolchina TF. Connective
tissue dysplasia in females with primary knee and hip
osteoarthritis. Kazan Medical Journal. 2018;99(2):
194-200. (In Russian)] DOI: 10.17816/KMJ2018-194
36. Чаплыгина ЕВ, Кучиева МБ, Калашаов БМ.
Анатомическая изменчивость шейного отдела позвоночного столба в возрастном, половом и типовом аспектах. Возможности и переспективы изучения. Современные проблемы науки и образования.
2021;3. Ссылка активна на 05.01.2023. [Chaplygina EV,
Kuchieva MB, Kalashov BM. Anatomical variability of the
cervical spine in age, sex and type aspects. Possibilities
and perspectives of study. Modern problems of science
and education. 2021;3. Accessed January 05, 2023.
(In Russian)] DOI: 10.17513/spno.30791
37. Абрамов АС, Терновой СК, Серова НС.
Возможности рентгеновских методов диагностики в оценке нестабильности позвоночно-двигательных сегментов шейного отдела позвоночника.
Современные проблемы науки и образования. 2019;3.
Ссылка активна на 05.01.2023. [Abramov AS, Ternovoy
SK, Serova NS. Possibilities of X-ray diagnostic methods
in assessing the instability of the spinal motion segments
of the cervical spine. Modern problems of science
and education. 2019;3. Accessed January 05, 2023. (In
Russian)] DOI: 10.17513/spno.28811
38. Шарков СМ, Табе ЕЭ. Эффективность лечения патологии шейного отдела позвоночника,
ассоциированной с недифференцированной дисплазией соединительной ткани у детей. Детская хирургия. 2020;25(5):312-316. [Sharkov SM, Tabe EE. Th e
eff ectiveness of treatment of cervical spine pathologies
associated with undiff erentiated connective tissue
dysplasia in children. Russian Journal of Pediatric Surgery.
2020;25(5):312-316. (In Russian)] DOI: 10.18821/1560-
9510-2020-24-5-312-316
39. Николенко ВН, Оганесян МВ, Вовкогон АД,
Санькова МВ, Ризаева НА Морфологические маркеры структурно-функциональных нарушений
опорно-двигательного аппарата, возникающих после
физической нагрузки. Человек. Спорт. Медицина.
2019;19(3):103-111. [Nikolenko VN, Oganesyan MV,
Vovkogon AD, Sankova MV, Rizaeva NA Morphological
markers of structural and functional disorders of the
musculoskeletal system that occur aft er exercise. Man.
Sport. Th e medicine. 2019;19(3):103-111. (In Russian)]
DOI: 10.14529/hsm190313
40. Кравченко АИ, Дубовая АВ, Агарков АВ,
Жилицин ЕВ. Оценка степени дисплазии соединительной ткани у детей с диспластической нестабильностью шейного отдела позвоночника и ее использование при разработке реабилитационных мероприятий.
Вестник физиотерапии и курортологии. 2018;(2):58-
61. [Kravchenko AI, Dubovaya AV, Agarkov AV, Zhilitsin
EV. Assessment of the degree of connective tissue dysplasia
in children with dysplastic instability of the neural spine
and its use in the development of rehabilitation measures.
Bulletin of Physiotherapy and Balneology. 2018;(2):58-61.
(In Russian)]
41. Виндерлих МЕ, Щеколова НБ. Влияние диспластической нестабильности шейного отдела позвоночника на формирование нейроортопедической
патологии у детей. Вестник Волгоградского государственного медицинского университета. 2022;19(1):73-
78. [Vinderlikh ME, Shchekolova NB. Infl uence of
dysplastic instability of the cervical spine on the formation
of neuroorthopedic pathology in children. Bulletin of the
Volgograd State Medical University. 2022;19(1):73-78.
(In Russian)] DOI: 10.19163/1994-9480-2022-19-1-73-78
42. Горнаева ЛС. Ювенильный остеохондроз, осложнившийся грыжей межпозвоночного диска (обзор литературы). Вестник медицинских технологий.
Электронное издание. 2020;(2):6-11. [Gornaeva LS.
Juvenile osteochondrosis complicated by a herniated
disc (literature review). Bulletin of Medical Technologies.
Electronic edition. 2020;(2):6-11. (In Russian)]
DOI: 10.24411/2075-4094-2020-16599
43. Спивак ЕМ, Спирин НН. Основы формирования и особенности проявлений ювенильного
шейного остеохондроза. Смоленский медицинский
альманах. 2020;(2):153-156. [Spivak EM, Spirin NN.
Fundamentals of formation and features of manifestations
of juvenile cervical osteochondrosis. Smolensk Medical
Almanac. 2020;(2):153-156. (In Russian)] DOI: 10.37903/
sma.2020.2.31
44. Арсентьев ВГ. Изменения со стороны шейного
отдела позвоночника и сосудов шеи у детей с дисплазией соединительной ткани. Педиатрия. 2011;90(6):167-
168. [Arsentiev VG. Changes in the cervical spine and
neck vessels in children with connective tissue dysplasia.
Pediatrics. 2011;90(6):167-168. (In Russian)]
45. Намазова-Баранова ЛС, Табе ЕЭ, Малахов ОА,
Васильченко ВВ, Тайбулатов НИ, Челпаченко ОБ,
Жердев КВ, Гольцова НВ. Дуплексное сканирование сосудов головного мозга и шеи у детей с диспластической нестабильностью шейного отдела позвоночника.
Детская хирургия. 2013;(3):46-49. [Namazova-Baranova
LS, Tabe EE, Malakhov OA, Vasilchenko VV, Taibulatov
NI, Chelpachenko OB, Zherdev KV, Goltsova NV. Duplex
scanning of cerebral and neck vessels in children with
dysplastic instability of the cervical spine. Russian Journal
of Pediatric Surgery. 2013;(3):46-49. (In Russian)]
46. Антонова АА, Яманова ГА, Сердюкова ВГ,
Магомедова МР. Динамика состояния опорно-двигательного аппарата у детей и подростков. Научноисследовательский журнал. 2020;7(97):53-56. [Antonova
AA, Yamanova GA, Serdyukova VG, Magomedova MR.
Dynamics of the state of the musculoskeletal system in
children and adolescents. Research Journal. 2020;7(97):53-
56. (In Russian)] DOI: 10.23670/IRJ.2020.97.7.044
47. Гриненко ЕА, Кульчикова АЕ, Мусин РС,
Морозов СГ. Влияние нестабильности шейного отдела позвоночника на кровоток в вертебрально-базилярной системе. Журнал неврологии и психиатрии им.
С.С. Корсакова. 2014;(2):69-75. [Grinenko EA,
Kulchikova AE, Musin RS, Morozov SG. Infl uence of instability of the cervical spine on blood fl ow in the vertebrobasilar system. Journal of Neurology and Psychiatry.
S.S. Korsakov. 2014;(2):69-75. (In Russian)]
48. Шведов АН, Ивченко АО, Федорова ЕП,
Ивченко ОА. Проблема гипердиагностики синдрома экстравазальной компрессии позвоночных артерий. Бюллетень сибирской медицины. 2021;20(2):210-
215. [Shvedov AN, Ivchenko AO, Fedorova EP, Ivchenko
OA. Th e problem of overdiagnosis of the syndrome of
extravasal compression of the vertebral arteries. Bulletin
of Siberian Medicine. 2021;20(2):210-215. (In Russian)]
DOI: 10.20538/1682-0363-2021-2-210-215
49. Мачинский ПА, Рыбаков АГ, Ульянкин ВЕ,
Кадыров АШ, Лошкарев ИА. Коллатеральные пути
кровоснабжения головного мозга. Современные проблемы науки и образования. 2021;4. Ссылка активна
на 05.01.2023. [Machinsky PA, Rybakov AG, Ulyankin
VE, Kadyrov ASH, Loshkarev IA. Collateral pathways of
blood supply to the brain. Modern problems of science
and education. 2021;4. Accessed January 05, 2023.
(In Russian)] DOI: 10.17513/spno.30995
50. Чуканова ЕИ, Чуканова АС, Мамаева ХИ.
Хроническая церебральная венозная недостаточность. Этиология, клиника, лечение. Поликлиника.
2018;1(1):23-27. [Chukanova EI, Chukanova AS, Mamaeva
HI. Chronic cerebral venous insuffi ciency. Etiology, clinic,
treatment. Polyclinic. 2018;1(1):23-27. (In Russian)]
51. Терновой СК, Серова НС, Абрамов АС,
Мискарян ТИ. Значение функциональной мультиспиральной компьютерной томографии в диагностике нестабильности позвоночно-двигательных
сегментов шейного отдела позвоночника. Вестник
рентгенологии и радиологии. 2020; 101(5):296-303.
[Ternovoy SK, Serova NS, Abramov AS, Miskaryan TI.
Th e value of functional multislice computed tomography
in the diagnosis of instability of the spinal motion
segments of the cervical spine. Journal of Radiology and
Nuclear Medicine. 2020;101(5):296-303. (In Russian)]
DOI: 10.20862/0042-4676-2020-101-5-296-303
52. Нажмудинова ОМ, Гончарова ЛА, Удочкина
ЛА, Куркин АМ, Жидовинов АА, Проватар НП.
Современные методы лучевой и инструментальной
диагностики патологии шейного отдела позвоночника у детей. Астраханский медицинский журнал.
2020;15(3):23-32. [Nazhmudinova OM, Goncharova LA,
Udochkina LA, Kurkin AM, Zhidovinov AA, Provatar
NP. Modern methods of radiation and instrumental
diagnostics of the pathology of the cervical spine in
children. Astrakhan Medical Journal. 2020;15(3):23-32.
(In Russian)] DOI: 10.17021/2020.15.3.23.32
53. Прошин АН, Машин ВВ, Белова ЛА, Белов ДВ.
Структура интракраниальных вен и упруго-вязкостные свойства мембран эритроцитов подростков с соединительнотканной дисплазией. Ульяновский медико-биологический журнал. 2021;(3):47-60. [Proshin AN,
Mashin VV, Belova LA, Belov DV. Structure of intracranial
veins and elastic-viscous properties of erythrocyte
membranes in adolescents with connective tissue dysplasia.
Ulyanovsk Medico-biological Journal. 2021;(3):47-60. (In
Russian)] DOI: 10.34014/2227-1848-2021-3-47-60

Цель исследования. Целью исследования явилось изучение изменения показателей клинического, биохимического и коагулологического анализа
крови у больных туберкулезом легких в динамике при поступлении в клинику, на момент заражения SARS-COV-2 и перед выпиской из стационара.
Материал и методы. Проведен ретроспективный анализ лабораторных показателей 23 больных туберкулезом легких, сочетанным с легкой
и средней степени тяжести COVID-19, находившихся на стационарном лечении ФГБНУ «ЦНИИТ».
Результаты. Было установлено, что при присоединении туберкулезу COVID-19 выраженность системного воспалительного ответа усиливается,
о чем свидетельствовало повышение частоты встречаемости и средних значений С-реактивного белка и фибриногена после заражения SARS-COV-2.
На момент присоединения туберкулезу COVID-19 значимые изменения со стороны показателей белково-энергетической недостаточности, а также
морфофункционального статуса печени и почек не наблюдались. Вместе с тем, присоединение к туберкулезу COVID-19 вызывает изменения функционального состояния поджелудочной железы, о чем свидетельствовало значимо повышенное значение активности амилазы. На момент заражения SARS-COV-2 наблюдается гиперкоагуляционный сдвиг, о чем свидетельствуют укорочение протромбинового времени, высокое содержание
фибриногена и Д-димера. Кроме того, наличие тромбоцитопении и удлинение АЧТВ свидетельствуют о развитии вторичной гипокоагуляции.
Заключение. При присоединении к туберкулезу COVID-19 выраженность системного воспалительного ответа усиливается и параллельно развивается гиперкоагуляционный синдром с признаками коагулопатии потребления.

1. Aggarwal AN, Agarwal R, Dhooria S, Prasad KT,
Sehgal IS, Muthu V. Active pulmonary tuberculosis and
coronavirus disease 2019: a systematic review and metaanalysis. PLoS One. 2021;16(10):e0259006. DOI:10.1371/
journal.pone.0259006
2. Liu Y, Bi L, Chen Y. Active or latent tuberculosis
increases susceptibility to COVID-19 and disease severity.
medRxiv 2020. DOI:10.1101/2020.03.10.20033795
3. Luke E, Swaff ord K, Shirazi G, Venketaraman V.
TB and COVID-19: An Exploration of the Characteristics
and Resulting Complications of Co-infection. Frontiers
in bioscience (Scholar edition). 2022;14(1):006.
DOI:10.31083/j.fb s1401006
4. Motta I, Centis R, D’Ambrosio L, GarcíaGarcía J-M, Goletti D, Gualano G, Lipani F, Palmieri F,
Sánchez-Montalvá A, Pontali E, Sotgiu G, Spanevello A, Stochino C, Tabernero E, Tadolini M, van den Boom M,
Villa S, Visca D, Migliori GB. Tuberculosis, COVID-19
and migrants: preliminary analysis of deaths occurring
in 69 patients from two cohorts. Pulmonology. 2020;(26):
233–240. DOI:10.1016/j.pulmoe.2020.05.002
5. Stochino C, Villa S, Zucchi P, Parravicini P, Gori A,
Raviglione CM. Clinical characteristics of COVID-19
and active tuberculosis co-infection in an Italian
reference hospital. Th e European Respiratory Journal.
2020;(56):2001708. DOI:10.1183/13993003.01708-2020
6. Sy KTL, Haw NJL, Uy J. Previous and active
tuberculosis increases risk of death and prolongs
recovery in patients with COVID-19. Infectious Diseases.
2020;(52):902–907. DOI:10.1080/23744235.2020.1806353
7. Tadolini M, Codecasa LR, García-García JM. Active
tuberculosis, sequelae and COVID-19 co-infection: fi rst
cohort of 49 cases. Th e European Respiratory Journal.
2020;(56):2001398. DOI:10.1183/13993003.01398-2020
8. Miglioria GB, Tiberib S, Duarted R. Investigating
the response to COVID-19 and understanding severe TB
cases. Pulmonology. 2022;(28):155-157. DOI:10.1016/j.
pulmoe.2022.01.018
9. Trajman A, Felker I, Alves LC, Coutinho I,
Osman M, Meehan S-A, Singh UB, Schwartz Y. Th e
COVID-19 and TB syndemic: the way forward.
International Journal of Tuberculosis and Lung Diseases.
2022;(26):310–319. DOI:5588/ijtld.22.0006
10. Th e TB/COVID-19 Global Study Group.
Tuberculosis and COVID-19 co-infection: description
of the global cohort. Th e European Respiratory Journal.
2022;(59):2102538 DOI:10.1183/13993003.02538-2021

