| АРХИВ202320222021202020192018201720162015201420132012201120102009 |
Сибирское Медицинское Обозрение. 2021. № 4 Открыть полный текст Количество просмотров : 7112Описание Авторы Аннотация Ключевые слова Список литературы Комментарии Статистика  Конев ВА, Лабутин ДВ, Божкова СА. Экспериментальное обоснование клинического применения стимуляторов остеогенеза в травматологии и ортопедии (обзор литературы). Сибирское медицинское обозрение. 2021;(4):5-17. DOI 10.20333/25000136-2021-4-5-17 Авторы: Конев Владимир Александрович ; НМИЦТО им. Р. Р. Вредена; Лабутин Дмитрий Владимирович ; НМИЦТО им. Р. Р. Вредена; Божкова Светлана Анатольевна ; Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии им. Р.Р. Вредена; Аннотация: Анализ научных публикаций, посвященных оценке эффективности и экспериментальному обоснованию применения клеточных технологий и факторов роста для стимуляции остеогенеза в клинической практике травматологов-ортопедов. Поиск в электронных базах данных PubMed, e-LIBRARY осуществлялся за период с 2010 по 2020 г. Фильтр – рандомизированные клинические исследования. Ключевыми словами были: «platelet growth factor OR vascular endothelial growth factor OR bone morphogenetic proteins OR autologous bone marrow stromal cells AND bone defect AND human». В части анализа экспериментальных исследований были отобраны работы в период с 2010 по 2020 г. по комбинации ключевых слов «mesenchymal stromal cells AND osteogenesis OR bone regeneration», «growth factors AND mesenchymal stromal cells AND osteogenesis OR bone regeneration». В дополнение к этому были процитированы основополагающие источники, описывающие свойства ММСК, а также проблемы их остеогенной дифференцировки. Несмотря на многочисленность экспериментальных работ по применению клеточных технологий для стимуляции остеогенеза, остается множество нерешенных вопросов относительно оптимальных способов получения этих клеток, их культивирования, совместного применения их с морфогенетическими белками и факторами роста. Большинство экспериментальных работ демонстрирует эффективность клеточных технологий в отношении регенерации костной ткани. Клиническое применение rhBMP-2, PDGF в комплексном лечении пациентов с костными дефектами продемонстрировало свою эффективность. При этом факторы роста могут эффективно использоваться в различных комбинациях с ММСК. Использование имплантатов обогащенных факторами роста в ряде случаев, могут быть альтернативой аутотрансплантатам. На сегодняшний день крайне мало работ с результатами рандомизированных контролируемых клинических исследований, посвященных стимуляции репарации костной ткани. Противоречивые результаты проанализированных публикаций, могут быть обусловлены малым количеством пациентов, включенных в исследование. С учетом активного развития репаративной медицины в целом, дальнейшее изучение возможностей по стимуляции остеогенеза с локальным применением клеточно-инженерных конструкции представляется перспективным направлением для травматологии и ортопедии. Ключевые слова: стимуляция остеогенеза, тромбоцитарный фактор роста, сосудистый эндотелиальный фактор роста, костные морфогенетические белки, аутологичныестромальные клетки костного мозга, костный дефект. Список литературы: 1. Brian C Werner, Xudong Li, Francis H, Shen. Stem cells in preclinical spine studies. Th e Spine Journal. 2014; 14(3):542–551. DOI: 10.1016/j.spinee.2013.08.031 2. Stark JR, Hsieh J, Waller D. Bone Graft Substitutes in Single- or Double-Level Anterior Cervical Discectomy and Fusion: A Systematic Review. Spine (Phila Pa 1976). 2019;44(10):618-628. DOI: 10.1097/ BRS.0000000000002925. PMID: 30395088 3. Ishikawa K, Miyamoto Y, Tsuchiya A, Hayashi K, Tsuru K, Ohe G. Physical and Histological Comparison of Hydroxyapatite, Carbonate Apatite, and β-Tricalcium Phosphate Bone Substitutes. Materials (Basel). 2018;11(10):1993. DOI: 10.3390/ma11101993. PMID: 30332751; PMCID: PMC6213161 4. Щаницын ИН, Иванов АН, Ульянов ВЮ, Норкин ИА. Современные концепции стимуляции регенерации костной ткани с использованием биологически активных скаффолдов. Цитология. 2019; 61(1):16–34. [Shanicyn IN, Ivanov AN, Ul’yanov VY. Th e modern concept of stimulation of bone regeneration with the use of biologically active scaff olds. Cytology. 2019; 61(1):16–34. (In Russian)] 5. Lee YC, Chan YH, Hsieh SC, Lew WZ, Feng SW. Comparing the Osteogenic Potentials and Bone Regeneration Capacities of Bone Marrow and Dental Pulp Mesenchymal Stem Cells in a Rabbit Calvarial Bone Defect Model. International Journal of Molecular Sciences. 2019;20(20):5015. DOI: 10.3390/ijms20205015 6. Janko M, Sahm J, Schaible A, Brune JC, Bellen M, Schroder K, Seebach C, Marzi I, Henrich D. Comparison of three diff erent types of scaff olds preseeded with human bone marrow mononuclear cells on the bone healing in a femoral critical size defect model of the athymic rat. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 2018;12(3):653–666. DOI: 10.1002/term.2484 7. Haneef K, Ali A, Khan I, Naeem N, Jamall S, Salim A. Role of IL-7 in Fusion of Rat Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells with Cardiomyocytes in vitro and Improvement of Cardiac Function in vivo. Cardiovascular Th erapeutics. 2018;36(6):12479. DOI: 10.1111/1755-5922.12479.22 8. Kolk A, Boskov M, Haidari S, Tischer T, van Griensven M, Bissinger O, Plank CJ. Comparative analysis of bone regeneration behavior using recombinant human BMP-2 versus plasmid DNA of BMP-2. Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 2019;107(1):163-173 DOI:10.1002/ jbm.a.36545 9. Ishida W, Ramhmdani S, Xia Y, Kosztowski TA, Xu R, Choi J, De la Garza Ramos R, Elder BD, Th eodore N, Gokaslan ZL, Sciubba DM, Witham TF, Bydon A, Wolinsky JP, Lo SL. Use of Recombinant Human Bone Morphogenetic Protein-2 at the C1-C2 Lateral Articulation without Posterior Structural Bone Graft in Posterior Atlantoaxial Fusion in Adult Patients. World Neurosurgery. 2019;123(1):69- 76. DOI: 10.1016/j.wneu.2018.11.037. Epub 2018 Nov 15. PMID: 30448576 10. Rolvien T, Barbeck M, Wenisch S, Amling M, Krause M. Cellular Mechanisms Responsible for Success and Failure of Bone Substitute Materials. International Journal of Molecular Sciences. 2018;19(10):2893. DOI: 10.3390/ ijms19102893. PMID: 30249051; PMCID: PMC6213546 11. Li G, Li P, Chen Q, Thu H., Hussain Z. Current updates on bone graft ing biomaterials and recombinant human growth factors implanted biotherapy for spinal fusion: A review of human clinical studies. Current Drug Delivery. 2019;16(2):94- 110. DOI:10.2174/1567201815666181024142354 12. Morris MT, Tarpada SP, Cho W. Bone graft materials for posterolateral fusion made simple: a systematic review. European Spine Society. 2018;27(8):1856-1867. DOI: 10.1007/s00586-018- 5511-5516 13. Berebichez-Fridman R, Gómez-García R, Granados-Montiel J, Berebichez-Fastlicht E, Olivos-Meza A, Granados J, et al. The Holy Grail of Orthopedic Surgery: Mesenchymal Stem Cells—Th eir Current Uses and Potential Applications. Stem Cells International. 2017;(1):1–14. DOI: 10.1155/2017/2638305 14. Орлов АА, Сабурина ИН, Сысоев СД, Григорьян АС. Влияние трансплантации аутогенных мезенхимальных стволовых клеток из жировой ткани на течение остеогенетического процесса (экспериментальное исследование). Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 2014;58(1):3–7. [Orlov AA, Saburina IN, Sysoev SD, Grigor’yan AS. Infl uence of autogenous mesenchymal stem cell transplantation from adipose tissue on the course of the osteogenetic process (experimental study). Pathologi cal Physiology and Experimental therapy. 2014;58(1):3–7. (In Russian)] 15. Fabre H, Ducret M, Degoul O, Rodriguez J, Perrier-Groult E, Aubert-Foucher E. Characterization of D ifferent Sources of Human MSCs Expanded in Serum-Free Conditions with Quantifi cation of Chondrogenic Induction in 3D. Stem Cells International. 