Цель исследования. Установить диагностическую значимость концентрации растворимых рецепторов конечных продуктов гликирования белков
(sRAGE) у детей с сахарным диабетом 1 типа. Проведено одномоментное поперечное сравнительное описательное исследование, определены
методом ИФА и проанализированы показатели плазменных растворимых рецепторов конечных продуктов гликирования белков (sRAGE) у пациентов с СД 1 типа обоего пола 6-17 лет со стажем заболевания 1-10 лет, изучена корреляционная связь уровня sRAGE и гликированного гемоглобина с применением многомерного регрессионного анализа в группе пациентов с сахарным диабетом. Анализ содержания гликированного
гемоглобина в сыворотке пациентов с СД показал неудовлетворительную компенсацию углеводного обмена (средний уровень HbA1C – 9,36 %,
медиана – 9,32 %). Установлено значимое снижение концентрации sRAGE в плазме пациентов с сахарным диабетом (p<0,05). Корреляционная
связь уровня sRAGE и гликированного гемоглобина с применением многомерного регрессионного анализа выявила зависимость показателя
sRAGE от совокупного влияния нескольких факторов. Представлена значимая регрессионная модель, предсказывающая концентрацию sRAGE
по уровню гликированного гемоглобина и половой зрелости. Анализ результатов показал обратную корреляционную связь изучаемых показателей и позволил по концентрации sRAGE, полу и возрасту прогнозировать уровень HbA1C. Выполненное исследование позволило оценить
уровень плазменных sRAGE белков при сахарном диабете 1 типа, представить функциональные связи между значениями HbA1C, sRAGE, гендерными и возрастно-половыми факторами, уточнить диагностическую значимость sRAGE в представлениях о метаболической компенсации
и риске сосудистой патологии в детском возрасте.
Материал и методы. Проведено одномоментное поперечное сравнительное описательное исследование, определены методом ИФА и проанализированы показатели плазменных растворимых рецепторов конечных продуктов гликирования белков (sRAGE) у пациентов с СД 1 типа обоего
пола 6-17 лет со стажем заболевания 1-10 лет, изучена корреляционная связь уровня sRAGE и гликированного гемоглобина с применением многомерного регрессионного анализа в группе пациентов с сахарным диабетом.
Результаты. Анализ содержания гликированного гемоглобина в сыворотке пациентов с СД показал неудовлетворительную компенсацию углеводного обмена (средний уровень HbA1C – 9,36 %, медиана – 9,32 %). Установлено значимое снижение концентрации sRAGE в плазме пациентов
с сахарным диабетом (p<0,05). Корреляционная связь уровня sRAGE и гликированного гемоглобина с применением многомерного регрессионного анализа выявила зависимость показателя sRAGE от совокупного влияния нескольких факторов. Представлена значимая регрессионная
модель, предсказывающая концентрацию sRAGE по уровню гликированного гемоглобина и половой зрелости. Анализ результатов показал обратную корреляционную связь изучаемых показателей и позволил по концентрации sRAGE, полу и возрасту прогнозировать уровень HbA1C.
Заключение. Выполненное исследование позволило оценить уровень плазменных sRAGE белков при сахарном диабете 1 типа, представить функциональные связи между значениями HbA1C, sRAGE, гендерными и возрастно-половыми факторами, уточнить диагностическую значимость
sRAGE в представлениях о метаболической компенсации и риске сосудистой патологии в детском возрасте

1. Международная Диабетическая Федерация. IDF
Diabetes Atlas, 9-е изд. Брюссель, Бельгия: [International
diabetes Federation. IDF diabetes Atlas, 9th ed. Brussels,
Belgium: 2019] DOI: http://www.diabetesatlas.org
2. Черников АА, Северина АС, Шамхалова МШ,
Шестакова МВ. Роль механизмов «метаболической
памяти» в развитии и прогрессировании сосудистых осложнений сахарного диабета. Сахарный диабет. 2017;20(2):126-134. [Chernikov AA, Severina
AS, Shamkhalova MSh, Shestakova MV. Тhe Role of
mechanisms of metabolic memory in the development and
progression of vascular complications of diabetes mellitus.
Diabetes Mellitus. 2017;20(2):126-134. (In Russian)]
3. Дедов ИИ, Шестакова МВ. Феномен «метаболической памяти» в прогнозировании риска развития сосудистых осложнений при сахарном диабете.
Терапевтический архив, 2015;87(10):4-10. [Dedov II,
Shestakova MV. Тhe Phenomenon of metabolic memory
in predicting the risk of vascular complications in diabetes
mellitus. Th erapeutic Archive. 2015;87(10):4-10. (In Russian)]
4. Данилова ЛА. Гликированные протеины.
Педиатр. 2019;10(5):79-86. [Danilova LA. Glycated
proteins. Pediatrician. 2019;10(5):79-86. (In Russian)]
5. Леонова ТС, Вихнина МВ, Гришина ТВ,
Леонова ЛЕ, Фролов АА, Романовская ЕВ. Влияние
конечных продуктов глубокого гликирования на
клеточные процессы. Международный научно-исследовательский журнал. 2018;12(78): часть 1. [Leonova
TS, Vihnina MV, Grishina TV, Leonova LE, Frolov AA,
Romanovskaya EV. Infl uence of deep glycation end
products on cellular processes. International Research
Journal. 2018;12(78): part 1. (In Russian)]
6. Иванникова ЕВ, Смирнова ОМ. Роль конечных
продуктов гликирования и их рецепторов в развитии
осложнений сахарного диабета. Эффективная фармакотерапия. 2019;(5):20-26. [Ivannikova EV, Smirnova
OM. Th e role of glycation end products and their receptors
in the development of complications of diabetes mellitus.
Eff ective Pharmacotherapy.2019;(5):20-26. (In Russian)]
7. Бакунина НС, Глушаков РИ, Тапильская НИ,
Шабанов ПД. Фармакология полипренолов как
адаптогенов, снижающих интенсивность процессов гликирования. Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. 2013;11(4):44-53.
[Bakunina NS, Glushakov RI, Tapilskaya NI, Shabanov
PD. Pharmacology of polyprenols as adaptogens that
reduce the intensity of glycation processes. Reviews of
Clinical Pharmacology and Drug Th erapy. 2013;11(4):44-
53. (In Russian)]
8. Скобелева КВ, Тыртова ЛВ, Никитина ИЛ,
Оленев АС. Современный взгляд на проблему диабетической нефропатии у детей и подростков с сахарным диабетом 1 типа: роль ренин-ангиотензин-альдостероновой систем. Лечащий врач. 2019;(3):57-63.
[Skobeleva KV, Tyrtova LV, Nikitina IL, Olenev AS.
Modern view on the problem of diabetic nephropathy
in children and adolescents with type 1 diabetes: the
role of renin-angiotensin-aldosterone systems. Attending
Physician. 2019;(3):57-63 (In Russian)]
9. Попыхова ЭБ, Степанова ТВ, Лагутина ДД,
Кириязи ТС, Иванов АН. Роль сахарного диабета
в возникновении и развитии эндотелиальной дисфункции. Проблемы эндокринологии. 2020;66(1):
47-55. Popyhova EB, Stepanova TV, Lagutina DD,
Kiriiazi TS, Ivanov AN. Th e role of diabetes in the onset
and development of endothelial dysfunction. Problems of
Endocrinology. 2020;66(1):47-55. (In Russian)] 10. Ahmed N, Th ornalley PJ. Роль конечных
продуктов гликирования в патогенезе осложнений сахарного диабета. Русский медицинский журнал. Эндокринология. 2009;(9):642-650. [Ahmed N,
Th ornalley PJ. Тhe Role of glycation end products in
the pathogenesis of diabetes complications. Russian
medical journal. Endocrinology. 2009;(9):642-650.
(In Russian)]
11. Ансари НА, Рашид З. Неферментативное гликирование белков: от диабета до рака. Биомедицинская
химия. 2010;56(2):168-178. [Ansari NA, Rashid Z.
non-Enzymatic protein glycation: from diabetes to
cancer. Biomedical Chemistry. 2010;56(2):168-178
(In Russian)]
12. Успенская ЮА, Горина ЯВ, Салмин ВВ, Кувачева
НВ, Фурсов АА, Пожиленкова ЕА, Салмина АБ.
Рецепторы конечных продуктов гликирования.
Вестник Новосибирского государственного университета. Серия: Биология, клиническая медицина.
2014;12(4):68–76. [Assumption AYu, Gorina YV, Salmin
VV, Kovacheva NIn, Fursov AA, Pozhilenkova EA, Salmina
AB. Тhe Receptors of advanced glycation end products.
Bulletin of the Novosibirsk state University. Series: Biology,
clinical medicine. 2014; 12(4):68-76. (In Russian)]
13. Salmin VV, Taranushenko TE, Kiseleva NG,
Salmina AB. Noninvasive Sensing of Serum sRAGE and
Glycated Hemoglobin by Skin UV-Induced Fluorescence.
Biomedical Photonics for Diabetes Research. Boca Raton:
CRC Press. 2022. 22 p.
14. Аметов АС, Черникова НА, Пуговкина ЯВ.
Гомеостаз глюкозы у здорового человека в различных
условиях. Cовременный взгляд ЭНДОКРИНОЛОГИЯ:
новости, мнения, обучение. 2016;(1):45-55. [Ametov
AS, Chernikova NA, Pugovkina YV. Glucose Homeostasis
in a healthy person in various conditions. Modern view
ENDOCRINOLOGY: news, opinions, training. 2016;(1):
45-55 (In Russian)]
15. Fishman SL, Sonmez H, Basman C, Singh V,
Poretsky L. Th e role of advanced glycation end-products
in the development of coronary artery disease in patients
with and without diabetes mellitus: a review. Molecular
Medicine. 2018;24(1):59-71. DOI: 10.1186/s10020-018-
0060-3
16. Успенская ЮА, Комлева ЮК, Пожиленкова ЕА,
Салмин ВВ, Лопатина ОЛ, Фурсов АА, Лаврентьев ПВ,
Белова ОА, Салмина АБ. Лиганды RAGE-белков:
роль в межклеточной коммуникации и патогенезе воспаления. Вестник РАМН. 2015;70 (6):694-
703. [Uspenskaya YuA, Komleva YuK, Olenkova EA,
Salmin VV, Lopatina OL, Fursov AA, Lavrentiev PV,
Belova OA, Salmina AB. Ligands of RAGE-proteins:
role in intercellular communication and pathogenesis of
infl ammation. Bulletin of the RAMS. 2015;70(6):694-703.
(In Russian)]
17. Вербовой АФ, Шаронова ЛА. Диабетическая
автономная нейропатия – препятствие на пути достижения гликемического контроля. Медицинский
совет. 2020;(4):144-151. [Verbovoy A.F., Sharonova L.A.
Diabetic autonomic neuropathy is a barrier to achieving
glycemic control. Meditsinskiy sovet = Medical Council.
2020;(4):144–151. (In Russian)]
18. Tsoporis JN, Hatziagelaki E, Gupta S. Circulating
Ligands of the Receptor for Advanced Glycation End
Products and the Soluble Form of the Receptor Modulate
Cardiovascular Cell Apoptosis in Diabetes. Molecules.
2020;25(22):5235. DOI:10.3390/molecules25225235
19. Jisu Jeong, Jiye Lee, Juyeon Lim, Soyoung Cho,
Soyoung An, Myungeun Lee, Nara Yoon, Miran Seo,
Soyeon Lim, Sungha Park.. Soluble RAGE attenuates
AngII-induced endothelial hyperpermeability by
disrupting HMGB1-mediated crosstalk between AT1R
and RAGE. Experimental & Molecular Medicine.
2019;51(9):1-15. DOI: 10.1038/s12276-019-0312-5
20. Chinedum Eleazu, Norsuhana Omar, Oon
Zhi Lim, Boon Seng Yeoh, Nik Hazlina, Nik Hussain,
Mahaneem Mohamed. Obesity and Comorbidity: Could
Simultaneous Targeting of esRAGE and sRAGE Be the
Panacea? Frontiers in Physiology. 2019;(10):1-13. DOI:
org/10.3389/fphys.2019.00787
21. Kim C. Donaghue, M. Loredana Marcovecchio,
R. P. Wadwa, Emily Y. Chew, Tien Y. Wong, Luis Eduardo
Calliari, Bedowra Zabeen, Mona A. Salem, Maria E.
Craig. ISPAD Clinical Practice Consensus Guidelines
2018: Microvascular and macrovascular complications
in children and adolescents. Pediatr Diabetes. 2018;(27):
262-274. DOI: 10.1111/pedi.12742
22. Дедов ИИ, Шестакова МВ, Майоров АЮ.
Алгоритмы специализированной медицинской
помощи больным сахарным диабетом 9-й выпуск. Сахарный диабет. 2019;(22):1-145. [Dedov II,
Shestakova MV, Mayorov AYu. Standards of specialized
diabetes care 9 the edition. Diabetes Mellitus. 2019;(22):1-
145. (In Russian)]
23. Дедов ИИ, Петеркова ВА. Справочник детского эндокринолога. М.: Литтерра; 2020. 494 с. [Dedov
II, Peterkova VA. Handbook of pediatric endocrinologist.
M.: Litterra; 2020. 494 р. (In Russian)]
24. Федеральные клинические рекомендации
«Сахарный диабет 1 типа у детей». М.: Общественная
организация «Российская ассоциация эндокринологов». 2021. 80 с. [Federal Clinical Recommendations
«Type 1 Diabetes Mellitus in Children». M.: Public
Organization «Russian Association of Endocrinologists».
2021. 80 р. (In Russian)]
25. Guanqun Chao,Yue Zhu, Liying Chen. Role and
Risk Factors of Glycosylated Hemoglobin Levels in Early
Disease Screening. Journal of Diabetes Research. 2021. 8 р.
DOI: 10.1155/2021/662658726. How to cite this article: Samanta S. Glycated
hemoglobin and subsequent risk of microvascular
and macrovascular complications. Indian Journal of
Medical Sciences. 2021;73(2):230-238. DOI: 10.25259/
IJMS_16_2020
27. Витебская АВ. Новые критерии компенсации сахарного диабета у детей и подростков
и пути их достижения. Педиатрия (Прил. к журн.
Consilium Medicum). 2018; (4): 63-66. [Vitebskaya
AV. New criteria of diabetes mellitus compensation
for children and adolescents and ways to achieve them.
Pediatrics (Suppl. Consilium Medicum). 2018; (4): 63-66.
(In Russian)]
28. Вершинина МГ, Стериополо НА, Исаева ОМ.
Выбор аналитической системы для определения
гликированного гемоглобина. Лабораторная служба. 2018;7(4):58-59. [Vershinina MG, Steriopolo NA,
Isaeva OM. Choice of analytical system for determination of
glycated hemoglobin. Laboratory Service. 2018;7(4):58-59.
(In Russian)]
29. Вершинина МГ, Стериополо НА, Ибрагимова ВЮ. Низкий уровень HbA1c – клинический статус или ошибка преаналитики? Лабораторная служба. 2020;9(2):32-35. [Vershinina MG, Steriopolo NA,
Ibragimova VYu. Th e low level of glycated hemoglobin –
the clinical status or preanalitical error? Laboratory
Service. 2020;9(2):32-35. (In Russian)]
30. Башнина ЕБ, Царгасова ИМ. Проблемы поддержания метаболической компенсации сахарного диабета 1 типа у подростков. Лечащий врач.
2018;(3):19-21. [Bashnina E.B., Tsargasova I.M. Problems
of maintaining metabolic compensation of type 1 diabetes
mellitus in adolescents. Attending Physician. 2018;(3):19-
21. (In Russian)]

Цель исследования. Изучить влияние инсулинорезистентности на минеральную плотность кости (МПК) и динамику маркеров костного ремоделирования у женщин с синдромом поликистозных яичников (СПКЯ) в постменопаузальном периоде. Оценить информативность антимюллерова
гормона (АМГ) для прогнозирования костных изменений при СПКЯ.
Материал и методы. В поперечное исследование были включены 85 женщин с СПКЯ в постменопаузе (54,2±2,7 года). Группу контроля составили
43 женщин (54,7±6,4 года). Всем пациенткам было проведено клинико-лабораторное обследование, включавшее измерение глюкозы натощак, инсулина, с расчетом индекса HOMA-IR, АМГ, ФСГ, ЛГ, паратирина (ПТГ), витамина D, свободного тестостерона, сывороточных маркеров костного ремоделирования (P1NP и b-CTх) и МПК поясничного отдела позвоночника с использованием двухэнергетической рентгеновской абсорбциометрии.
Результаты. Возраст наступления менопаузы у женщин с СПКЯ был выше, чем у контроля (р < 0,01); при СПКЯ отмечалась тенденция к повышению в уровня АМГ (р < 0,005); АМГ обратно коррелировал с уровнем ФСГ (r = -0,389, p = 0,05); выявлена прямая корреляция между ПТГ
и тестостероном (r = 0,201, p = 0,03), а также связь ПТГ с маркерами P1NP и b-CTх ( r = -0,532, р = 0,001 и r = 0,413, р = 0,002); зависимость между
АМГ с b-CTх (r = 0,507, р = 0,001); между МПК поясничного отдела позвоночника с инсулином (г = 0,267, р = 0,04) и обратная корреляция МПК
поясничного отдела позвоночника с АМГ (r = -0,581; p = 0,03).
Заключение. СПКЯ может рассматриваться как самостоятельный фактор риска развития остеопороза. Выявленные ассоциации предполагают,
что гиперинсулинемия напрямую влияет на структуру кости независимо от ожирения, и может частично объяснять более высокую плотность
кости, наблюдаемую при СПКЯ. У лиц с СПКЯ в постменопаузе выявлены относительно высокие значения АМГ, коррелирующие с маркером
костной резорбции, что указывает на связь с процессами адаптивного костного ремоделирования. Однако, необходимы дальнейшие исследования для выяснения основных механизмов и анализа прогностических возможностей АМГ в оценке состояния костной ткани при СПКЯ.

1. Di Bari F, Catalano A, Bellone F, Martino G,
Benvenga S. Vitamin D, bone metabolism, and fracture
risk in polycystic ovary syndrome. International Journal
of Environmental Research and Public Health. 2021; 11(2),
116. DOI:10.3390/metabo11020116
2. Emanuel RHK, Roberts J, Docherty PD, Lunt H,
Campbell RE, Möller K. A review of the hormones
involved in the endocrine dysfunctions of polycystic
ovary syndrome and their interactions. Frontiers in
Endocrinology (Lausanne). 2022; (13):1017468. DOI:
10.3389/fendo.2022.1017468
3. Pereira-Eshraghi CF, Chiuzan C, Zhang Y, Tao RH,
McCann M, Neugut YD, Printz A, Fennoy I, Cree-Green M, Oberfi eld SE, Sopher AB. Obesity and insulin resistance,
not polycystic ovary syndrome, are independent predictors
of bone mineral density in adolescents and young women.
Hormone Research in Paediatrics. 2019; 92(6): 365–371.
DOI:10.1159/000507079
4. Krishnan A, Muthusami S. Hormonal alterations
in PCOS and its infl uence on bone metabolism. Journal
of Endocrinology. 2017; 232(2):R99–113. DOI:10.1530/
JOE-16-0405
5. Moore JM, Waldrop SW, Cree-Green M. Weight
management in adolescents with polycystic ovary
syndrome. Current Obesity Reports. 2021; 10(3):311–321.
DOI: 10.1007/s13679-021-00437-x
6. Khalaf M, Morera J, Bourret A, Reznik Y, Denoual C,
Herlicoviez M, Mittre H, Benhaim A. BMP system
expression in GCs from polycystic ovary syndrome women
and the in vitro eff ects of BMP4, BMP6, and BMP7 on GC
steroidogenesis. European Journal of Endocrinology. 2013;
168(3):437-444. DOI:10.1530/EJE-12-0891
7. Liu DB, Sui C, Wu TT, Wu LZ, Zhu YY, RenZH.
Association of bone morphogenetic protein (BMP)/Smad
signaling pathway with fracture healing and osteogenic
ability in senile osteoporotic fracture in humans and
rats. Medical Science Monitor. 2018; (24):4363–4371.
DOI:10.12659/MSM.905958
8. Kim JH, Yang YR, Kwon KS, Kim N. Anti-mullerian
hormone negatively regulates osteoclast diff erentiation
by suppressing the receptor activator of nuclear factorκB ligand pathway. Journal of Bone Metabolism. 2021;
28(3):223–230. DOI:10.11005/jbm.2021.28.3.223
9. Forslund M, Landin-Wilhelmsen K, Schmidt J,
Brännström M, Trimpou P, Dahlgren E. Higher
menopausal age but no diff erences in parity in women
with polycystic ovary syndrome compared with controls.
Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 2019;
98(3):320–326. DOI:10.1111/aogs.13489
10. Baek JH, Kim H, Kim KY, Jung J. Insulin resistance
and the risk of diabetes and dysglycemia in Korean general
adult population. Journal of Diabetes and Metabolism.
2018; 42(4):296–307. DOI: 10.4093/dmj.2017.0106
11. Gao L, Zhang P, Wang Y, Zhang W, Zhao J, Liu Y,
Liu J, He S. Relationship between body composition and
bone mineral density in postmenopausal women with
type 2 diabetes mellitus. BMC Musculoskeletal Disorders.
2022; 23(1):893. DOI: 10.1186/s12891-022-05814-8
12. Cree-Green M, Rahat H, Newcomer BR,
Bergman BC, Brown MS, Coe GV, Newnes L, GarciaReyes Y, Bacon S, Th urston JE, Pyle L, Scherzinger
A, Nadeau KJ. Insulin resistance, hyperinsulinemia,
and mitochondria dysfunction in nonobese girls with
polycystic ovarian syndrome. Journal of the Endocrine
Society. 2017; 1(7):931–944. DOI:10.1210/js.2017-00192
13. Napoli N, Conte C, Pedone C, Strotmeyer ES,
Barbour KE, Black DM, Samelson EJ, Schwartz AV. Eff ect
of insulin resistance on BMD and fracture risk in older
adults. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism.
2019; 104(8):3303–3310. DOI: 10.1210/jc.2018-02539
14. Emmanuelle NE, Marie-Cécile V, Florence T, JeanFrançois A, Françoise L, Coralie F, Alexia V. Critical role of
estrogens on bone homeostasis in both male and female:
from physiology to medical implications. International
Journal of Molecular Sciences. 2021; 22(4):1568. DOI:
10.3390/ijms22041568
15. Cnen J, Lin P, Tsai Y, Yang Y, Kang H. Androgens
and androgen receptor actions on bone health and disease:
from androgen defi ciency to androgen therapy. Cells.
2019; 8(11):1318. DOI: 10.3390/cells8111318
16. Mu Y, Cheng D, Yin TL, Yang J. Vitamin D
and polycystic ovary syndrome: a narrative review.
Reproductive Sciences. 2021; 28(8):2110–2117. DOI:
10.1007/s43032-020-00369-2

Цель исследования. Изучить варианты прохождения пучков грудоспинного нерва через все элементы плечевого сплетения.
Материал и методы. Выполнено макро-микроскопическое внутриствольное препарирование 121 препарата плечевого сплетения от 105 трупов мужчин и женщин в возрасте 40-100 лет. Из полученных показателей в программе MS Excel 12 сформирована база данных и проведена их
обработка с использованием Statistica for Windows 12. Все показатели проверены на нормальность распределения по критерию Шапиро-Уилко.
При описании изучаемых показателей определялась медиана Mе [Q1, Q3], сопряженность между параметрами оценивали с помощью рангового
коэффициента корреляции Спирмена.
Результаты. Макро-микроскопическое препарирование выявило, что грудоспинной нерв имеет четкое фасцикулярное внутриствольное строение
и состоит из разного количества пучков: в 76 % состоит из двух пучков, 21,5 % – трех, 1,7 % – одного и 0,8 % – четырех. Установлено, что чем дальше от спинного мозга и ближе к грудоспинному нерву, тем меньше у его пучков вариантов внутриствольных путей: 5 – в спинномозговых нервах,
7 – в стволах, всегда одинаково в их задних разделениях и заднем пучке. Пучки грудоспинного нерва только в 43 % проходят через спинномозговой
нерв С7, средний ствол, его заднее разделение и задний пучок, а в остальных случаях (57 %) – дублируются или проходят по другим путям.
Заключение. Полученные данные о вариантах внутриствольных путей пучков грудоспинного нерва обосновывают более частое использование спинномозгового нерва С7, среднего ствола и его заднего разделения в качестве нерва-трансфера при контралатеральных транспозициях
при параличе верхней конечности

1. Williams AA, Smith HF. Anatomical entrapment of
the dorsal scapular and long thoracic nerves, secondary
to brachial plexus piercing variation. Anatomical Science
International. 2020;(95):67–75. DOI:10.1007/s12565-019-
00495-1
2. Benes M, Kachlik D, Belbl M, Kunc V, Havlikova S,
Whitley A, Kunc V. A meta-analysis on the anatomical variability of the brachial plexus: Part I – Roots, trunks, divisions
and cords. Annals of Anatomy – Anatomischer Anzeiger.
2021;(238): 151751. DOI:10.1016/j.aanat.2021. 151751 
3. Bedarida V, Qassemyar Q, Temam S, Janot F,
Kolb F. Facial functional outcomes analysis aft er reconstruction by vascularized thoracodorsal nerve free fl ap
following radical parotidectomy with facial nerve sacrifi ce. Head and Neck. 2020; 42(5):994-1003.DOI: 10.1002/
hed.26076
4. Guyonvarch P, Benmoussa N, Moya‐Plana A,
Leymarie N, Mangialardi ML, Honart J, Kolb F.
Th oracodorsal artery perforator free fl ap with vascularized thoracodorsal nerve for head and neck reconstruction following radical parotidectomy with facial nerve
sacrifi ce: Step‐by‐step surgical technique video. Head and
Neck. 2021; 43(7):2255–2258. DOI:10.1002/hed.26701
5. O’Brien AL, Dengler J, Moore AM. Nerve Transfers
to Shoulder and Elbow. Operative Brachial Plexus Surgery.
2021;(54):163-179. DOI: 10.1007/978-3-030-69517-0_14
6. Noland ShS, Boyd K, Mackinnon SE. Principles and
Practice. 2021; 1216 p.
7. Schusterman MA, Jindal R, Unadkat JV, Spiess AM.
Lateral Branch of the Th oracodorsal Nerve (LaT
Branch) Transfer for Biceps Reinnervation. Plastic and
Reconstructive Surgery Global Open. 2018;6(3):e1698.
DOI: 10.1097/ GOX.0000000000001698
8. Bai Y, Han S, Guan JY, Lin J, Zhao MG, Liang GB.
Contralateral C7 nerve transfer in the treatment of upper-extremity paralysis: a review of anatomical basis,
surgical approaches, and neurobiological mechanisms.
Reviews in the Neurosciences. 2022; 33(5):491-514. DOI:
10.1515/revneuro-2021-0122
9. Potter SM, Ferris SI. Vascularized thoracodorsal
to suprascapular Nerve transfer, a Novel technique to
Restore shoulder Function in partial Brachial plexopathy.
Journal Frontiers in Surgery. 2016;(17):1–6. DOI: 10.3389/
fsurg.2016.00017
10. Gesslbauer B, Hruby LA, Roche AD, Farina D,
Blumer R, Oskar C, Aszmann OC. Axonal components of
nerves innervating the human arm. Annals of Neurology.
2017;82(3):396–408. DOI:10.1002/ana.25018
11. Байтингер ВФ, Силкина КА. Чувствительная
иннервация микрохирургических лоскутов, применяемых в реконструктивной маммопластике. Вопросы
реконструктивной и пластической хирургии. 2014;2
(49):11–19. [Baitinger VF, Silkina KA. Sensitive innervation of microsurgical fl aps used in reconstructive mammoplasty. Issues of Reconstructive and Plastic Surgery.
2014;2 (49):11–19. (In Russian)]
12. Lee KS. Variation of the spinal nerve compositions
of thoracodorsal nerve. Clinical Anatomy. 2007;20(6):660–
662. DOI: 10.1002/ca.20484
13. Lu W, Xu JG, Wang DP, Gu YD. Microanatomical
study on the functional origin and direction of the thoracodorsal nerve from the trunks of brachial plexus. Wiley
InterScience. 2008;21(6):509–513. DOI: 10.1002/ca.20656
14. Zin T, Maw M, Oo S, Pai DR, Paijan RB, Kyi M.
How I do it: Simple and eff ortless approach to identify thoracodorsal nerve on axillary clearance procedure.
Ecancermedicalscience.2012;6:255.
15. Anthony DJ, Basnayake BMOD, Ganga NM,
Mathangasinghe Y, Malalasekera AP. An improved technical trick for identifi cation of the thoracodorsal nerve during axillary clearance surgery: a cadaveric dissection study.
Patient Safety in Surgery. 2018;12(1):18. DOI:10.1186/
s13037-018-0164-2
16. Raksakulkiat R, Leechavengvongs S, Malungpaishrope K, Uerpairojkit C, Witoonchart K, Chongthammakun
S. Restoration of winged scapula in upper arm type brachial plexus injury: anatomic feasibility. Journal of the
Medical Association of Th ailand. 2009;92(6):S244–250.
17. Budhiraja V, Rastogi R, Asthana AK. Variations in
the formation of the median nerve and its clinical correlation. Folia Morphologica. 2012;71(1):28–30.