2019;(2019):1–19. DOI: 10.1155/2019/2186728 16. Dominici M, Le Blanc K, Mueller I, Slaper-Cortenbach I, Marini FC, Krause DS. Minimal criteria for defi ning multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy. 2006;8(4): 315–317. DOI: 10.1080/ 14653240600855905 17. Leach JK, Whitehead J. Materials-Directed Diff erentiation of Mesenchymal Stem Cells for Tissue Engineering and Regeneration. ACS Biomaterials Science and Engineering. 2018;4(4):1115–1127. DOI: 10.1021/acsbiomaterials.6b00741 18. Orciani M, Fini M, Di Primio R, Mattioli-Belmonte M. Biofabrication and Bone Tissue Regeneration: Cell Source, Approaches, and Challenges. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 2017;(5): 17. DOI: 10.3389/fb ioe.2017.00017 19. Iaquinta MR, Mazzoni E, Bononi I, Rotondo JC, Mazziotta C, Montesi M. Adult Stem Cells for Bone Regeneration and Repair. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 2019;(7): 268. DOI: 10.3389/fcell.2019.00268 20. Шерегий АА, Полянский ПА, Харитонова ЗБ. Применение аутологического костного мозга в лечении переломов замедленной консолидации. Медицина транспорта Украины. 2012;(3):038-041. [Sheregij AA, Polyanskij PA,Haritonova ZB. Medicine of transport of Ukraine. 2012;(3):038-041. (In Russian)] 21. Aghajanian P, Mohan S. Th e art of building bone: emerging role of chondrocyte-to-osteoblast transdiff erentiation in endochondral ossifi cation. Bone Research. 2018;6(1): 19. DOI: 10.1038/s41413-018-0021-z 22. Janicki P, Kasten P, Kleinschmidt K, Luginbuehl R, Richter W. Chondrogenic pre-induction of human mesenchymal stem cells on β-TCP: Enhanced bone quality by endochondral heterotopic bone formation. Acta Biomaterialia. 2010;6(8):3292–3301. DOI: 10.1016/j.actbio.2010.01.037 23. Farrell E, Both SK, Odörfer KI, Koevoet W, Kops N, O’Brien FJ, Baatenburg de Jong R J, Verhaar JA, Cuijpers V, Jansen J, Erben R G van Osch G JVM. Invivo generation of bone via endochondral ossifi cation by in-vitro chondrogenic priming of adult human and rat mesenchymal stem cells. BMC Musculoskeletal Disorders. 2011;12(1): 31. DOI: 10.1186/1471-2474-12-31 24. Osinga R, Maggio N, Todorov A, Allafi N, Barbero A, Laurent F, Johannes D, Schaefer, M, Scherberich A. Generation of a Bone Organ by Human Adipose Derived Stromal Cells Th rough Endochondral Ossifi cation. Stem Cells Translational Medicine. 2016;5(8): 1090–1097. DOI: 10.5966/sctm.2015-0256 25. Tasso R, Augello A, Carida’ M, Postiglione F, Tibiletti M, Bernasconi B, Astigiano S, Fais F, Truini M, Cancedda R, Pennesi G. Development of sarcomas in mice implanted with mesenchymal stem cells seeded onto bioscaff olds. Carcinogenesis. 2009; 30(1):150–157. DOI: 10.1093/carcin/bgn23 26. Предеин ЮА, Рерих ВВ. Костные и клеточные импланты для замещения дефектов кости. Современные проблемы науки и образования. 2016; (6). [Predein YA, Rerih VV. Bone and cellular implants for the replacement of bone defects. Modern Problems of Science and Education. 2016;(6). (In Russian)] 27. Marcacci M, Kon E, Moukhachev V, Lavroukov A, Kutepov S, Quarto R, Mastrogiacomo M, Cancedda R. Stem cells associated with macroporous bioceramics for long bone repair: 6- to 7-year outcome of a pilot clinical study. Tissue Engineering. 2007;13(5):947-955. DOI: 10.1089/ten.2006.0271 28. Quarto R, Mastrogiacomo M, Cancedda R, Kutepov S, Mukhachev V, Lavroukov A, Kon E, Marcacci M. Repair of large bone defects with the use of autologous bone marrow stromal cells. New England Journal of Medicine. 2001;344(5):385-386. DOI: 10.1056/NEJM2001020134405 29. Šponer P, Filip S, Kučera T, Brtková J, Urban K, Palička V, Kočí Z, Syka M, Bezrouk A, Syková E. Utilizing Autologous Multipotent Mesenchymal Stromal Cells and β-Tricalcium Phosphate Scaff old in Human Bone Defects: A Prospective, Controlled Feasibility Trial. Biomedical Research International. 2016;(2016):2076061. DOI: 10. 1155/2016/2076061 30. Šponer P, Kučera T, Brtková J, Urban K, Kočí Z, Měřička P, Bezrouk A, Konrádová Š, Filipová A, Filip S. Comparative Study on the Application of Mesenchymal Stromal Cells Combined with Tricalcium Phosphate Scaff old into Femoral Bone Defects. Cell Transplant. 2018;27(10):1459-1468. DOI: 10.1177/0963689718794918 31. Wong KL, Lee KB, Tai BC, Law P, Lee EH, Hui JH. Injectable cultured bone marrow-derived mesenchymal stem cells in varus knees with cartilage defects undergoing high tibial osteotomy: a prospective, randomized controlled clinical trial with 2 years’ follow-up. Arthroscopy. 2013;29(12):2020-2028. DOI: 10.1016/j.arthro.2013.09.074. PMID: 24286801 32. Koh YG, Kwon OR, Kim YS, Choi YJ, Tak DH. Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cells With Microfracture Versus Microfracture Alone: 2-Year Follow-up of a Prospective Randomized Trial. Arthroscopy. 2016; 32(1):97-109. DOI: 10.1016/j.arthro.2015.09.010 33. Kiernan CH, Wolvius EB, Brama PA, Farrell E. The immune response to allogeneic diff erentiated mesenchymal stem cells in the context of bone tissue engineering. Tissue Engineering Part A. 2018; 24(1): 75–83. DOI: 10.1089/ten.teb.2017.0175 34. Mohamed SA, Howard L, McInerney V, Hayat A, Krawczyk J, Naughton S, Finnerty A, Holohan M, Duff y A, Moloney T, Kavanagh E, Burke P, Liew A, Tubassam M, Walsh SR, O’Brien T Autologous bone marrow mesenchymal stromal cell therapy for “no-option” critical limb ischemia is limited by karyotype abnormalities. Cytotherapy. 2020;22(6):313-321. DOI: 10.1016/j.jcyt.2020.02.007. 35. Gothard D, Smith E, Kanczler J, Rashidi H, Qutachi O, Henstock J, Rotherham M, Haj A, Shakesheff K, Oreffo R. Tissue engineered bone using select growth factors: a comprehensive review of animal studies and clinical translation studies in man. European Cells and Materials. 2014; (28): 166–207, DOI: 10.22203/ecm.v028a13 36. Ong KL, Villarraga ML, Lau E, Carreon LY, Kurtz SM, Glassman SD. Off -Label Use of Bone Morphogenetic Proteins in the United States Using Administrative Data. Spine. 2010;35(19): 1794–1800. DOI: 10.1097/ BRS.0b013e3181ecf6e4 37. James AW, LaChaud G, Shen J, Asatrian G, Nguyen V, Zhang X, Ting K, Soo Ch. A Review of the Clinical Side Eff ects of Bone Morphogenetic Protein-2. Tissue Engineering Part B: Reviews. 2016;22(4): 284–297. DOI: 10.1089/ten.teb.2015.0357 38. The Major Extremity Trauma Research Consortium (METRC) A Randomized Controlled Trial Comparing rhBMP-2/Absorbable Collagen Sponge Versus Autograft for the Treatment of Tibia Fractures With Critical Size Defects. Journal of Orthopaedic Trauma. 2019; 33(8): 384-391. DOI: 10.1097/BOT.0000000000001492 39. Yin F, Sun Z, Yin Q, Song S, Gu S, Rui Y. Treatment of thoracolumbar burst fractures with short-segment pedicle instrumentation and recombinant human bone morphogenetic protein 2 and allogeneic bone graft ing in injured vertebra. Chinese Journal of Reparative and Reconstructive Surgery. 2017;31(9):1080-1085. DOI: 10.7507/1002-1892.201703065 40. Mesfi n A, Buchowski JM, Zebala LP, Bakhsh WR, Aronson AB, Fogelson JL, Hershman S, Kim HJ, Ahmad A, Bridwell KH. High-dose rhBMP-2 for adults: major and minor complications: a study of 502 spine cases. The Journal of Bone and Joint Surgery. 2013;95(17):1546-1553. DOI: 10.2106/JBJS.L.01730. PMID: 24005194 41. Fu R, Selph S, McDonagh M, Peterson K, Tiwari A, Chou R, Helfand M. Eff ectiveness and harms of recombinant human bone morphogenetic protein-2 in spine fusion: a systematic review and meta-analysis. American College of Physicians--American Society of Internal Medicine. 2013;158(12):890-902. DOI: 10.7326/0003-4819- 158-12-201306180-00006. PMID: 23778906 42. Knippenberg M, Helder MN, Zandieh Doulabi B, Wuisman P, Klein-Nulend J. Osteogenesis versus chondrogenesis by BMP-2 and BMP-7 in adipose stem cells. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2006;342(3): 902–908. DOI: 10.1016/j.bbrc.2006.02.052 43. Gohil SV, Kuo CL, Adams DJ, Maye P, Rowe DW, Nair L. Evaluation of the donor cell contribution in rhBMP-2 mediated bone formation with chitosan thermogels using fl uorescent protein reporter mice: donor cell contribution in bone for mation. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 2016;104(4): 928–941. DOI: 10.1002/ jbm.a.35634 44. Kim BS, Choi MK, Yoon JH, Lee J. Evaluation of bone regeneration with biphasic calcium phosphate substitute implanted with bone morphogenetic protein 2 and mesenchymal stem cells in a rabbit calvarial defect model. Oral Surgery, Oral Medicine , Oral Pathology and Oral Radiology. 2015;120(1): 2–9. DOI: 10.1016/j.oooo.2015.02.017 45. Decambron A, Devriendt N, Larochette N, Manassero M, Bourguignon M, El-Hafci H. Effect of the Bone Morphogenetic Protein-2 Doses on the Osteogenic Poten tial of Human Multipotent Stromal Cells- Containing Tissue Engineered Constructs. Tissue Engineering Part A. 2019;25(7–8): 642–651. DOI: 10.1089/ten.tea.2018.0146 46. Hu K, Olsen B. Osteoblast-derived VEGF regulates osteoblast differentiation and bone formation during bone repair. Journal of Clinical Investigation. 2016;126(2): 509–526. DOI: 10.1172/JCI82585 47. Fahimipour F, Rasoulianboroujeni M, Dashtimoghadam E, Khoshroo K, Tahriri M, Bastami F, Lobner D, Tayebi L. 3D printed TCP-based scaff old incorporating VEGF-loaded PLGA microspheres for craniofacial tissue engineering. Dental materials: offi cial publica tion of the Academy of Dental Materials. 2017;33(11):1205-1216. DOI: 10.1016/j.dental.2017.06.016 48. Vo TN, Kasper FK, Mikos AG. Strategies for controlled delivery of growth factors and cells for bone regeneration. Advanced Drug Delivery Reviews. 2012;64(12): 1292-309. DOI: 10.1016/j.addr.2012.01.016 49. Ogilvie CM, Lu C, Marc ucio R, Lee M, Thompson Z, Hu D, Helms JA, Miclau T. Vascular endothelial growth factor improves bone repair in a murine nonunion model. University of Iowa Department of Orthopaedics. 2012;(32):90-4. 50. Wang Z, Sun J, Li Y, Ch en C, Xu Y, Zang X, Li L, Meng K. Experimental study of the synergistic eff ect and network regulation mechanisms of an applied combination of BMP-2, VEGF, and TGF-β1 on osteogenic diff erentiation. Journal of Cellular Biochemistry. 2020;12 1(3): 2394-2405. DOI: 10.1002/jcb.29462 51. Sharma S, Sapkota D, Xue Y, Rajthala S, Yassin MA, Finne-Wistrand A, Mustafa K. Delivery of VEGFA in bone marrow stromal cells seeded in copolymer scaff old enhances angiogenesis, but is inadequate for osteogenesis as compared with the dual delivery of VEGFA an d BMP2 in a subcutaneous mouse model. Stem Cell Research and Th erapy. 2018;9(1): 23. DOI: 10.1186/s13287-018-0778-4 52. Xu L, Lv K, Zhang W, Zhang X, Jiang X, Zhang F. The healing of critical-size calvarial bone defects in rat with rhPDGF-BB, BMSCs, and β-TCP scaff olds. Journal of Materials Science: Materials in Medicine. 2012;23(4): 1073–1084. D OI: 10.1007/s10856-012-4558 53. Luvizuto E, Tangl S, Dobsak T, Reich K, Gruber R, Sonoda CK, Okamoto R. Effect of recombinant PDGF-BB on bone formation in the presence of β-tricalcium phosphate and bovine bone mineral matrix: a pilot study in rat calvarial defects. BMC Oral Health. 2016; 16(1): 52. DOI: 10.1186/s12903-016-0210-3 54. Daniels TR, Younger AS, Penner MJ, Wing KJ, Le IL, Russell IS, Lalonde KA, Evangelista PT, Quiton JD, Glazebrook M, DiGiovanni CW. Prospective Randomized Controlled Trial of Hin dfoot and Ankle Fusions Treated With rhPDGF-BB in Combination With a β-TCP-Collagen Matrix. Foot and Ankle International. 2015;36(7):739-748. DOI: 10.1177/1071100715576370 55. Di giovanni C W, Baumhauer J, Lin SS, Berberian WS, Flemister AS, Enna MJ, Evangelista P, Newman J. Prospective, randomized, multi-center feasibility trial of rhPDGF-BB versus autologous bone graft in a foot and ankle fusion model. Foot and Ankle International. 2011;32(4):344-354. DOI: 10.3 113/FAI.2011.0344 56. Алексеев АА, Бобровников АЭ. Местное применение стимуляторов регенерации для лечения ран. Комбустиология. 2010;(41):5-15. [Alekseev АА, Bobrovnikov AE. Local application of stimulators of regeneration for treatment of wounds. Combustiology. 2010;(4 1):5-15. (In Russian)] 57. Малыгина МА, Боровкова НВ, Сахарова ОМ, Пономарев ИН. Применение богатой тромбоцитами плазмы при заболеваниях и повреждениях опорно-двигательного аппарата. Трансплантология. 2017; 9(4):325-334. [Malygina MA, Borovkova NV, Saharova OM, Ponomarev IN. The use of platelet-rich p lasma in diseases and injuries of the musculoskeletal system. Transplantation. 2017;9(4):325-334 .(In Russian)] 58. Родин ИА, Киселёв ИГ, Вишнивецкая ЛП, Родин МИ. Стимуляция остеорегенерации с помощью PRP-терапии. Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2018;(3):186-190. [Rodin IA, Kiselyov IG, Vishniveckaya LP, Rodin MI. Stimulation of osteoregenerat ive with the help of PRP therapy. Proceedings of the Orenburg state agrarian University. 2018;(3):186-190. (In Russian)] 59. Ваза АЮ, Боровкова НВ, Макаров МС, Файн АМ, Пономарев ИН Стимуляция остеогенеза инъекционной формой трансплантата из коллагена 1 типа и богатой тромбоцитами плазмы в эксперимент. Гены и Клетки. 2017;(3):53-54. [Vaza A.Y, Borovkova NV, Makarov MS, Fajn AM, Ponomarev IN. Stimulation of osteogenesis by injecting a type 1 collagen graft and platelet-rich plasma into cells. Genes and Cells. 2017;(3):53-54. (In Russian)] 60. Блаженко АН, Родин ИА, Понкина ОН, Муханов МЛ, Самойлова АС, Веревкин АА, Очкась ВВ, Алиев РР. Влияние A-PRP-терапии на репаративную регенерацию костной ткани при свежих переломах костей конечностей. Инновационная медицина Кубани 2019;(3):32- 38. [Blazhenko AN, Rodin IA, Ponkina ON, Muhanov ML, Samojlova AS, Verevkin AA, Ochkas’ VV, Aliev RR. The effect of A-PRP therapy on the reparative regeneration of bone tissue in fresh limb bone fractures. Innovative Medicine of Kuban. 2019;(3):32-38.(In Russian)] DOI: 10.35401/2500-0268-2019-15-3-32-38 61. Силантьева ТА, Краснов ВВ. Влияние локального комплексного введения аутологичной плазмы крови, аскорбиновой кислоты и глюкозы на заживление переломов таза в эксперименте. Вестник травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова. 2014;(1): 45-51 [Silant’eva TA, Krasnov VV. Th e eff ect of local complex administration of autologous plasma, ascorbic acid and glucose on the healing of pelvic fractures in the experiment. Bulletin of Traumatology and Orthopedics named aft er N. N. Priorov. 2014;(1): 45-51. (In Russia n)] 62. Macule-Beneyto F, Segur-Vilalta J, Vilchez-Cavazos F, Esteban-Navarro P, Vidal-Sicart S, Acosta-Olivo C. Bone defects in revision knee arthroplasty: fi lling with bone allograft plus platelet-derived growth factors. Cirugía y Cirujanos. 2014;82(4):395-401. 63. Cervellin M, de Girolamo L, Bait C, Denti M, Volpi P. Autologous platelet-rich plasma gel to reduce donor-site morbidity aft er patellar tendon graft harvesting for anterior cruciate ligament reconstruction: a randomized, controlled clinical study. Knee Surgery, Sports Traumatology, Arthroscopy. 2012;20(1):114-120. DOI: 10.1007/s00167- 011-1570-5 64. Franchini M, Cruciani M, Mengoli C, Masiello F, Marano G, D’Aloja E, Dell’Aringa C, Pati I, Veropalumbo E, Pupella S, Vaglio S, Liumbruno GM. Th e use of platelet-rich plasma in oral surgery: a systematic review and meta-analysis. Blood Transfusion = Trasfusione del sangue. 2019;17(5):357-367. DOI: 10.2450/2019.0177-19 65. Reible B, Schmidmaier G, Moghaddam A, Westhauser F. Insulin-Like Gro wth Factor-1 as a Possible Alternative to Bone Morphogenetic Protein-7 to Induce Osteogenic Differentiation of Human Mesenchymal Stem Cells in Vitro. International Journal of Molecular Sciences. 2018;19(6): 1674. DOI: 10.3390/ijms19061674 66. Ochiai H, Okada S, Saito A, Hoshi K, Yamashita H, Takato T, Azuma T. Inhibition of insulin-like growth factor-1 (IGF-1) expression by prolonged transforming growth factor-β1 (TGF-β1) administration suppresses osteoblast diff erentiation. The Journal of Biological Chemistry. 2012; 287(27): 22654–22661. DOI: 10.1074/jbc.m111.279091 67. Marzona L, Pavolini B. 2009. Play and players in bone fracture healing match. Clinical cases in mineral and bone metabolism. The official journal of the Italian Society of Osteoporosis, Mineral Metabolism, and Skeletal Diseases. 2009; 6(2): 159–162. 68. Oryan A, Alidadi S, Moshiri A, Maff ulli N. Bone regenerative medicine: classic options, novel strategie s, and future directions. Journal of Orthopaedic Surgery and Research. 2014; 9(1): 18. DOI: 10.1186/1749-799X-9-18 69. Myers TJ, Yan Y, Granero-Molto F, Weis JA, Longobardi L, Li T, Li Y, Contaldo C, Ozkan H, Spagnoli A. Systemically delivered insulin-like growth factor-I enhances mesenchymal stem cell-depende nt fracture healing. Growth Factors. 2012;30(4): 230–241. DOI: 10.3109/ 08977194.2012.683188 70. Bourgue W, Gross M, Hall B. Expression of four growth factors during fracture repair. Th e International Journal of Developmental Biology. 1993;37(4): 573-579. 71. Казакова ВС, Новиков ОО, Жилякова ЕТ. Перспективы использования факторов роста в во сстановлении костной ткани. Обзор литературы. Научные результаты биомедицинских исследований. 2015;1(3):151-158. [Kazakova VS, Novikov ОО, Zhilyakova EТ, et al. Рrospects for the use of growth factors in bone tissue regeneration. Literature review. Re search Result. Medicine and Pharmacy Series. 2015;1(3):151-158. (In Russian)] DOI: 10.18413/2313-8955-2015-1-3-151-158 72. Zhang H, Ahmad M, Gronowicz G. Effects of transforming growth factor-β1 (TGF-β1) on in vitro minera lization of human osteoblasts on implant materials. Biomaterials. 2003; 24(12): 2013–2020. DOI: 10.1016/ s0142-9612(02)00616-6 73. Kaji H, Naito J, Sowa H, Sugimoto T, Chihara K. Smad3 diff erently aff ects osteoblast diff erentiation depending upon its diff erentiation stage. Hormon- und Stoff wechselforschung. 2006: 38(11):740–745. DOI: 10.1055/s-2006- 955085 74. Ochiai H, Yamamoto Y, Yokoyama A, Yamashita H, Matsuzaka K, Abe S, Azuma T. Dual nature of TGF-β1 in osteoblastic diff erentiation of human periodontal ligament cells. The Hard Tissue Biology Network Association. 2010; 19(3): 187–191. DOI: 10.2485/jhtb.19.187 Комментарии Просмотров: 4253 Описание Авторы Аннотация Ключевые слова Список литературы Комментарии Статистика Алексеева АЮ, Зиганшин АМ. Историческое становление методов расчета предполагаемой массы плода. Сибирское медицинское обозрение. 2021;(4):18-25. DOI 10.20333/25000136-2021-4-18-25 Авторы: Алексеева Анастасия Юрьевна ; Читинская государственная медицинская академия; Зиганшин Айдар Миндиярович ; Башкирский Государственный медицинский университет; Аннотация: Точный расчет предполагаемой массы плода необходим для выбора верной тактики ведения родов. Существующие методы не универсальны и требуют комплексного применения. В данной статье представлен обзор литературы, посвящённый историческим аспектам становления имеющихся клинического и инструментального подходов к расчету предполагаемой массы плода, включающий базы Pubmed и Google Scholar за 1955-2021 годы. Приведены существующие методы расчета предполагаемой массы плода на различных сроках гестации, а так же методы, позволяющие прогнозировать массу плода до ее наступления. Представлены данные об их информативности в третьем триместре беременности и изменения их точности в зависимости от ИМТ беременной. Затронута тема использования магнитно-резонансной томографии для проведения фетометрии и сравнение данного подхода с более распространённым методом ультразвукового сканирования. Ключевые слова: предполагаемая масса плода, сонография, фетометрия, антропометрия, магнитно-резонансная томография, метод расчета предполагаемой массы плода Список литературы: 1. Мочалова МН, Пономарева ЮН, Мудров ВА, Казанцева ЕВ, Ляпунов АК, Мудров АА. Сравнение эффективности методов определения предполагаемой массы плода. Journal of Siberian Medical Sciences. 2015;(3):68. [Mochalova MN, Ponomareva YuN, Mudrov VA, Kazantseva YeV, Lyapunov AK, Mudrov AA.Comparison of the effectiveness of methods for determining the Fetal weight. Journal of Siberian Medical Sciences. 2015;(3):68. (In Russian)] 2. Plonka M, Bociaga M, Radon-Pokracka M, Nowak M, Huras H. Comparison of eleven commonly used formulae for sonographic estimation of fetal weight in prediction of actual birth weight. Ginekologia Polska. 2020;91(1):17-23. DOI: 10.5603/GP.2020.0005 3. Esinler D, Bircan O, Esin S, Sahin EG, Kandemir O, Yalvac S. Finding the best formula to predict the fetal weight: comparison of 18 formulas. Gynecologic and Obstetric Investigation. 2015;80(2):78-84. DOI: 10.1159/000365814 4. Mazzone E, Dall’Asta A, Kiener AjO, Carpano MG, Suprani A, Ghi T, Frusca T. Prediction of fetal macrosomia using two-dimensional and three-dimensional ultrasound. European Journal of Obstetrics, Gynecology And Reproductive Biology. 2019;243:26-31. DOI: 10.1016/j.ejogrb.2019.10.003 5. Мочалова МН, Пономарева ЮН, Мудров АА, Мудров ВА. Возможности диагностики макросомии плода на современном этапе. Журнал акушерства и женских болезней. 2016;65(5):75-8. [Mochalova MN, Ponomareva YuN, Mudrov AA, Mudrov VA. Possibilities of diagnosis fetal macrosomia at present stage. Zhurnal Akusherstva i Zhenskikh Bolezney. 2016;65(5):75-8. (In Russian)]. DOI: https://doi.org/10.17816/JOWD65575-81 6. Малышкина АИ, Парейшвили ВВ, Филиппов ОС, Панова ИА, Песикин ОН, Смирнова ЕВ, Баев ОР, Шмаков РГ, Пучко ТК, Быченко ВГ, Кулабухова ЕА. Оказание медицинской помощи при анатомически и клинически узком тазе. Проблемы репродукции. 2018;24(S6):418-440. [Malyshkina AI, Pareyshvili VV, Filippov OS, Panova IA, Pesikin ON, Smirnova EV, Bayev OR, Shmakov RG, Puchko TK, Bychenko VG, Kulabukhova EA. Providing medical care for anatomically and clinically narrow pelvis. Russian Journal of Human Reproduction. 2018; 24 (S6): 418-440. (In Russian)] 7. Ciobanu A, Khan N, Syngelaki A, Akolekar R, Nicolaides KH. Routine ultrasound at 32 vs 36 weeks’ gestation: prediction of small-for-gestational-age neonates. Ultrasound in Obstetrics and Gynecology. 2019;53(6):761-768. DOI: 10.1002/uog.20258 8. Khan N, Ciobanu A, Karampitsakos T, Akolekar R, Nicolaides KH. Prediction of large-for-gestational-age neonate by routine third-trimester ultrasound. Ultrasound in Obstetrics and Gynecology. 2019;54(3):326-333. DOI: 10.1002/uog.20377 9. Ciobanu A, Anthoulakis C, Syngelaki A, Akolekar R, Nicolaides KH. Prediction of small-for-gestational-age neonates at 35-37 weeks’ gestation: contribution of maternal factors and growth velocity between 32 and 36 weeks. Ultrasound in Obstetrics and Gynecology. 2019;53(5):630-637. DOI: 10.1002/uog.20267 10. Письмо Министерства здравоохранения РФ от 18 мая 2017 г. № 15-4/10/2-3299 О клинических рекомендациях (протокол) Тазовое предлежание плода (ведение беременности и родов). Ссылка активна на 14.06.2021. [Writing of Minzdravsotsrazvitiya RF dd. 18 May 2017. № 15-4/10/2-3299 Аbout clinical recommendations (protocol) «Breech presentation (management of pregnancy and birth)». Accessed June 14, 2021. (in Russian)] http://rpc.karelia.ru/docs/FilePath_423.pdf 11. Радзинский ВЕ, Фукс АМ, редакторы. Акушерство: учебник. М. : ГЭОТАР-Медиа; 2016. 1040 с. [Radzinskiy VE, Fuks AM, editors. Obstetrics: textbook. Moscow: GEOTAR-Media; 2016. 1040 р. (In Russian)] 12. Мочалова МН, Пономарёва ЮН, Мудров ВА. Плод как пациент. М.: Русайнс; 2021. 168 с. [Mochalova MN, Ponomarova YuN, Mudrov VA. Th e fetus as a patient. Moscow: Rusayns, 2021. 168 p. (In Russian)] 13. Чернуха ЕА. Родовой блок: руководство для врачей. М.: Триада-Х, 2005. 712 с. [Chernukha EA. Delivery ward: guide for doctors. Moscow: Triada-X; 2005. 712 p. (In Russian)] 14. Баева ИЮ, Каган ИИ, Константинова ОД. Возможности дородовой диагностики крупного плода (обзор литературы). Вестник новых медицинских технологий. 2011;18(2):226-229 [Bayeva IYu, Kagan II, Konstantinova OD. Th e possibilities of prenatal diagnostics of a largefoetus (literature review). Journal of New Medical Technology. 