Цель исследования. Изучить динамику изменений показателей кровотока гепатопанкреатодуоденальной зоны у пациентов с пострезекционной
печеночной недостаточностью.
Материал и методы. Изучены результаты оперативного лечения 54 пациентов с очаговыми заболеваниями печени различной этиологии, оперированных путем выполнения лапаротомии, резекции печени. Пациенты были разделены на 2 клинические группы: I группа – пациенты с благоприятным течением послеоперационного периода (n=44 (81 %)), II группа – пациенты с диагностированной в послеоперационном периоде ППН
(n=10 (19 %)). Всем пациентами в предоперационном периоде и на третьи сутки после операции было проведено ультразвуковое дуплексное сканирование, с оценкой линейной скорости кровотока (ЛСК) воротной вены, ЛСК печеночной артерии и индекса резистентности (RI) печеночной
артерии, диаметра воротной вены, нижней полой вены, аорты и селезеночной вены.
Результаты. При анализе показателей УЗДГ гепатобиллиарной зоны у пациентов, перенесших резекцию печени и с развившейся в послеоперационном периоде пострезекционной печеночной недостаточности были зарегистрированы значимые отличия от показателей группы пациентов
с благоприятным послеоперационном периодом как до, так и после операции.
Заключение. Таким образом, предоперационная оценка объёма и скорости линейного кровотока печени предположить функцию остатка печени
и является необходимым исследованием перед гепатэктомией. Ультразвуковое дуплексное сканирование в свою очередь позволяет оценить кровоток в области гепатобиллиарной зоны, является общедоступным, скрининговым, неивазивным и безопасным методом исследования

1. Рагулина НВ, Ионин ВП, Васильев ПВ, Чижиков АВ. Осложнения после обширных резекций печени. Университетская медицина Урала. 2017;2(9):82–
84 [Ragulina NV, Ionin VP, Vasiliev PV, Chizhikov AV.
Complications aft er extensive liver resections. University
Medicine of the Urals. 2017;2(9):82–84. (In Russian)]
2. Kim DS, Lim TS, Jeon MY, Kim BK, Park JY, Kim DY,
Ahn SH, Han KH, Baatarkhuu O, Kim SU. Transarterial
Chemoembolization in Treatment-Naïve and Recurrent
Hepatocellular Carcinoma: A Propensity-Matched
Outcome Analysis. Digestive Diseases and Sciences.
2019;64(12):3660-3668.
3. Lillemoe HA, Marcus RK, Kim BJ, Narula N,
Davis CH, Shi Q, Wang XS, Aloia TA. Severe Preoperative
Symptoms Delay Readiness to Return to Intended
Oncologic Th erapy (RIOT) Aft er Liver Resection. Annals
of Surgical Oncology. 2019;26(13):4548-4555.
4. Okumura S, Tabchouri N, Leung U, Tinguely P,
Louvet C, Beaussier M, Gayet B, Fuks D. Laparoscopic
Parenchymal-Sparing Hepatectomyfor Multiple
Colorectal Liver Metastases Improves Outcomes and
Salvageability: A Propensity Score-Matched Analysis.
Annals of Surgical Oncology. 2019;26(13):4576-4586.
5. Wang L, Ye G, Zhan C, Sun F, Lin Z, Jiang W,
Wang Q. Clinical Factors Predictive of a Better Prognosis
of Pulmonary Metastasectomy for Hepatocellular
Carcinoma. Annals of Th oracic Surgical. 2019;108(6):1685-
1691.
6. Liu Z, Li Q, Shen R, Ci L, Wan Z, Shi J, Huang Q,
Yang X, Zhang M, Yang H, Sun R, Wang Z, Huang F, Lu T,
Fei J. Betaine/GABA transporter-1 (BGT-1) defi ciency in
mouse prevents acute liver failure in vivo and hepatocytes
apoptosis in vitro. Biochimica et Biophysica Acta –
Molecular Basis of Disease. 2020;(1):1866(3).
7. de Miguel MP, Prieto I, Moratilla A, Arias J,
Aller MA. Mesenchymal Stem Cells for Liver Regeneration
in Liver Failure: From Experimental Models to Clinical
Trials. Stem Cells International. 2019;(2):3945672
8. Zhao LY, Yang DD, Ma XK, Liu MM, Wu DH,
Zhang XP, Ruan DY, Lin JX, Wen JY, Chen J, Lin Q, Dong
M, Qi JJ, Hu PS, Zeng ZL, Chen ZH, Wu XY. Th e Prognostic
Value of aspartate aminotransferase to lymphocyte ratio
and systemic immune-infl ammation index for Overall
Survival of Hepatocellular Carcinoma Patients Treated
with palliative Treatments. Journal of Cancer. 2019;10(10):
2299-2311.
9. Zhou P, Chen B, Miao XY, Zhou JJ, Xiong L, Wen Y,
Zou H. Comparison of FIB-4 Index and Child-Pugh
Score in Predicting the Outcome of Hepatic Resection
for Hepatocellular Carcinoma. Journal of Gastrointestinal
Surgery. 2019. DOI: 10.1007/s11605-019-04123-1
10. Bogner A, Reissfelder C, Striebel F, Mehrabi A,
Ghamarnejad O, Rahbari M, Weitz J, Rahbari NN.
Intraoperative Increase of Portal Venous Pressure is an
Immediate Predictor of Posthepatectomy LiverFailure
Aft er Major Hepatectomy: A Prospective Study.
Annals of Surgical. 2021;274(1):e10-e17. DOI: 10.1097/
SLA.0000000000003496
11. Ложко ПМ, Кудло ВВ, Киселевский ЮМ,
Бойко ДН, Гуща ТС. Анатомо-экспериментальное
обоснование резекции печени методом гидродиссекции. Журнал Гродненского государственного медицинского университета. 2020;18(2):129-136. [Lozhko
PM, Kudlo VV, Kiselevsky YuM, Boyko DN, Guscha
TS. Anatomical and experimental substantiation of liver
resection by hydrodissection. Journal of Grodno State
Medical University. 2020;18(2):129-136. (In Russian)]

Цель исследования. Разработать способ профилактики клинически значимой послеоперационной панкреатической фистулы (КЗ ППФ) при резекционных вмешательствах на поджелудочной железе (ПЖ) и оценить его эффективность в клинической практике.
Материал и методы. В исследование включено 96 пациентов, в том числе 57 (59 %) мужчин и 49 (41 %) женщин. Пациентам были выполнены
стандартные объемы оперативных вмешательств: панкреатодуоденальная резекция, дистальная и центральная резекция ПЖ. Пациенты были
разделены на две группы. Контрольная группа (46 пациентов) включала пациентов, которым проводилась стандартная профилактика послеоперационной панкреатической фистулы (ППФ), включающая в себя октреотид. Основную группу составили 50 пациентов, которым проводилась
комплексная медикаментозная периоперационная профилактика ППФ, включающая в себя предоперационное назначение ферментозаместительной терапии, а также периоперационное назначение препаратов преднизолон, октреотид, дротаверин и апротекс.
Результаты. Среди пациентов в сравниваемых группах не было статистически значимых различий по возрасту, полу, оценке по ASA и индексу
массы тела. При оценке послеоперационных осложнений выявлено статистически значимое снижение «больших» осложнений (Clavien – Dindo
III – IV) в основной группе пациентов по сравнению с контрольной группой (8 случаев (16 %) против 16 случаев (34,8 %), соответственно, р=0,03).
Выявлено уменьшение частоты КЗ ППФ у пациентов из основной группы с «мягкой» паренхимой ПЖ (7,4 % против 29,6 %, р=0,03), а также
у пациентов промежуточного и высокого риска стратифицированных по Fistula risk score (6,1 % против 26,7 %, р = 0,02).
Заключение. Предложенный способ профилактики ППФ позволяет снизить частоту развития КЗ ППФ, а также «больших» послеоперационных
осложнений у пациентов из группы высокого риска c «мягкой» паренхимой ПЖ.

1. Nishikawa M, Yamamoto J, Hoshikawa M,
Einama T, Noro T, Aosasa S, Tsujimoto H, Ueno H,
Kishi Y. Stapler sizes optimized for pancreatic thickness
can reduce pancreatic fi stula incidence aft er distal
pancreatectomy. Surgery Today. 2020;50(6):623-631.
DOI: 10.1007/s00595-019-01929-z
2. Coppola A, Cammarata R, La Vaccara V, Farolfi T,
Caputo D. New Frontiers of Early Diagnosis of Pancreatic
Fistula aft er Pancreaticoduodenectomy. Journal of Clinical
Medicine. 2022;11(21):6423. doi: 10.3390/jcm11216423
3. Hai H, Li Z, Zhang Z, Cheng Y, Liu Z, Gong J,
Deng Y. Duct-to-mucosa versus other types of
pancreaticojejunostomy for the prevention of postoperative
pancreatic fi stula following pancreaticoduodenectomy.
Th e Cochrane Database of Systematic Reviews.
2022;3(3):CD013462. DOI: 10.1002/14651858.CD013462.
pub2
4. Marchegiani G, Bassi C. Prevention, prediction, and
mitigation of postoperative pancreatic fi stula. Th e British
Journal of Surgery. 2021;108(6):602-604. DOI: 1093/bjs/
znab125
5. Jiang L, Ning D, Chen X. Prevention and treatment
of pancreatic fi stula aft er pancreatic body and tail
resection: current status and future directions. Frontiers of
Medicine. 2020;14(3):251-261. DOI: 10.1007/s11684-019-
0727-3
6. Kawaida H, Kono H, Hosomura N, Amemiya H,
Itakura J, Fujii H, Ichikawa D. Surgical techniques and
postoperative management to prevent postoperative
pancreatic fi stula aft er pancreatic surgery. World Journal
of Gastroenterology. 2019;25(28):3722-3737. DOI: 3748/
wjg.v25.i28.3722
7. Morris-Stiff G, Khithani A, Cegniz T, Aleassa E,
Anzlovar N. Perioperative pancreatic enzyme replacement
therapy reduces morbidity in patients undergoing
pancreatoduodenectomy. JAMA. 2001; (286): 1754-1758.
8. Lee PJ, Papachristou GI. New insights into acute
pancreatitis. Nature reviews. Gastroenterology and
hepatology. 2019;16(8):479-496. DOI:10.1038/s41575-
019-0158-2
9. Antila A, Siiki A, Sand J, Laukkarinen J.
Perioperative hydrocortisone treatment reduces
postoperative pancreatic fi stula rate aft er open distal
pancreatectomy. A randomized placebo-controlled trial.
Pancreatology. 2019;19(5):786-792. DOI: 10.1016/j.
pan.2019.05.457
10. Laaninen M, Sand J, Nordback I, Vasama K,
Laukkarinen J. Perioperative Hydrocortisone Reduces
Major Complications Aft er Pancreaticoduodenectomy:
A Randomized Controlled Trial. Annals of Surgery.
2016;264(5):696-702. DOI:1097/SLA.0000000000001883
11. Li T, D’Cruz RT, Lim SY, Shelat VG. Somatostatin
analogues and the risk of post-operative pancreatic
fi stulas aft er pancreatic resection – A systematic review
& meta-analysis. Pancreatology. 2020;20(2):158-168.
DOI: 10.1016/j.pan.2019.12.015
12. Schorn S, Vogel T, Demir IE, Demir E, Safak O,
Friess H, Ceyhan GO. Do somatostatin-analogues have the
same impact on postoperative morbidity and pancreatic
fi stula in patients aft er pancreaticoduodenectomy and
distal pancreatectomy? – A systematic review with metaanalysis of randomized-controlled trials. Pancreatology.
2020;20(8):1770-1778. DOI: 10.1016/j.pan.2020.10.043
13. PARANOIA Study Group:; Writing group:; HalleSmith JM, Pande R, Hall L, Hodson J, Roberts KJ; Steering
committee:; Arshad A, Connor S, Conlon KCP, Dickson
EJ, Giovinazzo F, Harrison E, de Liguori Carino N,
Hore T, Knight SR, Loveday B, Magill L, Mirza D, Mitta A,
Pandanaboyana S, Perry RJ, Pinkney T, Samra J, Siriwardena
AK, Satoi S, Skipworth J, Stättner S, Sutcliff e RP, Tingstedt B,
Roberts KJ. Perioperative interventions to reduce pancreatic
fi stula following pancreatoduodenectomy: meta-analysis.
Th e British Journal of Surgery. 2022;109(9):812-821. DOI:
10.1093/bjs/znac074
14. Chong E, Ratnayake B, Lee S, French JJ, Wilson C,
Roberts KJ, Loveday BPT, Manas D, Windsor J, White S,
Pandanaboyana S. Systematic review and meta-analysis
of risk factors of postoperative pancreatic fi stula aft er
distal pancreatectomy in the era of 2016 International
Study Group pancreatic fi stula defi nition. HPB (Oxford).
2021;23(8):1139-1151. DOI: 10.1016/j.hpb.2021.02.015
15. Téoule P, Bartel F, Birgin E, Rückert F, Wilhelm TJ.
Th e Clavien-Dindo Classifi cation in Pancreatic Surgery:
A Clinical and Economic Validation. Journal of
Investigative Surgery. 2019;32(4):314-320. DOI: 10.1080/
08941939.2017.1420837. Epub 2018 Jan 16. PMID:
29336625
16. Callery MP, Pratt WB, Kent TS, Chaikof EL,
Vollmer CM Jr. A prospectively validated clinical
risk score accurately predicts pancreatic fi stula aft er
pancreatoduodenectomy. Journal of the American
College of Surgeons. 2013;216(1):1-14. DOI: 10.1016/j.
jamcollsurg.2012.09.002
17. Partelli S, Andreasi V, Schiavo Lena M,
Rancoita PMV, Mazza M, Mele S, Guarneri G, Pecorelli N,
Crippa S, Tamburrino D, Doglioni C, Falconi M. Th e role
of acinar content at pancreatic resection margin in the
development of postoperative pancreatic fi stula and acute
pancreatitis aft er pancreaticoduodenectomy. Surgery.
2021;170(4):1215-1222. DOI: 10.1016/j.surg.2021.03.047 
18. Dalton EC, Johns MS, Rhodes L, Merritt WT
3rd, Petrelli NJ, Tiesi GJ. Meta-Analysis on the Eff ect of
Pasireotide for Prevention of Postoperative Pancreatic
Fistula. Th e American Surgeon. 2020;86(12):1728-1735.
DOI: 10.1177/0003134820947371
19. Zhang B, Yuan Q, Li S, Xu Z, Chen X, Li L,
Shang D. Risk factors of clinically relevant postoperative
pancreatic fi stula aft er pancreaticoduodenectomy:
A systematic review and meta-analysis. Medicine
(Baltimore). 2022;101(26):e29757. DOI: 10.1097/MD.
0000000000029757
20. Tseng DS, Molenaar IQ, Besselink MG, van
Eijck CH, Borel Rinkes IH, van Santvoort HC. Pancreatic
Exocrine Insuffi ciency in Patients With Pancreatic
or Periampullary Cancer: A Systematic Review.
Pancreas. 2016;45(3):325-30. DOI: 10.1097/MPA.
0000000000000473
21. Кригер АГ, Горин ДС, Калдаров АР, Галкин ГВ.
Профилактика панкреатического свища после панкреатодуоденальной резекции. Хирургия. Журнал
им. Н.И. Пирогова. 2020;(11):61–65. [Kriger AG, Gorin
DS, Kaldarov AR, Galkin GV. Prevention of pancreatic
fi stula aft er pancreatoduodenectomy. Pirogov Russian
Journal of Surgery = Khirurgiya. Zurnal im. N.I. Pirogova.
2020;(11):61–65. (In Russian) DOI: 10.17116/hirurgia
202011161
22. Tarvainen T, Sirén J, Kokkola A, Sallinen V. Eff ect
of Hydrocortisone vs Pasireotide on Pancreatic Surgery
Complications in Patients With High Risk of Pancreatic
Fistula: A Randomized Clinical Trial. JAMA surgery.
2020;155(4):291-298. DOI: 10.1001/jamasurg.2019.6019
23. Xia W, Zhou Y, Lin Y, Yu M, Yin Z, Lu X, Hou B, Jian Z.
A Predictive Risk Scoring System for Clinically Relevant
Pancreatic Fistula Aft er Pancreaticoduodenectomy.
Medical science monitor: International Medical Journal of
Experimental and Clinical Research. 2018;(24):5719-5728.
DOI: 10.12659/MSM.911499
24. Дроздов ЕС, Кошель АП, Родионова ОВ,
Дибина ТВ, Клоков СС. Предикторы возникновения
наружных панкреатических свищей после резекции поджелудочной железы. Хирургия. Журнал им.
Н.И. Пирогова. 2020;(11):107–114. [Drozdov ES, Koshel
AP, Rodionova OV, Dibina TV, Klokov SS. Predictors of
external pancreatic fi stulae aft er pancreatic resection.
Pirogov Russian Journal of Surgery = Khirurgiya. Zurnal
im. N.I. Pirogova. 2020;(11):107–114. (In Russian)]
DOI: 10.17116/hirurgia2020111107
25. Дроздов ЕС, Ли НА, Баранов АИ,
Мерзликин НВ, Кушеева ВА, Шкатов ДА, Клоков СС,
Грищенко МЮ. Предикторное значение ультразвуковой эластометрии в возникновении послеоперационной панкреатической фистулы после резекции
поджелудочной железы. Сибирское медицинское
обозрение. 2022;(4):103-108. [Drozdov ES, Li NA,
Baranov AI, Merzlikin NV, Kusheeva VA, Shkatov DA,
Klokov SS, Grishchenko MYu. Predictive value of
ultrasonic elastometry in the occurrence of postoperative
pancreatic fi stula aft er pancreatic resection. Siberian
Medical Review. 2022;(4):103-108. (In Russian)]
DOI: 10.20333/25000136-2022-4-103-108