2011;18(2):226-229. (In Russian)] 15. Johnson RW, Toshach CE. Estimation of fetal weight using longitudinal mensuration. American Journal Of Obstetrics And Gynecology. 1955;68(3):891-6. DOI: 10.1016/s0002- 9378(16)38330-2 16. Айламазян ЭК. Акушерство : учебник для медицинских вузов. 7 е издание. СПб. : СпецЛит, 2010. 543 с. [EK Aylamazyan. Obstetrics: textbook for medical universities. 7th edition. Saint Petersburg: SpetsLit, 2010. 543 p. (In Russian)] 17. Мудров ВА. Возможности геометрического моделирования в снижении погрешности расчета массы плода. Журнал акушерства и женских болезней. 2020;69(4);13-22. [Mudrov VA. Possibilities of geometric modeling in reducing the error of estimated fetal weight calculation. Zhurnal Akusherstva i Zhenskikh Bolezney. 2020;69(4);13-22. (In Russian)]. DOI: 17816/JOWD69413-22 18. Лукашевич ГА, Шилко АН. Определение масс плода с целью прогнозирования родов. Здравоохранение Белоруссии. 1981;(4):63-69. [Lukashevich GA, Shilko AN. Determination of fetal weights in order to predict birth. Zdravookhraneniye Belorussii. 1981;(4):63-69 (In Russian)] 19. Чернуха ЕА, Волобуев АИ, Пучко ТК. Анатомически и клинически узкий таз. М. : Триада-Х; 2005. 256 с. [Chernukha YeA. Volobuyev AI, Puchko TK. Anatomically and clinically narrow pelvis Moscow : Triada-KH, 2005. 256 p. (In Russian)] 20. Патент СССР на изобретение № 4739924/ 25.09.1989. Бюл. № 18. Лукашевич ГА, Шилко АН. Способ определения массы плода. Ссылка активна на 14.06.2021 [Patent USSR № 4739924/ September 25, 1989 № 4739924/ 25.09.1989. Byul. №18. Lukashevich GA, Shilko AN. Method of determining fetal weight. Accessed June 14, 2021. (In Russian)]. https://yandex.ru/patents/doc/SU1732937A1_19920515 21. Патент РФ на изобретение № 2361515/16.07.2007. Бюл. № 20. Лазарева НВ, Минаев ЮЛ. Способ определения массы плода. Ссылка активна на 14.06.2021 [Patent RU № 4739924/ July 17, 2007. Bull. №20. (Lazareva N.V., Minayev YU.L. Method of determining fetal weight. Accessed June 14, 2021. (In Russian)].https://yandex.ru/patents/doc/ RU2361515C2_20090720 22. Патент РФ на изобретение № 2558464 / 10.08.15. Бюл. № 22. Мочалова МН, Пономарева ЮН, Мудров ВА, Ахметова ЕС, Казанцева ЕВ. Способ определения массы плода. Ссылка активна на 14.06.2021. [Patent RU № 2558464/ August 10, 2015. Bull. № 22. Mochalova MN, Ponomareva YuN, Mudrov VA, Akhmetova ES, Kazantseva EV. Method of determining fetal weight. Accessed June 14, 2021. (In Russian)]. http://www.fi ndpatent.ru/patent/255/2558464.html 23. Патент РФ на изобретение № 2742735 C1/ 10.02.2021. Бюл. № 4. Мудров ВА. Способ определения массы плода в третьем триместре беременности. Ссылка активна на 14.06.2021. [Patent RU № 2742735 C1/ February 10, 2021. Bull. № Mudrov VA. Method of determining fetal weight in the third trimester of pregnancy. Accessed June 14, 2021. (In Russian)]. https://yandex.ru/patents/doc/ RU2742735C1_20210210 24. Campbell SA. Short History of Sonography in Obstetrics and Gynaecology. Facts, Views and Vision in Obstetrics and Gynaecology. 2013;5(3):213–229. 25. Демидов ВН, Бычкова ПА, Логвиненко АВ. Возможности использования ультразвуковой фетометрии в определении массы плода в III триместре беременности. Вопросы охраны материнства и детства. 1987;(6):45-47. [Demidov VN, Bychkova PA, Logvinenko AV. Determination of gestational age by ultrasonographic measurement of fetal kidney length during third trimester of pregnancy. Voprosy Okhrany Materinstva i Detstva. 1987;(6):45-47. (In Russian)] 26. Мудров ВА. Модификация ультразвуковых методов определения массы плода. Журнал акушерства и женских болезней. 2016;65(2):31-37. [Mudrov VA. Modifi cation ultrasonic methods estimating expected fetal weight. Zhurnal Akusherstva i Zhenskikh Bolezney. 2016;65(2):31-37. (In Russian)] DOI: 17816/JOWD6531-37 27. Деркач ЕА, Гусева ОИ. Сравнительная оценка информативности уравнений Hadlock и компьютерной программы В.Н. Демидова в определении срока гестации и массы плода в III триместре беременности. Пренатальная диагностика. 2017;16(2): 145-150. [Derkach YeA, Guseva OI. Comparative assessment of informational content of the equations of F.P. Hadlock and the computer program of V.N. Demidov in determination of term of gestation and fetal weight in the III trimester of gestation. Prenatal’naya Diagnostika. 2017;16(2):145-150. (In Russian)] DOI: 10.21516/2413-1458-2017-16-2-145-150 28. Мерц Э. Ультразвуковая диагностика в акушерстве и гинекологии. Том 1. Акушерство. Гуса АИ, редактор. М. :МЕДпресс-информ; 2011. 720 с. [Merts E. Ultrasound diagnostics in obstetrics and gynecology. Vol. Оbstetrics. AI Gusa, editor. Moscow: MEDpress-inform, 2011. 720 p. (In Russian)] 29. Патент РФ на изобретение 2018612231/12.03.2018. Бюл. № Ляпунов АК, Мудров ВА. Трехмерная моделируемая система определения массы плода. Ссылка активна на 14.06.2021. [Patent RU № 2018612231/ Mart 12, 2018 Bull. № 5. Lyapunov AK, Mudrov VA. 3D simulated fetal weight determination system. Accessed June 14, 2021. (In Russ.)] https://www.elibrary.ru/item.asp?id=39294698 30. BakerPN, Johnson IR, Gowland PA, Hykin J, Harvey PR, Freeman A, Adams V, Worthington BS, Mansfi eld Fetal weight estimation by echo-planar magnetic resonance imaging. Lancet. 1994;(343):644–5. DOI: 10.1016/ s0140-6736(94)92638-7 31. Malin GL, Bugg GJ, Takwoingi Y, Thornton JG, Jones NW. Antenatal magnetic resonance imaging versus ultrasound for predicting neonatal macrosomia: a systematic review and meta-analysis. BJOG: An International Journal Of Obstetrics And Gynaecology. 2016;123(1):77-88. DOI: 10.1111/1471-0528.13517 32. Kadji C, Cannie MM, De Angelis R, Camus M, Klass M, Fellas S, Cecotti V, Dütemeyer V, Jani JC. Prenatal prediction of postnatal large-for-dates neonates using a simplifi ed MRI method: comparison with conventional 2D ultrasound estimates. Ultrasound In Obstetrics And Gynecology. 2018;52(2):250-257. DOI: 10.1002/uog.17523 33. Carlin A, Kadji C, De Angelis R, Cannie MM, Jani JC. Prenatal prediction of small-for-gestational age neonates using MR imaging: comparison with conventional 2D ultrasound. Th e Journal of Maternal-Fetal And Neonatal Medicine. 2019;32(10):1673-1681. DOI: 10.1080/14767058.2017.1414797 34. Kadji C, Cannie MM, Resta S, Guez D, Abi-Khalil F, De Angelis R, Jani JC. Magnetic resonance imaging for prenatal estimation of birthweight in pregnancy: review of available data, techniques, and future perspectives. American Journal of Obstetrics And Gynecology. 2019;220(5):428-439. DOI: 10.1016/j.ajog.2018.12.031 35. Malin G, Bugg G, Takwoingi Y, Th ornton J, Jones N. Antenatal magnetic resonance imaging versus ultrasound for predicting neonatal macrosomia: a systematic review and meta-analysis. BJOG: An International Journal of Obstetrics And Gynaecology. 2015;123(1):77–88. DOI:10.1111/1471- 0528.13517 36. Uotila J, Dastidar P, Heinonen T, Ryymin P, Punnonen R, Laasonen E. Magnetic resonance imaging compared to ultrasonography in fetal weight and volume estimation in diabetic and normal pregnancy. Acta Obstetricia Et Gynecologica Scandinavica. 2000;(79):255–9. 37. Rahel A. Kubik-Huch, Simon Wildermuth, Luca Cettuzzi, Annett Rake, Burkhardt Seifert, Rabih Chaoui, Borut Marincek. Fetus and uteroplacental unit: fast MR imaging with three-dimensional reconstruction and volumetry-feasibility study. Radiology. 2001;(219):567–73. DOI: 1148/radiology.219.2.r01ma24567 38. Zaretsky MV, Reichel TF, McIntire DD, Twickler DM. Comparison of magnetic reso- nance imaging to ultrasound in the estimation of birth weight at term. American Journal Of Obstetrics And Gynecology. 2003;(189):1017–20. DOI: 10.1067/s0002-9378(03)00895-0. 39. Kacem Y, Cannie MM, Kadji C, Dobrescu O, Zito LLo, Ziane S, Strizek B, Evrard A-S, Gubana F, Gucciardo L, Staelens R, Jani JC. Fetal weight estimation: comparison of two- dimensional US and MR imaging assessments. Radiology. 2013;(267):902–10. DOI: 10.1148/radiol.12121374 40. Патент РФ на изобретение № 2428118/ 18.01.10. Бюл. № 10. Коган ИИ, Баева ИЮ. Способ прогнозирования рождения крупного плода. Ссылка активна на 14.06.2021. [Patent RU № No 2428118 / January 18, 2010. № 10. Kogan II, Baeva IYu. Method for predicting the fetal macrosomia. Accessed June 14, 2021. (In Russian)] 41. Чабанова НБ, Василькова ТН, Шевлюкова ТП, Хасанова ВВ. Проблемы диагностики избыточной массы тела и ожирения во время беременности. Здоровье и образование в XXI веке. 2016;18(2):176-180. [Chabanova NB, Vasil’kova TN, Shevlyukova TP, Khasanova VV. Problems of diagnosing overweight and obesity during pregnancy. Zdorov’ye i Obrazovaniye v XXI veke. 2016;18(2):176-180. (In Russian)] 42. Shepetovskaya N, Kalenteva S, Shepetovskaya M. Modern view on ultrasound diagnostics in obstetrics. Sciences of Europe. 2021;63(2):13-20. 43. Zaliunas B, Bartkeviciene D, Drąsutiene G, Utkus A, Kurmanavicius J. Fetal biometry: Relevance in obstetrical practice. Medicina (Kaunas). 2017;53(6):357-364. DOI: 10.1016/j.medici.2018.01.004 44. Wright D, Wright A, Smith E, Nicolaides KH. Impact of biometric measurement error on identifi cation of smalland large-for-gestational-age fetuses. Ultrasound In Obstetrics And Gynecology. 2020;55(2):170-176. DOI: 10.1002/ uog.21909 45. Chew LC, Verma RP. Fetal Growth Restriction. 2021 May 5. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2021. Комментарии Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 10 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 48 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_num_rows() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 28 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_fetch_assoc() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 34 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Просмотров: 4250 Описание Авторы Аннотация Ключевые слова Список литературы Комментарии Статистика Ляпина ИН, Завырылина ПН, Начева ЛВ.Микробиота кишечника – новый фактор риска сердечно-сосудистых заболеваний. Сибирское медицинское обозрение. 2021;(4):26-33. DOI 10.20333/25000136-2021-4-26-33 Авторы: Ляпина Ирина Николаевна ; Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний; Завырылина Полина Николаевна ; Кемеровского государственного медицинского университета; Начева Любовь Васильевна ; Кемеровского государственного медицинского университета; Аннотация: Сохраняет актуальность поиск новых механизмов развития и прогрессирования сердечно-сосудистых заболеваний (ССЗ). Значительный интерес в последнее время сосредоточен на изучении роли микробиота кишечника как фактора риска различных нарушений обмена веществ и развития ССЗ. При патологических состояниях микробиота кишечника способна выступать в качестве самостоятельного фактора, определяющего неблагоприятный прогноз заболевания, влиять на метаболизм лекарственных препаратов и способствовать выработке фармакологически активных вторичных метаболитов, способных вызывать побочные эффекты. В обзоре представлены данные о связи дисбиоза кишечника с артериальной гипертензией и хронической сердечной недостаточностью, а также обсуждены методы и новые разработки, направленные на коррекцию дисбиоза. Акцентируется внимание на важные аспекты персонифицированной терапии пациентов с учетом влияния микробиома человека на индивидуальную вариабельность реакции на лекарственные препараты. Учитывая высокие показатели заболеваемости и смертности от ССЗ, активное изучение микробиоты кишечника и поиск путей коррекции дисбиоза позволят иметь дополнительные инструменты для управления рисками развития кардиоваскулярной патологии. Ключевые слова: микробиота кишечника, сердечно-сосудистые заболевания, артериальная гипертензия, хроническая сердечная недостаточность Список литературы: 1. Timmis A, Townsend N, Gale CP, Torbica A, Lettino M, Petersen SE, Mossialos EA, Maggioni AP, Kazakiewicz D, May HT, De Smedt D, Flather M, Zuhlke L, Beltrame JF, Huculeci R, Tavazzi L, Hindricks G, Bax J, Casadei B, Achenbach S, Wright L, Vardas P. European Society of Cardiology: Cardiovascular Disease Statistics 2019. European Heart Journal. 2020; (41):12-85. DOI:10.1093/eurheartj/ 17.ehz859 2. Шляхто ЕВ, Баранова ЕИ. Основные направления снижения сердечно-сосудистой смертности: что можно изменить уже сегодня? Российский кардиологический журнал. 2020;25(7):3983. [Shlyakhto EV, Baranova EI. Central directions for reducing cardiovascular mortality: what can be changed today? Russian Journal of Cardiology. 2020;25(7):3983. (In Russian.)] DOI:10.15829/1560-4071-2020-3983. 3. Шальнова СА, Драпкина ОМ. Исследования ЭССЕ-РФ для развития профилактики в России. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2020;19(3):2602. [Shalnova SA, Drapkina OM. Contribution of the ESSE-RF study to preventive healthcare in Russia. Cardiovascular Th erapy and Prevention. 2020; 19(3):2602. (In Russian)] DOI:10.15829/1728-8800-2020- 2602 4. Шляхто ЕВ, Звартау НЭ, Виллевальде СВ, Яковлев АН, Соловьева АЕ, Федоренко АА, Карлина ВА, Авдонина НГ, Ендубаева ГВ, Зайцев ВВ, Неплюева ГА, Павлюк ЕИ, Дубинина МВ, Медведева ЕА, Ерастов АМ, Панарина СА, Соловьев АЕ. Значимость оценки распространенности и мониторинга исходов у пациентов с сердечной недостаточностью в России. Российский кардиологический журнал. 2020;25(12):4204. [Shlyakhto EV, Zvartau NE, Villevalde SV, Yakovlev AN, Soloveva AE, Fedorenko AA, Karlina VA, Avdonina NG, Endubaeva GV, Zaitsev VV, Neplyueva GA, Pavlyuk EI, Dubinina MV, Medvedeva EA, Erastov AM, Panarina SA, Solovev A E. Assessment of prevalence and monitoring of outcomes in patients with heart failure in Russia. Russian Journal of Cardiology. 2020;25(12):4204. (In Russian)] DOI: 10.15829/1560-4071-2020-4204 5. Каштанова ДА, Ткачева ОН. Феномен проницаемости кишечной стенки и его взаимосвязь с сердечно-сосудистыми заболеваниями. Современные представления о проблеме. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2020;19(3):2474. [Kashtanova DA, Tkacheva ON. The phenomenon of intestinal permeability and its association with cardiovascular disease. Current status. Cardiovascular Th erapy and Prevention. 2020;19(3):2474. (In Russian)] DOI:10.15829/1728-8800- 2020-2474 6. Черешнев ВА, Позняковский ВМ. Фактор питания и эволюционно-генетическое формирование кишечной микрофлоры: значение для сохранения иммунитета и здоровья. Индустрия питания. 2020;5(3):5–16. [Chereshnev VA, Poznyakovskiy VM. Nutrition Factor and Evolutionary Genetic Development of Intestinal Microfl ora: Importance for Maintaining Immunity and Health. Food Industry. 2020; 5 (3): 5–16. (In Russian)] DOI: 10.29141/2500-1922-2020-5-3-1 7. Tang WH, Kitai T, Hazen SL. Gut microbiota in cardiovascular health and disease. Circulation Research. 2017;31;120(7):1183-1196. DOI: 10.1161/ CIRCRESAHA.117.309715 8. Neish AS. Microbes in gastrointestinal health and disease. Gastroenterology. 2009; (136):65–80. DOI: 10.1053/j.gastro.2008.10.080 9. Zhu W, Gregory JC, Org E, Buff a JA, Gupta N, Wang Z, Li L, Fu X, Wu Y, Mehrabian M, Sartor RB, McIntyre TM, Silverstein RL, Tang WHW, DiDonato JA, Brown JM, Lusis AJ, Hazen SL. Gut microbial metabolite TMAO enhances platelet hyperreactivity and thrombosis risk. Cell. 2016;(165):111–124.DOI: 10.1016/j.cell.2016. 02.011 10. Tang WH, Wang Z, Levison BS, Koeth RA, Britt EB, Fu X, Wu Y, Hazen SL. Intestinal microbial metabolism of phosphatidylcholine and cardiovascular risk. Th e New England Journal of Medicine. 2013; (368):1575–1584. DOI: 10.1056/NEJMoa1109400 11. Tang WH, Li DY, Hazen SL. Dietary metabolism, the gut microbiome, and heart failure. Nature Reviews. 2019; 16(3): 137–154. DOI:10.1038/s41569-018-0108-7 12. Buffie CG, Pamer EG. Microbiota-mediated colonization resistance against intestinal pathogens. Nature Reviews Immunology. 