Цель исследования. Изучить особенности питания пациентов с рассеянным склерозом, сравнить полученные данные с данными научных исследований.
Материал и методы. Одномоментное поперечное исследование 77 пациентов Челябинской области с выявлением диагноза РС, дополненное
литературным обзором. Использует вопросы структурированного интервью, включающее набор рациона, режима питания, личного к диетическому учету в приеме РС.
Результаты. Питание большинства включенных в исследование пациентов с рассеянным склерозом представлено западной моделью. При этом
80,5 % из них оценивают свой рацион как традиционный, разнообразный и не меняют свои диетические привычки. Ни один из респондентов не
придерживался каких-либо общих или специфичных диет. Растительная диета или питание с преобладанием растительных ингредиентов также
не были распространены среди наших пациентов. Отмечено, что страдающие рассеянным склерозом больные недостаточно информированы
о возможности влияния качества питания на тяжесть, бремя заболевания, и не рассматривают диету как возможный компонент лечения.
Заключение. Медицинское сообщество и люди с рассеянным склерозом нуждаются в доступной и достоверной информации об эффективности
диетических вмешательств в составе комплексной терапии заболевания. Необходимо дальнейшее изучение роли питания и отдельных нутриентов в развитии и прогрессировании рассеянного склероза в процессе крупных научных исследований.

1. Altowaijri G, Fryman A, Yadav V. Dietary
Interventions and Multiple Sclerosis. Current Neurology
and Neuroscience Reports. 2017;17(3):28. DOI: 10.1007/
s11910-017-0732-3
2. Клинические рекомендации по диагностике и коррекции нарушений пищевого статуса.
Национальная ассоциация клинического питания.
2013. Ссылка активна на 13.07.2022. [Clinical guidelines for the diagnosis and correction of eating disorders.
National Association of Clinical Nutrition. 2013. Accessed
July 13, 2022. (In Russian)]. http://dietology-ion.ru/
images/Recom_clinic.pdf
3. Stoll SS, Nieves C, Tabby DS, Schwartzman R. Use
of therapies other than disease-modifying agents, including complementary and alternative medicine, by patients with multiple sclerosis: a survey study. Th e Journal
of the American Osteopathic Association. 2012;(112):
22-28.
4. Fitzgerald KC, Tyry T, Salter A, Cofi eld SS,
Cutter G, Fox R, Marrie RA. Diet quality is associated with disability and symptom severity in multiple
sclerosis. Neurology. 2018;90(1):e1-e11. DOI: 10.1212/
WNL.0000000000004768
5. Питание и диетотерапия при рассеянном склерозе. В кн: Жизнь с рассеянным склерозом.
Руководство для пациентов, членов их семей и медицинских работников. М.: Практическая медицина;
2019: 235. [Nutrition and diet therapy in multiple sclerosis.
In: Life with multiple sclerosis. A guide for patients,
their families and healthcare professionals. Moscow:
Prakticheskaya meditsina; 2019: 235. (In Russian)]
6. Wahls T, Scott MO, Alshare Z, Rubenstein L,
Darling W, Carr L, Smith K, Chenard CA, LaRocca N,
Snetselaar L. Dietary approaches to treat MS-related fatigue:
comparing the modifi ed Paleolithic (Wahls Elimination)
and low saturated fat (Swank) diets on perceived fatigue
in persons with relapsing-remitting multiple sclerosis:
study protocol for a randomized controlled trial. Trials.
2018.19(1):309. DOI: 10.1186/s13063-018-2680-x.
7. Parks NE, Jackson-Tarlton CS, Vacchi L, Merdad
R, Johnston BC. Dietary interventions for multiple sclerosis-related outcomes. Cochrane Database of Systematic
Reviews. 2020;5(5):CD004192. DOI: 10.1002/14651858.
CD004192.pub4
8. Fanara S, Aprile M, Iacono S, Schirò G, Bianchi A,
Brighina F, Dominguez LJ, Ragonese P, Salemi G. Th e Role
of Nutritional Lifestyle and Physical Activity in Multiple
Sclerosis Pathogenesis and Management: A Narrative
Review. Nutrients. 2021;13(11):3774. DOI: 10.3390/
nu13113774
9. Esposito S, Bonavita S, Sparaco M, Gallo A,
Tedeschi G. Th e role of diet in multiple sclerosis: A review. Nutritional neuroscience. Nutritional Neuroscience.
2018;(21):377-390. DOI: 10.1080/1028415X.2017.1303016
10. Esposito S, Sparaco M, Maniscalco GT,
Signoriello E, Lanzillo R, Russo C, Carmisciano L,
Cepparulo S, Lavorgna L, Gallo A, Trojsi F, Brescia
Morra V, Lus G, Tedeschi G, Saccà F, Signori A, Bonavita S.
Lifestyle and Mediterranean diet adherence in a cohort of
Southern Italian patients with Multiple Sclerosis. Multiple
Sclerosis and Related Disorders. 2021;(47):102636.
DOI: 10.1016/j.msard.2020.102636
11. Martinez-Lacoba R, Pardo-Garcia I, Amo-Saus E,
Escribano-Sotos F. Mediterranean diet and health outcomes: A systematic meta-review. European Journal of
Public Health. 2018;(28):955-961. DOI: 10.1093/eurpub/
cky113
12. Giacometti J, Grubi´c-Kezele T. Olive Leaf
Polyphenols Attenuate the Clinical Course of
Experimental Autoimmune Encephalomyelitis and
Provide Neuroprotection by Reducing Oxidative Stress,
Regulating Microglia and SIRT1, and Preserving Myelin
Integrity. Oxidative Medicine and Cellular Longevity.
2020;2020; (61)25638. DOI: 10.1155/2020/6125638
13. Butcher PJ. Milk consumption and multiple sclerosis--an etiological hypothesis. Medical Hypotheses.
1986;19(2):169-178. DOI: 10.1016/0306-9877(86)90057-5
14. Malosse D, Perron H, Sasco A, Seigneurin JM.
Correlation between milk and dairy product consumption and multiple sclerosis prevalence: a worldwide study. Neuroepidemiology. 1992;11(4-6):304-312.
DOI: 10.1159/000110946
15. Steff erl A, Schubart A, Storch M, Amini A,
Mather I, Lassmann H, Linington C. Butyrophilin, a milk
protein, modulates the encephalitogenic T cell response
to myelin oligodendrocyte glycoprotein in experimental
autoimmune encephalomyelitis. Th e Journal of immunology. 2000;165(5):2859-2865. DOI: 10.4049/jimmunol.165.5.2859
16. Vaarala O, Kaste J, Klemetti P, Saukkonen T,
Savilahti E, Akerblom HK. Development of immune response to orally administered cow milk protein in young
children. Annals of the New York Academy of Sciences.
1996;(778):429-430. DOI: 10.1111/j.1749-6632.1996.
tb21165.x
17. Chunder R, Weier A, Mäurer H, Luber N,
Enders M, Luber G, Heider T, Spitzer A, Tacke S,
Becker-Gotot J, Kurts C, Iyer R, Ho PP, Robinson WH,
Lanz TV, Kuerten S. Antibody cross-reactivity between
casein and myelin-associated glycoprotein results in
central nervous system demyelination. Proceedings of
the National Academy of Sciences of the United States of
America. 2022;119(10):e2117034119. DOI: 10.1073/
pnas.2117034119
18. Niland B, Cash BD. Health Benefi ts and Adverse
Eff ects of a Gluten-Free Diet in Non-Celiac Disease
Patients. Gastroenterology & Hepatology. 2018;14(2):
82-91.
19. Beckett JM, Bird M-L, Pittaway JK, Ahuja KD.
Diet and Multiple Sclerosis: Scoping Review of WebBased Recommendations. Interactive Journal of Medical
Research. 2019;8:e10050. DOI: 10.2196/10050
20. Th omsen HL, Jessen EB, Passali M, Frederiksen JL. Th e role of gluten in multiple sclerosis: A systematic review. Multiple Sclerosis and Related Disorders.
2019;27:156-163. DOI: 10.1016/j.msard.2018.10.019
21. Lee JE, Bisht B, Hall MJ, Rubenstein LM,
Louison R, Klein DT, Wahls TL. A Multimodal,
Nonpharmacologic Intervention Improves Mood and
Cognitive Function in People with Multiple Sclerosis.
Journal of the American College of Nutrition. 2017; (36):
150-168. DOI: 10.1080/07315724.2016.1255160
22. Maxwell KF, Wahls T, Browne RW, Rubenstein L,
Bisht B, Chenard CA, Snetselaar L, Weinstock-Guttman B,
Ramanathan M. Lipid profi le is associated with decreased
fatigue in individuals with progressive multiple sclerosis
following a diet-based intervention: Results from a pilot
study. PLoS ONE. 2019; (14): e0218075. DOI: 10.1371/
journal.pone.0218075
23. Passali M, Josefsen K, Frederiksen JL,
Antvorskov JC. Current Evidence on the Effi cacy of
Gluten-Free Diets in Multiple Sclerosis, Psoriasis, Type 1
Diabetes and Autoimmune Th yroid Diseases. Nutrients.
2020;12(8):2316. DOI: 10.3390/nu12082316
24. Grode L, Bech BH, Jensen TM, Humaidan P,
Agerholm IE, Plana-Ripoll O, Ramlau-Hansen CH.
Prevalence, incidence, and autoimmune comorbidities of celiac disease: A nation-wide, population-based
study in Denmark from 1977 to 2016. European Journal
Of Gastroenterology and Hepatology. 2018;(30):83-91.
DOI:10.1097/MEG.0000000000000992
25. Ludvigsson JF, Olsson T, Ekbom A, Montgomery SM. A population-based study of coeliac disease,
neurodegenerative and neuroinfl ammatory diseases.
Alimentary Pharmacology and Th erapeutics. 2007;(25):
1317-1327. DOI:10.1111/j.1365-2036.2007.03329.x
26. Cosnes J, Cellier C, Viola S, Colombel J-F,
Michaud L, Sarles J, Hugot J-P, Ginies J-L, Dabadie A,
Mouterde O, Allez M, Nion‐Larmurier I. Incidence of autoimmune diseases in celiac disease: Protective eff ect of the
gluten-free diet. Clinical Gastroenterology and Hepatology.
2008;(6):753-758. DOI: 10.1016/j.cgh.2007.12.022
27. Escudié J-B, Rance B, Malamut G, Khater S,
Burgun A, Cellier C, Jannot A-S. A novel data-driven workfl ow combining literature and electronic health records to
estimate comorbidities burden for a specifi c disease: A case
study on autoimmune comorbidities in patients with celiac disease. BMC Medical Informatics and Decision Making.
2017;(17):140. DOI:10.1186/s12911-017-0537-y

Данные о распространенности инфекции Helicobacter pylori (НР) среди детей и подростков сильно различаются. Разброс показателя колеблется
от 3 до 38 %. Однако распространённость среди детей, родители которых постоянно контактируют с НР-позитивными пациентами, ранее не
изучалась. Это явилось обоснованием нашего исследования.
Цель исследования. Изучить распространенность инфекции НР и симптомов функциональной диспепсии у детей врачей-гастроэнтерологов.
Материал и методы. Проведено поперечное исследование. Обследовано 29 детей в возрасте от 1 года до 17 лет, родители которых работают
врачами-гастроэнтерологами. Всего обследовано 23 семьи, из них в 17 было по 1 ребенку, в 6 – по двое родных братьев/сестёр. До 3 лет было
3 ребенка, 3-6 лет – 6, 7-11 – 6 и 12-17 – 14 детей. Мальчиков было 19, девочек – 10. Обследование проводилось в 2 этапа. На первом проведен
опрос родителей по разработанной нами анкете, на вопросы которой ответили родители 29 детей. Второй этап включал исследование кала на
антиген НР с помощью одностадийного иммунохроматографического метода, в нем приняли участие 21 ребенок и 19 родителей, работающих
врачами-гастроэнтерологами. Статистическая обработка полученных результатов проводилась с использованием пакетов программ Microsoft
Excel 2010, STATISTICA 8.0 (StatSoft Inc., США).
Результаты. Симптомы постпрандиального дискомфорта зарегистрированы у 23,8 % детей. Абдоминальный болевой синдром выявлен у 19,0 %
детей. Давность возникновения симптомов варьировала от 3 месяцев до 2 лет, у большинства (6 детей) – от 1 года до 2 лет. Антиген НР в кале
обнаружен у 28,6 % детей. У 5 НР(+) детей выявлен НР(+) антиген у одного из родителей.
Заключение. Антиген НР в кале обнаружен у 28,6 % детей врачей-гастроэнтерологов. Симптомы функциональной диспепсии выявлены
у 42,8 % детей врачей-гастроэнтерологов. Преобладает постпрандиальный дистресс-синдром. Функциональная диспепсия, ассоциированная с Helicobacter pylori, выявлена у 9,5 % детей.

1. Martínez-Santos VI, Hernández Catalán M, Ojeda
Salazar LO, Orozco Gómez OA, Lorenzo SI, Santos Gómez
R, Romero-Castro NS, Reyes Ríos R, Martinez Carrillo
DN, Fernández-Tilapa G. Helicobacter pylori prevalence
in healthy Mexican children: comparison between two
non-invasive methods. Peer Journal. 2021;(9):e11546.
DOI: 10.7717/peerj.11546. eCollection 2021
2. Xu C, Wu Y, Xu S. Association between Helicobacter pylori infection and growth outcomes in children:
A meta-analysis. Helicobacter. 2022;27(1):e12861. DOI:
10.1111/hel.12861
3. Рожкова НГ. Распространенность инфицирования Helicobacter pylori среди детей врачей-гастроэнтерологов. Медицина завтрашнего дня : Материалы
XX межрегиональной научно-практической конференции студентов и молодых ученых, Чита, 20–23
апреля 2021 года. Чита: Читинская государственная
медицинская академия; 2021: 98-99. [Rozhkova NG.
Th e prevalence of Helicobacter pylori infection among
children of gastroenterologists. Medicine of Tomorrow:
Proceedings of the XX Interregional Scientifi c and Practical
Conference of Students and Young Scientists, Chita, April
20–23, 2021. Chita: Chita State Medical Academy; 2021:
98-99. (In Russian)]
4. Щербаков ПЛ. Эпидемиология хеликобактериоза. Ссылка активна на 23.05.2022. [Shcherbakov
PL. Epidemiology of Helicobacter pylori. Accessed May
23 2022 (In Russian.)] URL: https://www.gastroscan.ru/
literature/authors/2976
5. Бакулина НВ, Симаненков ВИ, Бакулин ИГ,
Ильчишина ТА. Распространенность хеликобактерной инфекции среди врачей. Экспериментальная
и клиническая гастроэнтерология. 2017;148(12): 20–24.
[Bakulina NV, Simanenkov VI, Bakulin IG, Ilchishina TA.
Prevalence of Helicobacter Pylori infection among
physicians. Experimental and Clinical Gastroenterology.
2018; 149 (1): 23–27. (In Russian)]
6. Парменова ЛП. Функциональная диспепсия
у детей в свете Римских критериев. Смоленский медицинский альманах. 2022; (2): 34-36. DOI 10.37903/
SMA.2022.2.7. [Parmenova LP. Functional dyspepsia in
children in light of the Rome criteria. Smolensk Medical
Almanac. 2022; (2): 34-36. (In Russian)] DOI 10.37903/
SMA.2022.2.7
7. Miller J, Khlevner J, Rodriguez L. Upper
Gastrointestinal Functional and Motility Disorders
in Children. Pediatric Clinics of North America.
2021;68(6):1237-1253. DOI: 10.1016/j.pcl.2021.07.009
8. Brodwall A, Brekke M. General practitioners’
experiences with children and adolescents with functional gastro-intestinal disorders: a qualitative study in
Norway. Scandinavian Journal of Primary Health Care.
2021;39(4):543-551. DOI: 10.1080/02813432.2021.2012347
9. Drossman DA, Tack J. Rome Foundation Clinical
Diagnostic Criteria for Disorders of Gut-Brain Interaction.
Gastroenterology. 2022;162(3):675-679. DOI: 10.1053/j.
gastro.2021.11.019
10. Панарина ПВ, Сивкова ГЮ, Пекло ГН.
О применении метода иммунохроматографического анализа в лабораторной диагностике лямблиоза.
Национальные приоритеты России. 2011;2(5):132-133. [Panarina PV, Sivkova GU, Peklo GN. On the application
of the method of immunochromatographic analysis in
the laboratory diagnosis of giardiasis. Russia’s National
Priorities. 2011;2(5):132-133. (In Russian)]
11. Мудров ВА. Алгоритмы регрессионного анализа в биомедицинских исследованиях с помощью пакета программ SPSS. Забайкальский медицинский вестник. 2020; (2):177-190. [Mudrov VA. Regression analysis
algorithms in biomedical research using the SPSS soft ware
package. Transbaikal Medical Bulletin. 2020; (2):177-190.
DOI 10.52485/19986173_2020_2_177. (In Russian)]
12. Hooi JKY, Lai WY, Ng WK. Global Prevalence
of Helicobacter pylori Infection: Systematic Review and
Meta-Analysis. Gastroenterology. 2017; 153(2): 420-429.
DOI: 10.1053/j.gastro.2017.04.022
13. Аминова АИ, Акатова АА, Гумбатова ЗФ,
Возгомент ОВ, Абдуллаева ГД. Диагностика инфекции Helicobacter pylori у детей. Вопросы практической
педиатрии. 2018; 13(4): 72–81. [Aminova AI, Akatova
AA, Gumbatova ZF, Vozgoment OV, Abdullaeva GD.
Diagnosis of Helicobacter pylori infection in children.
Issues of Practical Pediatrics. 2018; 13(4): 72–81.
(In Russian)] DOI: 10.20953/1817-7646-2018-4-72-81
14. Урсова НИ. Хеликобактерная инфекция у детей: проблема, анализ обобщенных данных. Лечащий
врач. 2009; (6):14-17. [Ursova NI. Helicobacter pylori
infection in children: problem, analysis of generalized
data. Attending Doctor. 2009; (6): 14-17. (In Russian)]
15. Щербаков ПЛ. Особенности хеликобактериоза у детей в России. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2008;(8): 45-51. [Shcherbakov
PL. Features of helicobacteriosis in children in Russia.
Experimental and Clinical Gastroenterology. 2008;(8):
45-51. (In Russian)]
16. Национальная программа оптимизации
вскармливания детей первого года жизни в Российской Федерации: методические рекомендации
ФГАУ «НМИЦ здоровья детей» Минздрава России.
М. : б. и.; 2019. 112. [National program for optimization
of feeding of children of the fi rst year of life in the Russian
Federation: guidelines FSAU “National Medical Research
Center of Children’s Health” of the Ministry of Health of
Russia. M. : b. i.; 2019. 112. (In Russian)]
17. Бельмер СВ, Волынец ГВ, Горелов АВ,
Гурова ММ, Звягин АА, Корниенко ЕА, Новикова ВП,
Печкуров ДВ, Приворотский ВФ, Тяжева АА,
Файзуллина РА, Хавкин АИ, Эрдес СИ. Диагностика
и лечение хеликобактерной инфекции у детей. В кн.:
Материалы XXIX Конгресса детских гастроэнтерологов России и стран СНГ («Актуальные проблемы
абдоминальной патологии у детей»). Под общей редакцией проф. С.В. Бельмера и проф. Л.И. Ильенко.
М.: ИД «Медпрактика-М»; 2022: [Belmer SV,
Volynets GV, Gorelov AV, Gurova MM, Zvyagin AA,
Kornienko EA, Novikova VP, Pechkurov DV, Privorotsky
VF, Tyazheva AA, Fayzullina RA, Khavkin AI, Erdes SI.
Diagnosis and treatment of Helicobacter pylori infection
in children. In. Materials of the XXIX Congress of
Pediatric Gastroenterologists of Russia and the CIS
(“Actual problems of abdominal pathology in children”).
Under the general editorship of prof. S.V. Belmer and prof.
L.I. Ilyenko. M.: ID “Medpractika-M”; 2022: 178-191.
(In Russian)]
18. Щербак ВА, Щербак НМ. Новые данные об этиологии и патогенезе хронических гастродуоденитов
у детей. Забайкальский медицинский вестник. 2014;
(3):148-155. [Shcherbak VA, Shcherbak NM. New data on
the etiology and pathogenesis of chronic gastroduodenitis
in children. Transbaikal Medical Bulletin. 2014; (3):
148-155. (In Russian.)]
19. Jones NL, Koletzko S, Goodman K, Bontems P,
Cadranel S, Casswall T, Czinn S, Gold BD, Guarner J,
Elitsur Y, Homan M, Kalach N, Kori M, Madrazo A,
Megraud F, Papadopoulou A, Rowland M. Joint
ESPGHAN/ NASPGHAN Guidelines for the Management
of Helicobacter pylori in Children and Adolescents
(Update 2016). Journal of Pediatric Gastroenterology
and Nutrition. 2017; 64 (6): 991–1003. DOI: 10.1097/
MPG.0000000000001594
20. Hyams JS, Di Lorenzo S, Saps M, Shulman RJ,
Staiano A, van Tilburg M. Functional gastrointestinal
disorders: child/adolescent. Gastroenterology. 2016; (150):
1456–1468. DOI: 10.1053/j.gastro.2016.02.015
21. Бельмер СВ, Корниенко ЕА, Волынец ГВ,
Гурова ММ, Звягин АА, Камалова АА, Луппова НЕ,
Нижевич АА, Новикова ВП, Печкуров ДВ,
Приворотский ВФ, Сатаев ВУ, Тяжева АА, Файзуллина
РА, Хавкин АИ. Функциональные расстройства
органов пищеварения у детей. В кн.: Материалы
XXIX Конгресса детских гастроэнтерологов России
и стран СНГ («Актуальные проблемы абдоминальной патологии у детей»). Под общей редакцией проф. С.В. Бельмера и проф. Л.И. Ильенко. – М.:
ИД «Медпрактика-М»; 2022: 192-276. [Belmer SV,
Kornienko EA, Volynets GV, Gurova MM, Zvyagin AA,
Kamalova AA, Luppova NE, Nizhevich AA, Novikova VP,
Pechkurov DV, Privorotsky VF, Sataev VU, Tyazheva AA,
Fayzullina RA, Khavkin AI. Functional gastro-intestinal
disorders in children. In. Materials of the XXIX Congress of
Pediatric Gastroenterologists of Russia and the CIS (“Actual
problems of abdominal pathology in children”). Under the
general editorship of prof. S.V. Belmer and prof. L.I. Ilyenko.
M.: ID “Medpractika-M”; 2022: 192-276. (In Russian)]
22. Tringali A, Th omson M, Dumonceau JM,
Tavares M, Tabbers MM, Furlano R, Spaander M,
Hassan C, Tzvinikos C, Ijsselstijn H, Viala J, Dall’Oglio L,
Benninga M, Orel R, Vandenplas Y, Keil R, Romano C,
Brownstone E, Hlava Š, Gerner P, Dolak W, Landi R,Huber WD, Everett S, Vecsei A, Aabakken L, AmilDias J, Zambelli A. Pediatric gastrointestinal endoscopy:
European Society of Gastrointestinal Endoscopy (ESGE)
and European Society for Paediatric Gastroenterology
Hepatology and Nutrition (ESPGHAN) Guideline
Executive summary. Endoscopy. 2017; (49): 83–91.
DOI: 10.1055/s-0042-111002
23. Бельмер СВ, Волынец ГВ, Горелов АВ, Гурова ММ,
Звягин АА, Корниенко ЕА, Новикова ВП, Печкуров ДВ,
Приворотский ВФ, Тяжева АА, Файзуллина РА, Хавкин
АИ, Эрдес СИ. Функциональные расстройства органов
пищеварения у детей. Рекомендации Общества детских гастроэнтерологов, гепатологов и нутрициологов. Часть 2. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2020;65(5):100-111. [Belmer SV, Volynets GV,
Gorelov AV, Gurova MM, Zvyagin AA, Kornienko EA,
Novikova VP, Pechkurov DV, Privorotskiy VF, Tyazheva AA,
Fayzullina RА, Khavkin AI, Erdes SI. Functional digestive
disorders in children. Guidelines of the Society of Pediatric
Gastroenterologists, Hepatologists and Nutritionists. Part 2.
Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin
of Perinatology and Pediatrics). 2020;65(5):100-111. DOI:
10.21508/1027-4065-2020-65-5-100-111. (In Russian)]
24. Бельмер СВ, Волынец ГА, Горелов АВ,
Гурова ММ, Звягин АА, Корниенко ЕА, Новикова ВП,
Печкуров ДВ, Приворотский ВФ, Тяжева AА, Файзуллина РА, Хавкин АИ, Эрдес СИ. Функциональные
расстройства органов пищеварения у детей.
Рекомендации Общества детских гастроэнтерологов,
гепатологов и нутрициологов. Часть 1. Российский
вестник перинатологии и педиатрии. 2020;65(4):150-
161. [Belmer SV, Volynets GV, Gorelov АV, Gurova MM,
Zvyagin AA, Kornienko EA, Novikova VP, Pechkurov DV,
Privorotskiy VF, Tyazheva AA, Faizullina RA, Khavkin AI,
Erdes SI. Functional digestive disorders in children.
Guidelines of Society of Pediatric Gastroenterologists,
Hepatologists and Nutritionists. Part 1. Rossiyskiy Vestnik
Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology
and Pediatrics). 2020;65(4):150-161. DOI: 10.21508/1027-
4065-2020-65-4-150-161. (In Russian)]
25. Бельмер СВ, Волынец ГВ, Гурова ММ,
Звягин АА, Корниенко ЕА, Новикова ВП, Печкуров ДВ,
Приворотский ВФ, Тяжева АА, Файзуллина РА,
Хавкин АИ, Эрдес СИ. Проект клинических рекомендаций Российского общества детских гастроэнтерологов, гепатологов и нутрициологов по диагностике
и лечению функциональных расстройств органов
пищеварения у детей. Вопросы детской диетологии.
2019; 17(6): 27–48. [Belmer SV, Volynets GV, Gurova MM,
Zvyagin AA, Kornienko EA, Novikova VP, Pechkurov DV,
Privorotsky VF, Tyazheva AA, Fayzullina RA, Khavkin AI,
Erdes SI. Draft clinical guidelines of the Russian
Society of Pediatric Gastroenterologists, Hepatologists
and Nutritionists on the diagnosis and treatment of
functional disorders of the digestive system in children.
Issues of Children’s Nutrition. 2019; 17(6): 27–48. DOI:
10.20953/1727-5784-2019-6-27-48. (In Russian)]
26. Sugano K, Tack J, Kuipers EJ, Graham DY, ElOmar EM, Miura S, Haruma K, Asaka M, Uemura N,
Malfertheiner P. Kyoto global consensus report on
Helicobacter pylori gastritis. Gut. 2015;64:1353-1367.
DOI: 10.1136/gutjnl-2015-309252
27. Поливанова ТВ, Каспаров ЭВ, Вшивков ВА,
Муравьева НГ. Инфекция Helicobacter pylori у школьников с гастроинтестинальными жалобами Агинского
Бурятского округа. Экспериментальная и клиническая
гастроэнтерология. 2018;149(1): 23–27. [Polivanova TV,
Kasparov EV, Vshivkov VA, Muravyova NG. Helicobacter
pylori infection in schoolchildren with gastrointestinal
complaints in the Aginsky Buryat District. Experimental
and Clinical Gastroenterology. 2018; 149 (1): 23–27.
(In Russian)]
28. Iwańczak BM, Buchner AM, Iwańczak F. Clinical
diff erences of Helicobacter pylori infection in children.
Advances in Clinical and Experimental Medicine. 2017
Oct;26(7):1131-1136. DOI: 10.17219/acem/60581
29. Mišak Z, Hojsak I, Homan M. Review: Helicobacter
pylori in pediatrics. Helicobacter. 2019; 24(1): e12639.
DOI: 10.1111/hel.12639