2013; (13): 790–801. DOI:10.1038/ nri3535 13. Belkaid Y, Hand T W. Role of the microbiota in immunity and infl ammation. Cell. 2014; (157): 121–141. DOI:10.1016/j.cell.2014.03.011 14. Saitta KS, Zhang C, Lee KK, Fujimoto K, Redinbo MR, Boelsterli UA. Bacterial beta-glucuronidase inhibition protects mice against enteropathy induced by indomethacin, ketoprofen or diclofenac: mode of action and pharmacokinetics. Xenobiotica. 2014; (44): 28–35. DOI:10.3109/00498254.2013.811314 15. Wallace BD, Roberts AB, Pollet RM, Ingle JD, Biernat KA, Pellock SJ, Venkatesh MK, Guthrie L, O’Neal SK, Robinson SJ, Dollinger M, Figueroa E, McShane SR, Cohen RD, Jin J, Frye SV, Zamboni WC, Pepe-Ranney C, Mani S, Kelly L, Redinbo MR. Structure and Inhibition of Microbiome beta-Glucuronidases Essential to the Alleviation of Cancer Drug Toxicity. Chemical Biology. 2015; (22): 1238–1249. DOI:10.1016/j.chembiol.2015.08.005 16. Meijnikman AS, Gerdes VE, Nieuwdorp M, Herrema H. Evaluating Causality of Gut Microbiota in Obesity and Diabetes in Humans. Endocrine Reviews. 2018;39(2):133-153. DOI: 10.1210/er.2017-00192 17. Mendes-Soares H, Raveh-Sadka T, Azulay S, Edens K, Ben-Shlomo Y, Cohen Y, Ofek T, Bachrach D, Stevens J, Colibaseanu D, Segal L, Kashyap P, Nelson H. Assessment of a Personalized Approach to Predicting Postprandial Glycemic Responses to Food Among Individuals Without Diabetes. JAMA Network Open. 2019;2 (2):e188102. DOI: 10.1001/jamanetworkopen.2018.8102 18. Gavin PG, Hamilton-Williams EE. Th e gut microbiota in type 1 diabetes: friend or foe? Current Opinion in Endocrinology, Diabetes and Obesity. 2019;26(4):207-212. DOI: 10.1097/MED.0000000000000483 19. Toral M, Robles-Vera I, de la Visitación N, Romero M, Yang T, Sánchez M, Gómez-Guzmán M, Jiménez R, Raizada MK, Duarte J. Critical Role of the Interaction Gut Microbiota - Sympathetic Nervous System in the Regulation of Blood Pressure. Frontiers in Physiology. 2019;(10):231. DOI:10.3389/fphys.2019.00231 20. Zubcevic J, Richards EM, Yang T, Kim S, Sumners C, Pepine CJ, Raizada MK. Impaired autonomic nervous system-microbiome circuit in hypertension. Circulation Research. 2019; 125(1):104–116. DOI:10.1161/ CIRCRESAHA.119.313965 21. Wilck N, Matus MG, Kearney SM, Olesen SW, Forslund K, Bartolomaeus H, Haase S, Mähler A, Balogh A, Markó L, Vvedenskaya O, Kleiner FH, Tsvetkov D, Klug L, Costea PI, Sunagawa S, Maier L, Rakova N, Schatz V, Neubert P, Frätzer C, Krannich A, Gollasch M, Grohme DA, Côrte-Real BF, Gerlach RG, Basic M, Typas A, Wu C, Titze JM, Jantsch J, Boschmann M, Dechend R, Kleinewietfeld M, Kempa S, Bork P, Linker RA, Alm EJ, Müller DN. Salt-responsive gut commensal modulates TH17axis and disease. Nature. 2017; 551(7682):585–589. DOI:10.1038/ nature24628 22. Баранцевич НЕ, Конради АО, Баранцевич ЕП. Артериальная гипертензия: роль микробиоты кишечника. Артериальная гипертензия. 2019; 25 (5): 460- 466. [Barantsevich NE, Konradi AO, Barantsevich EP. Arterial hypertension: The role of gut microbiota. Arterial Hypertension. 2019; 25(5):460-466. (In Russian)]. DOI: 10.18705/1607-419X-2019-25-5-460-466 23. Yang T, Richards E M, Pepine C J, Raizada MK. The gut microbiota and the brain-gut-kidney axis in hypertension and chronic kidney disease. Nature Reviews Nephrology. 2018; 14(7):442–456. DOI:10.1038/s41581- 018-0018-2 24. Jose PA, Raj D. Gut microbiota in hypertension. Current Opinion in Nephrology and Hypertension. 2015; 24(5):403–409. DOI:10.1097/MNH.0000000000000149 25. Allin KH, Tremaroli V, Caesar R, Jensen BAH, Damgaard MTF, Bahl MI, Licht TR, Hansen TH, Nielsen T, Dantoft TM, Linneberg A, Jorgensen T, Vestergaard H, Kristiansen K, Franks PW; IMI-DIRECT consortium, Hansen T, Bäckhed F, Pedersen O. Aberrant intestinal microbiota in individuals with prediabetes. Diabetologia. 2018;61(4): 810-820. DOI: 10.1007/s00125-018-4550-1 26. Canfora EE, Meex RCR, Venema K, Blaak EE. Gut microbial metabolites in obesity, NAFLD and T2DM. Nature Reviews Endocrinology. 2019;15(5):261-273. DOI: 10.1038/s41574-019-0156-z 27. Sandek A, Swidsinski A, Schroedl W, Watson A, Valentova M, Herrmann R, Scherbakov N, Cramer L, Rauchhaus M, Grosse-Herrenthey A, Krueger M, von Haehling S, Doehner W, Anker SD, Bauditz J. Intestinal blood fl ow in patients with chronic heart failure: a link with bacterial growth, gastrointestinal symptoms, and cachexia. Journal of American College of Cardiology. 2014; (64), 1092–1102. DOI:10.1016/ j.jacc.2014.06.1179 28. Triposkiadis F, Karayannis G, Giamouzis G, Skoularigis J, Louridas G, Butler J. The sympathetic nervous system in heart failure physiology, pathophysiology, and clinical implications. Journal of American College of Cardiology. 2009; (54): 1747–1762. DOI:10.1016/j. Jacc.2009.05.015 29. Arutyunov GP, Kostyukevich OI, Serov RA, Rylova NV, Bylova NA. Collagen accumulation and dysfunctional mucosal barrier of the small intestine in patients with chronic heart failure. International Journal of Cardiology. 2008; (125): 240–245. DOI:10.1016/j. Ijcard.2007.11.103 30. Al-Sadi R, Guo S, Ye D, Ma TY. TNF-alpha modulation of intestinal epithelial tight junction barrier is regulated by ERK1/2 activation of Elk-1. The American Journal of Pathology. 2013; (183): 1871– 1884. DOI:10.1016/j.ajpath.2013.09.001 31. Frangogiannis NG. Th e infl ammatory response in myocardial injury, repair, and remodelling. Nature Reviews of Cardiology. 2014; (11): 255–265, DOI:10.1038/ nrcardio.2014.28 32. Hietbrink F, Besselink MG, Renooij W, de Smet MB, Draisma A, van der Hoeven H, Pickkers P. Systemic infl ammation increases intestinal permeability during experimental human endotoxemia. Shock. 2009;32(4):374-8. DOI: 10.1097/SHK.0b013e3181a2bcd6 33. Van Tassell BW, Buckley LF, Carbone S, Trankle CR, Canada JM, Dixon DL, Abouzaki N, Oddi-Erdle C, Biondi-Zoccai G, Arena R, Abbate A. Interleukin-1 blockade in heart failure with preserved ejection fraction: rationale and design of the Diastolic Heart Failure Anakinra Response Trial 2 (D-HART2). Clinical Cardiology. 2017; 40(9):626-632. DOI: 10.1002/clc.22719 34. Kamo T, Akazawa H, Suda W, Saga-Kamo A, Shimizu Y, Yagi H, Liu Q, Nomura S, Naito AT, Takeda N, Harada M, Toko H, Kumagai H, Ikeda Y, Takimoto E, Suzuki JI, Honda K, Morita H, Hattori M, Komuro I. Dysbiosis and compositional alterations with aging in the gut microbiota of patients with heart failure. Public Library of Science. 2017; (12): e0174099. DOI:10.1371/ journal.pone.0174099 35. Zhu W, Gregory JC, Org E, Buff a JA, Gupta N, Wang Z, Li L, Fu X, Wu Y, Mehrabian M, Sartor RB, McIntyre TM, Silverstein RL, Tang WHW, DiDonato JA, Brown JM, Lusis AJ, Hazen SL. Gut Microbial Metabolite TMAO Enhances Platelet Hyperreactivity and Th rombosis Risk. Cell. 2016; (165): 111–124, DOI:10.1016/j. Cell.2016.02.011 36. Wang Z, Roberts AB, Buff a JA, Levison BS, Zhu W, Org E, Gu X, Huang Y, Zamanian-Daryoush M, Culley MK, DiDonato AJ, Fu X, Hazen JE, Krajcik D, DiDonato JA, Lusis AJ, Hazen SL. Non-lethal Inhibition of Gut Microbial Trimethylamine Production for the Treatment of Atherosclerosis. Cell. 2015; (163): 1585– 1595. DOI:10.1016/j.cell.2015.11.055 37. Rothschild D, Weissbrod O, Barkan E, Kurilshikov A, Korem T, Zeevi D, Costea PI, Godneva A, Kalka IN, Bar N, Shilo S, Lador D, Vila AV, Zmora N, Pevsner-Fischer M, Israeli D, Kosower N, Malka G, Wolf BC, Avnit-Sagi T, Lotan-Pompan M, Weinberger A, Halpern Z, Carmi S, Fu J, Wijmenga C, Zhernakova A, Elinav E, Segal E. Environment dominates over host genetics in shaping human gut microbiota. Nature. 2018; (555): 210–215. DOI:10.1038/nature25973 38. Caparrós-Martín JA, Lareu RR, Ramsay JP, Peplies J, Reen FJ, Headlam HA, Ward NC, Croft KD, Newsholme P, Hughes JD, O’Gara F.Statin therapy causes gut dysbiosis in mice through a PXR-dependent mechanism. Microbiome. 2017; (5): 95. DOI:10.1186/s40168- 017-0312-4 39. Wu H, Esteve E, Tremaroli V, Khan MT, Caesar R, Manneras-Holm L, Stahlman M, Olsson LM, Serino M, Planas-Fèlix M, Xifra G, Mercader JM, Torrents D, Burcelin R, Ricart W, Perkins R, Fernàndez-Real JM, Backhed F. Metformin alters the gut microbiome of individuals with treatment-naive type 2 diabetes, contributing to the therapeutic eff ects of the drug. Nature Medicine. 