Цель исследования. Изучить особенности качества жизни у пациентов с острой и хронической формами ишемической болезни сердца на момент
госпитализации в стационарных условиях.
Материал и методы. В исследования были включены 140 пациентов, находившихся на стационарном лечении. Всем пациентам было предложено заполнить Миннесотский, Сиэтловский опросник и аналогово-визуальной шкалу. Обследуемые пациенты были распределены на 2 группы,
1 включала больных с диагностированным острым инфарктом миокарда с подъемом сегмента ST, 2 группа состояла из пациентов с декомпенсацией хронической формы ишемической болезни сердца. Оценка качества жизни в обеих группах проводилась на момент госпитализации в кардиологическом отделении многопрофильного стационара.
Результаты. По данным Миннесотского опросника, худшее качество жизни было обнаружено среди пациентов с декомпенсацией хронической
формы ИБС, где наблюдались высокие значения суммы баллов шкалы Ликерта – 23 (17; 33) по сравнению с пациентами группы 1 – 11 (6; 20).
Анализ Сиэтловского опросника выявил значительные физические ограничения (PL) в группе 2, где показатель PL достигал значения 76 (62,2; 84)
в отличие от пациентов с ОИМ, значение PL которых составляло 81 (69; 88,9). Выраженность ангинозных болей (AS) преобладала во 2 группе – 50
(0; 100), по сравнению с 1 группой – 100 (50; 125). Частота встречаемости стенокардии (AF) у пациентов с ХИБС составляла 60 (20; 90), что было
чаще, чем в группе с ОИМ, где показатель AF оказался равен 90 (60; 100) (p=0,009), при этом уровень качества жизни (DP) в данной группе ниже
относительно группы 1 – 39,5±9,4 и 49±10,2 баллов соответственно. Показатель удовлетворенности лечением (TS) в обеих группах был сопоставим 95 (89; 95) и 95 (88,8; 95). По результатам аналогово-визуальной шкалы во 2 группе качество жизни было достоверно ниже, чем в группе
1 – 60 (50; 75) против 70 (60; 80).
Заключение. Выявлено сниженное качество жизни у пациентов с ХИБС по сравнению, с пациентами имеющими ОИМ на этапе стационарного лечения. Худшие показатели качества жизни пациентов группы хронической ИБС отчасти обусловлены тем, что у пациентов группы ОИМ
ранее не было выявлено анамнеза ИБС, кроме того, за последний месяц до госпитализации они вели привычный образ жизни и не наблюдали
ухудшения состояния. Так же вероятно более высокие показатели КЖ в группе ОИМ могут быть обусловлены разницей в методике терапии,
а конкретнее проведением ЧТКА. У пациентов с декомпенсацией стабильной стенокардии напряжения по сравнению с группой ОИМ, были
худшие показатели КЖ по шкалам – AS, AF, DP, что вероятнее всего связано проведением ЧТКА в группе ОИМ. У пациентов с декомпенсацией
ПИКС по сравнению с группой ОИМ были худшие показатели КЖ по шкалам – PL, AS, DP, что вероятно обусловлено проведением ЧТКА в группе
ОИМ – шкала AS, длительным анамнезом ХСН и более низкими показателями ФВЛЖ – шкалы PL и DP. При сравнении подгруппы пациентов
с стабильной стенокардией и подгруппы ПИКС, у пациентов с ПИКС, были худшие показатели КЖ по шкалам – PL и DP, причиной чего вероятнее всего являлся длительный анамнез ХСН и более низкие показатели ФВЛЖ, тогда как у пациентов с декомпенсацией стабильной стенокардии напряжения были худшие показатели КЖ по шкалам – AS, AF, вследствие наличия в анамнезе стабильной стенокардии напряжения и соответствующей симптоматики.

1. Ahmadi Sh, Teixeira LFM, Domingues JRV. Quality
of life, sexual function, and bariatric surgery: a systematic
review. Obesity and Metabolism. 2020;(17):64-72.
DOI: 10.14341/omet10335
2. Наркевич ИА, Немятых ОД, Ковалева КА,
Ратова ЛГ, Трушникова ИО, Парижская ЕН,
Конради АО. Оценка качества жизни пациентов со
стабильной ишемической болезнью сердца после реваскуляризации миокарда. Фармация и фармакология. 2020;8(6):465-475. [Narkevich IA, Nemyatykh OD,
Kovaleva KA, Ratova LG, Trushnikova IO, Parisskaya EN,
Konradi AO. Assessment of the quality of life of patients with stable ischemic heart disease aft er myocardial
revascularization. Pharmacy and Pharmacology. 2020;8(6):
465-475. DOI: 10.19163/2307-9266-2020-8-6-465-475.
(In Russian)]
3. Farooq F, Imran N, Abbas M. Ivabradine eff ects on
heart rate and quality of life among chronic heart failure
patients. Th e Journal of the Pakistan Medical Association.
2021;71(1-A): 86-89. DOI 10.47391/JPMA.638
4. Rakhmatullov FK, Kuryaeva AM, Moiseeva IJ.
Electrophysiological eff ects of Valsalva manoeuver
during early pregnancy in patients with paroxysms of
orthodromic atrioventricular tachycardia. Asian Journal
of Pharmaceutical and Clinical Research. 2017. 10(8):108.
DOI:10.22159/ajpcr.2017.v10i8.18827
5. Jin Q, Zhou Y, Yin D, He H. Eff ects of cluster
nursing on cardiac function and quality of life in coronary heart disease patients with chronic heart failure:
A protocol of randomized controlled trial. Medicine
(Baltimore). 2022;101(14):e29091. DOI 10.1097/MD.
0000000000029091
6. Goyal P, Choi JJ, Pinheiro LC, Schenck E, Chen R,
Jabri A, Satlin MJ, Campion Jr TR, Nahid M, Ringel JB,
Hoff man KL, Alshak MN, Li HA, Wehmeyer GT,
Rajan M, Reshetnyak E, Hupert N, Horn EM, Martinez FJ,
Gulick RM, Saff ord MM. Clinical Characteristics
of Covid-19 in New York City. Th e New England Journal
of Medicine. 2020;17;173(10):855-858. DOI: 10.7326/
M20-2730
7. Стабильная ишемическая болезнь сердца.
Клинические рекомендации Российского кардиологического общества. 2020:114. [Stable ischemic
heart disease. Clinical recommendations of the Russian
Cardiological Society. 2020:114. (In Russian)]
8. Schopfer DW, Beatty AL, Meyer CS, Whooley MA.
Longitudinal Association Between Angina Pectoris and
Quality of Life. Th e American Journal of Cardiology. 2022;
(164):1-6. – DOI 10.1016/j.amjcard.2021.10.037
9. Cummings MJ, Baldwin MR, Abrams D,
Jacobson SD, Meyer BJ, Balough EM, Aaron JG, Claassen J,
Rabbani LE, Hastie J, Hochman BR, Salazar-Schicchi J,
Yip NH, Brodie D, O’Donnell MR. Epidemiology, clinical course, and outcomes of critically ill adults with
COVID-19 in New York City: a prospective cohort study.
Lancet. 2020;6;395(10239):1763-1770. DOI:10.1016/
S0140-6736(20)31189-2
10. Mavromatis K, Gershlick A. Th e Impact of the
ISCHEMIA Trial on Clinical Practice: an Interventionist’s
Perspective. Cardiovascular Drugs and Th erapy.
2022;36(5):1019-1026. DOI 10.1007/s10557-021-07230-x.
– EDN XEHSAH

В настоящее время воспалительные заболевания кишечника (ВЗК) занимают лидирующие позиции в структуре заболеваний желудочно-кишечного тракта (ЖКТ). Изменение родо - видового состава кишечной микробиоты может отражать тяжесть патологического процесса
и служить новым диагностическим признаком, способствовать своевременной коррекции схем лечения. Данный клинический случай свидетельствует об изменении представителей микробиома кишечника у пациентки с тяжелой формой болезни Крона, что способствует модификации схем лекарственнной терапии и позволяет достичь стойкой ремиссии

1. Burakova I, Smirnova Yu, Gryaznova M,
Syromyatnikov M, Chizhkov P, Popov E, Popov V. Th e
Eff ect of Short-Term Consumption of Lactic Acid Bacteria
on the Gut Microbiota in Obese People. Nutrients.
2022;14(16):3384. DOI:10.3390/nu14163384
2. Loke YL, Chew MT, Ngeow YF, Lim WWD, Peh SC.
Colon Carcinogenesis. Th e Interplay Between Diet
and Gut Microbiota. Frontiers in Cellular and Infection
Microbiology. 2020;8(10):603086. DOI: 10.3389/fcimb.
2020.603086
3. Caparrós E, Wiest R, Scharl M, Rogler G, Gutiérrez
Casbas A, Yilmaz B, Wawrzyniak M, Francés R.
Dysbiotic microbiota interactions in Crohn’s disease. Gut
Microbes. 2021;13(1):1949096. DOI: 10.1080/19490976.
2021.1949096
4. Glassner KL, Abraham BP, Quigley EM. Th e
microbiome and infl ammatory bowel disease. Th e Journal
of Allergy and Clinical Immunology. 2020;145(1):16-27.
DOI: 10.1016/j.jaci.2019.11.003
5. Torres J, Mehandru S, Colombel J, PeyrinBiroulet L. Crohn’s disease. Lancet. 2017;389(10080):
1741-1755. DOI: 10.1016/S0140-6736(16)31711-1
6. Gajendran M, Loganathan P, Catinella A,
Hashash J. A comprehensive review and update on
Crohn’s disease. Dis Mon. 2018;64(2):20-57. DOI:10.1016/
j.disamonth.2017.07.001
7. He Y, Hu Y, Yuan M, Xu W, Du Y, Liu J. Prognostic
and therapeutic implication of m6A methylation in Crohn disease. Medicine (Baltimore). 2022;101(51):32399.
DOI: 10.1097/MD.0000000000032399
8. Sokol H, Landman C, Seksik P, Berard L, Montil M,
Nion-Larmurier I, Bourrier A, Le Gall G, Lalande V, De
Rougemont A, Kirchgesner J, Daguenel A, Cachanado M,
Rousseau A, Drouet É, Rosenzwajg M, Hagege H,
Dray X, Klatzman D. Fecal microbiota transplantation to
maintain remission in Crohn’s disease: a pilot randomized
controlled study. Microbiome. 2020;8(1):12. DOI: 10.1186/
s40168-020-0792-5

Представлен клинический случай наблюдения пациента с болезнью Ормонда. В начале заболевания клиническая картина была представлена неспецифическими симптомами. Дифференциальная диагностика проводилась между ретроперитонеальным фиброзом и лимфомой, гематомой. Описаны этапы диагностического поиска, проведен анализ результатов клинического наблюдения, лабораторных и инструментальных методов обследования. Представлен успешный опыт использования терапии глюкокортикостероидами (преднизолон в дозе 30 мг в сутки), на фоне которой наступил регресс ретроперитонеального фиброза, клинической симптоматики и нормализовались лабораторные показатели крови. За 5-летний период наблюдения отмечена полная ремиссия заболевания. Динамическое ультразвуковое исследование, МСКТ органов брюшной полости, забрюшинного пространства не обнаруживало рецидива.

1. Ormond JK. Bilateral ureteral obstruction due
to envelopment and compression by an infl ammatory
retroperitoneal process. Th e Journal of Urology. 1948;
59(6):1072-9. DOI: 10.1016/s0022-5347(17)69482-5
2. Khalil S, Selvarajah N, Solanki S, Neiman-Hart H,
Dregansky G. Unique Presentation of Idiopathic
Retroperitoneal Fibrosis in a Primary Care Setting.
Cureus. 2021;13(10):e18429. DOI: 10.7759/cureus.18429
3. Majdoub AE, Khallouk A, Farih MH. La fi brose
rétropéritonéale: à propos de 12 cas [Retroperitoneal fi -
brosis: about 12 cases]. Th e Pan African Medical Journal.
2017;(28):194. DOI: 10.11604/pamj.2017.28.194.10092
4. Нечипоренко АН. Идиопатический ретроперитонеальный фиброз (болезнь Ормонда): клиника, диагностика и вариант хирургического лечения.
Проблемы здоровья и экологии. 2020; 3(65):12–18.
[Nechiporenko AN. Idiopathic retroperitoneal fi brosis
(Ormond’s disease): clinical picture, diagnosis, and
option of surgical treatment. Russian journal of Health
and Ecology Problems. 2020; 3(65):12-18. (In Russian)]
DOI: 51523/2708-6011.2020-17-3-2
5. Prunoiu VM, Marincaş MA, Brătucu E, Ştefania N,
Răvaş MM. Idiopathic Retroperitoneal Fibrosis. Chirurgia
/ Uniunea Societă tilor de Stiinte Medicale din Româ ni
2021;116(1):117-123. DOI: 10.21614/chirurgia.116.1.117
6. Łoń I, Wieliczko M, Lewandowski J, Małyszko J.
Retroperitoneal Fibrosis Is Still an Underdiagnosed Entity with Poor Prognosis. Kidney and Blood Pressure Research.
2022;47(3):151-162. DOI:1159/000521423
7. Sheth R, Malik D. Bilateral Hydronephrosis From
Retroperitoneal Fibrosis. Cureus. 2020;12(12):e12147.
DOI: 10.7759/cureus.12147
8. Скрябина ЕН, Магдеева НА, Бадургов ИС.
Ретроперитонеальный фиброз (болезнь Ормонда).
Клиническое наблюдение. Архивъ внутренней медицины. 2019; 2 (46): 140-144. [Scriabina EN, Magdeeva NA,
Badurgov IS. Retroperitoneal fi brosis (Ormond’s disease).
Clinical case. Russian Journal Archive of Internal Medicine.
2019; 2 (46): 140-144. (In Russian)] DOI:20514/2226-
6704-2019-9-2-140-144
9. Земляной ВП, Сигуа БВ, Горбунов ГН,
Бурлаченко ЕП, Котков ПА. Ретроперитонеальный
фиброз или болезнь Ормонда-редкое клиническое наблюдение в практике хирурга. Вестник
Национального медико-хирургического Центра им.
Н.И Пирогова. 2017; 12 (1): 109-110. [Zemlyanoi VP,
Sigua BV, Gorbunov GN, Burlachenko EP, Kotkov PA.
Retroperitoneal fi brosis or Ormond’s disease – a uncommon clinical case in surgeon practice. Th e Russian journal
Bulletin of the N.I. Pirogov National Medical and Surgical
Center. 2017; 12 (1): 109-110. (In Russian)]

В 25 недель гестации пациентка перенесла НКИ SARS-CoV-2 COVID-19 в легкой форме. В 30+5 недель беременности обнаружено значительное повышение эхогенности стенок обеих артерий и вены пуповины на фоне выраженного отека Вартонова студня. Беременность завершилась в 34+2 недели рождением живого недоношенного мальчика с оценкой по Апгар 7-7 баллов, весом 2450 гр. При гистологическом исследовании в пуповине выявлены склероз стенок и эктазия просветов вены и артерий, отложения солей кальция вокруг адвентиции сосудов. Данная
особенность пуповины рассматривается в качестве признака постковидного некротического фунизита.

1. Kim CJ, Romero R, Chaemssithong P, Chaiyasit N,
Yoon BH, Kim YM. Acute chorioamnionitis and funisitis:
defi nition, pathologic features, and clinical signifi cance.
American Journal Obstetrics Gynecology. 2015; 213
(4 Suppl): 29-52. DOI: 10.1016/j.ajog.2015.08.040
2. Низяева НВ. Гистологические критерии воспалительных изменений плодных оболочек плаценты
и пуповины. Международный журнал прикладных
и фундаментальных исследований. 2018; (3): 180-188.
[Nizjaeva NV. Histological criteria for infl ammatory
changes in the fetal membranes of the placenta and
umbilical cord. International Journal of Applied and
Basic Medical Research. 2018; (3): 180-188. (In Russian)]
DOI: 10.17513/mjpfi .12172
3. Coleman C, Carola DL, Sloane AJ, Laff erty MA,
Roman A, Cruz Y, Solarin K, Aghai ZH. A comparison
of Triple I classifi cation with neonatal early-onset sepsis
calculator recommendations in neonates born to mothers with clinical chorioamnionitis. Journal of Perinatology.
2020;40(9):1308-1314. DOI: 10.1038/s41372-020-0727-9.
Epub 2020 Jul 16. PMID: 32678316
4. Ouseph MM, Krigman H, He M. Streptococcus
pneumoniae – an uncommon but noteworthy cause of
intrauterine fetal demise and acute necrotizing funisitis. Fetal and Pediatric Pathology. 2019; 38 (4): 352–358.
https://doi.org/10.1080/15513815.2019.1587121
5. Jung E, Romero R, Yeo L, Diaz-Primera R, MarinConcha J, Para R, Lopez AM, Pacora P, Gomez-Lopez N,
Yoon BH, Kim CJ, Berry SM, Hsu CD. Th e fetal infl ammatory response syndrome: the origins of a concept, pathophysiology, diagnosis, and obstetrical implications. Seminars in Fetal and Neonatal Medicine.
2020;25(4):101146. DOI: 10.1016/j.siny.2020.101146
6. Волков АЕ, Рымашевский АН, Борщенко ИН.
Пренатальные ассоциации c новой коронавирусной
инфекцией SARSCoV-2 (COVID-19). Обзор литературы. Пренатальная диагностика. 2022;20(1):6-18.
[Volkov AE, Rymashevsky AN, Borshenko IN. Prenatal
associations with the new coronavirus infection SARSCOV-2 (COVID-19). Literature review. Prenatal Diagnosis.
2022;21(1):6-18. (In Russian)] DOI 10.21516/2413-1458-
2022-21-1-6-18
7. Chen H, Guo J, Wang C, Luo F, Yu X, Zhang W,
Li J, Zhao D, Xu D, Gong Q, Liao J, Yang H, Hou W,
Zhang Y. Clinical characteristics and intrauterine vertical transmission potential of COVID-19 infection in
nine pregnant women: a retrospective review of medical records. Th e Lancet. 2020; 395 (10226): 809-815.
DOI: 10.1016/S0140-6736(20)30360-3
8. Shanes ED, Mithal LB, Otero S, Azad HA, Miller ES,
Goldstein JA. Placental Pathology in COVID-19.
American Journal of Clinical Pathology. 2020; 154 (1):
23-32.DOI: 10.1101/2020/05/08/20093239
9. Ackermann M, Verleden SE, Kuehnel M,
Haverich A, Welte T, Laenger F, Vanstapel A, Werlein C,
Stark H, Tzankov A, Li WW, Li VW, Mentzer SJ, Jonigk D.
Pulmonary Vascular Endothelialitis, Th rombosis, and
Angiogenesis in Covid-19. Th e New England Journal
of Medicine. 2020; 383 (2): 120-128. DOI: 10.1056/
NEJMoa2015432
10. Navarro C, Blanc WA. Subacute necrotizing
funisitis. A variant of cord infl ammation with a high rate
of perinatal infection. Th e Journal of Pediatrics. 1974;
85(5):689–697.DOI: 10.1016/S0022-3476 (74) 80521-4

Учитывая высокую частоту родоразрешения путем операции кесарево сечение во всем мире, проблема беременности в рубце на матке (стеночной беременности) приобретает высокую актуальность. Это обусловлено трудностями диагностики и тяжестью осложнений данной
патологии. В статье обобщены особенности клиники, даны современные подходы к лечению и другие аспекты тактики ведения женщин с такой
патологией.

1. Адамян ЛВ, Артымук НВ, Белокриницкая ТЕ.
Внематочная (эктопическая) беременность.
Клинические рекомендации (Протокол лечения).
Письмо Министерства здравоохранения РФ от 6 февраля 2017 г. N 15-4/10/2-729. Москва: 2019. 25c.
[Adamyan LV, Artymuk NV, Belokrinitskaya TE. Ectopic
(ectopic) pregnancy. Clinical guidelines (Treatment
protocol). Letter of the Ministry of Health of the Russian
Federation of February 6, 2017 N 15-4 / 10 / 2-729.
Moscow: 2019. 25p. (In Russian)]
2. Внематочная (эктопическая) беременность.
Клинические рекомендации. Министерство здравоохранения Российской Федерации. Разработчики:
Российское общество акушеров-гинекологов.
Ассоциация акушерских анестезиологов-реаниматологов. М.: 2021. 60c. Ectopic (ectopic) pregnancy. [Clinical
guidelines. Ministry of Health of the Russian Federation.
Developers: Russian Society of Obstetricians and
Gynecologists. Association of Obstetric Anesthesiologists
and Resuscitators. Moscow. 2021. 60p. (In Russian)]
3. Давыдов АИ, Стрижаков АН, Подтетенев АД,
Шахламова МН. Шеечная беременность: этиопатогенез, диагностика, методы органосберегающего лечения. Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2014;13(4):78-86. [Davydov AI, Strizhakov AN,
Podtetenev AD, Shakhlamova MN. Cervical pregnancy:
etiopathogenesis, diagnosis, methods of organ-saving
treatment. Questions of Gynecology, Obstetrics and
Perinatology. 2014; 13 (4): 78-86. (In Russian)]
4. Давыдов АИ, Рубина ЕВ, Шахламова МН.
Эндохирургическое лечение больных шеечной беременностью: методология и отдаленные результаты.
Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии.
2015;14(5):16-21. [Davydov AI, Rubina EV, Shakhlamova
MN. Endosurgical treatment of patients with cervical
pregnancy: methodology and long-term results. Questions
of Gynecology, Obstetrics and Perinatology. 2015; 14 (5):
16-21. (In Russian)]
5. Стрижаков АН, Давыдов АИ, Рубина ЕВ.
Беременность в рубце на матке после кесарева сечения. Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии, 2016;15(5):67–72. [Strizhakov AN, Davydov
AI, Rubina EV. Pregnancy in the uterine scar aft er
cesarean section. Questions of Gynecology, Obstetrics and
Perinatology, 2016;15(5):67-72. (In Russian)]
6. Филиппов ЕФ, Крутова ВА, Поморцев АВ.
Внематочная (эктопическая) стеночная беременность. Учебно-методическое пособие для ординаторов и практических врачей. Краснодар: 2018.
49 c. [Filippov EF, Krutova VA, Pomortsev AV. Ectopic
(ectopic) wall pregnancy. Study guide for residents and
practitioners. Krasnodar: 2018. 49p. (In Russian)]
7. Энциклопедия лекарств и товаров аптечного ассортимента. Метотрексат (Methotrexate): инструкция,
применение и формула. Ссылка активна на 15.12.2021
[Encyclopedia of Medicines and Pharmacy Assortment
Products. Methotrexate: instruction, application and
formula. Accessed 15 December, 2021. http://www.rlsnet.
ru/mnn_index_id_955.htm. (In Russian)]
8. Caesarean Scar. A Case Report. Journal of Minimally
Invasive Gynecology. 2015;22(6S):S218-9 DOI: 10.1016/j.
jmig.2015.08.776
9. Clinical practice guideline the diagnosis
and management of ectopic pregnancy Institute of
Obstetricians and Gynaecologists, Royal College of
Physicians of Ireland and Directorate of Clinical Strategy
and Programmes, Health Service Executive: November
2014, Guideline No: 33 Revision date: November 2017.
10. Morgan-Ortiz F, Retes-Angulo B, Retes-Lapizco
B. Ectopic Pregnancy Repeated in Caesarean Scar.
A Case Report. Journal of Minimally Invasive Gynecology.
2015;22(6S):S218-9. DOI: 10.1016/j.jmig.2015.08.776
11. Uludag SZ, Kutuk MS, Ak M, Ozgun MT,
Dolanbay M, Aygen EM, et al. Comparison of systemic
and local methotrexate treatments in cesarean scar pregnancies: time to change conventional treatment and
follow-up protocols. European Journal of Obstetrics and
Gynecology and Reproductive Biology. 2016;(21);206:131-
5. DOI: 10.1016/j.ejogrb. 2016.09.010
12. H u J, Tao X, Yin L, Shi Y. Successful conservative
treatment of cervical pregnancy with uterine artery
embolization followed by curettage: a report of 19 cases.
BJOG. 2016;123(Suppl 3):97-102. DOI: 10.1111/1471-
0528.14005