2017; (23): 850–858. DOI:10.1038/nm.4345 40. Haiser HJ, Gootenberg DB, Chatman K, Sirasani G, Balskus EP, Turnbaugh PJ. Predicting and manipulating cardiac drug inactivation by the human gut bacterium Eggerthellalenta. Science. 2013; (341): 295–298. DOI:10.1126/science.1235872 41. Zhernakova A, Kurilshikov A, Bonder MJ, Tigchelaar EF, Schirmer M, Vatanen T, Mujagic Z, Vila AV, Falony G, Vieira-Silva S, Wang J, Imhann F, Brandsma E, Jankipersadsing SA, Joossens M, Cenit MC, Deelen P, Swertz MA; LifeLines cohort study, Weersma RK, Feskens EJ, Netea MG, Gevers D, Jonkers D, Franke L, Aulchenko YS, Huttenhower C, Raes J, Hofk er MH, Xavier RJ, Wijmenga C, Fu J. Population-based metagenomics analysis reveals markers for gut microbiome composition and diversity. Science. 2016; (352): 565–569. DOI:10.1126/ science.aad3369 42. Selwyn F P, Cui J Y, Klaassen C D. RNA-Seq Quantifi cation of Hepatic Drug Processing Genesin Germ-Free Mice. Drug Metabolism and Disposition. 2015; (43): 1572– 1580. DOI:10.1124/dmd.115.063545 43. Maier L, Pruteanu M, Kuhn M, Zeller G, Telzerow A, Anderson EE, Brochado AR, Fernandez KC, Dose H, Mori H, Patil KR, Bork P, Typas A. Extensive impact of non-antibiotic drugs on human gut bacteria. Nature. 2018; 555(7698):623-628. DOI: 10.1038/nature25979 44. Gentile CL, Weir TL. The gut microbiota at the intersection of diet and human health. Science. 2018;362(6416):776-780. DOI: 10.1126/science.aau5812 45. Martínez-González MA, Gea A, Ruiz-Canela M. Th e Mediterranean Diet and Cardiovascular Health. Circulation Research. 2019;124(5):779-798. DOI: 10.1161/ CIRCRESAHA.118.313348 46. Moszak M, Szulińska M, Bogdański P. You Are What You Eat-The Relationship between Diet, Microbiota, and Metabolic Disorders-A Review. Nutrients. 2020;12(4):1096. DOI: 10.3390/nu12041096 47. Brown JM, Hazen SL. Microbial modulation of cardiovascular disease. Nature Reviews Microbiology. 2018;(16):171–181. DOI: 10.1038/nrmicro.2017.149 48. Lam V, Su J, Koprowski S, Hsu A, Tweddell JS, Rafiee P, Gross GJ, Salzman NH, Baker JE. Intestinal microbiota determine severity of myocardial infarction in rats. Federation of American Society for Experimental Biology Journal. 2012;26(4):1727-35. DOI: 10.1096/fj .11- 197921 49. Gan XT, Ettinger G, Huang CX, Burton JP, Haist JV, Rajapurohitam V, Sidaway JE, Martin G, Gloor GB, Swann JR, Reid G, Karmazyn M. Probiotic administration attenuates myocardial hypertrophy and heart failure aft er myocardial infarction in the rat. Circulation: Heart Failure. 2014; (7):491-499. DOI:10.1161/CIRCHEARTFAILURE.113.000978 50. Tang TWH, Chen HC, Chen CY, Yen CYT, Lin CJ, Prajnamitra RP, Chen LL, Ruan SC, Lin JH, Lin PJ, Lu HH, Kuo CW, Chang CM, Hall AD, Vivas EI, Shui JW, Chen P, Hacker TA, Rey FE, Kamp TJ, Hsieh PCH. Loss of gut microbiota alters immune system composition and cripples postinfarction cardiac repair. Circulation. 2019;(139):647–659. DOI: 10.1161/CIRCULATIONAHA.118.035235 51. Santisteban MM, Ahmari N, Carvajal JM, Zingler MB, Qi Y, Kim S, Joseph J, Garcia-Pereira F, Johnson RD, Shenoy V, Raizada MK, Zubcevic J. Involvement of bone marrow cells and neuroinfl ammation in hypertension. Circulation Research. 2015;117(2):178– 191.DOI:10.1161/CIRCRESAHA.117.305853 52. von Haehling S, Schefold JC, Jankowska EA, Springer J, Vazir A, Kalra PR, Sandek A, Fauler G, Stojakovic T, Trauner M, Ponikowski P, Volk HD, Doehner W, Coats AJ, Poole-Wilson PA, Anker SD. Ursodeoxycholic acid in patients with chronic heart failure: a double-blind, randomized, placebo-controlled, crossover trial. Journal American College of Cardiology. 2012;(59):585–592. DOI:10.1016/j.jacc.2011.10.880 53. Lam V, Su J, Hsu A, Gross GJ, Salzman NH, Baker JE. Intestinal microbial metabolites are linked to severity of myocardial infarction in rats. Public Library of Science. 2016;(11):e0160840. DOI: 10.1371/journal. Pone.0160840 54. Costanza AC, Moscavitch SD, Faria Neto HC, Mesquita ET. Probiotic therapy with Saccharomyces boulardii for heart failure patients: a randomized, double-blind, placebo-controlled pilot trial. International Journal of Cardiology. 2015;(179):348–350. DOI: 10.1016/ j.ijcard.2014.11.034 Комментарии Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 10 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 48 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_num_rows() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 28 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_fetch_assoc() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 34 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Просмотров: 4249 Описание Авторы Аннотация Ключевые слова Список литературы Комментарии Статистика Остроумова ОД, Клепикова МВ,, Литвинова CН. Лекарственно-индуцированный острый интерcтициальный нефрит.
Сибирское медицинское обозрение. 2021;(4):34-50. DOI 10.20333/25000136-2021-4-34-50 Авторы: Остроумова Ольга Дмитриевна д.м.н., профессор; Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования; ostroumova.olga@mail.ru Клепикова Мария Викторовна ; Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования; Литвинова Светлана Николаевна ; Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования; Аннотация: Среди причин развития острого интерстициального нефрита, на долю индуцированного лекарственными средствами приходится от 50 до 78 % всех случаев. В обзоре обобщены литературные данные о лекарственных средствах, вызывающих острый интерстициальный нефрит. Поиск в базах данных eLIBRARY.RU, PubMed®, MEDLINE, EMBASE, руководствах и методических рекомендациях, материалах баз данных нежелательных реакций, инструкциях по медицинскому применению ЛС проводился до октября 2020 г. Рассматриваются наиболее вероятные механизмы его развития. Наибольшее внимание уделено нестероидным противовоспалительным препаратам, антикоагулянтам, антибиотикам, противоопухолевым препаратам (ингибиторам иммунных контрольных точек), которые широко используются в клинической практике. Симптомы лекарственно-индуцированного острого интерстициального нефрита изменчивы и часто неспецифичны; таким образом, для точного диагноза требуется биопсия почки. Основным направлением лечения лекарственно-индуцированного острого интерстициального нефрита является отмена нефротоксичного лекарственного средства, если же это условие невыполнимо и/или продолжительность острого интерстициального нефрита менее 3 недель, при биопсии имеет место минимальный интерстициальный фиброз и нет серьезных противопоказаний, то следует рассмотреть возможность применения глюкокортикостероидов. Для ранней диагностики и профилактики лекарственно-индуцированного острого интерстициального нефрита необходимо повышать информированность врачей разных специальностей о существовании подобных осложнений фармакотерапии, что является залогом благоприятного прогноза. Ключевые слова: острое повреждение почек, лекарственно-индуцированное острое повреждение почек, острый интерстициальный нефрит, лекарственно-индуцированный острый интерстициальный нефрит, лекарственные средства, нежелательные лекарственные реакции. Список литературы: 1. Клинические рекомендации по диагностике и лечению острого тубулоинтерстициального нефрита (проект) http://nonr.ru/wp-content/uploads/ 2013/11[Clinical guidelines for the diagnosis and treatment of acute tubulointerstitial nephritis (project) (In Russian)]. http://nonr.ru/wp-content/uploads/2013/11 2. Rossert J. Drug-induced acute interstitial nephriti. Kidney International. 2001; (60):804–817 3. Tubulointerstitial Nephritis. Navin Jaipaul, MD, MHS, Loma Linda University School of Medicine. https://www.msdmanuals.com/professional/genitourinary disorders/tubulointerstitial-diseases/tubulointerstitial-nephritis 4. Tisdale JE, Miller DA. Drug Induced Diseases: Prevention, Detection, and Management. 3rd Ed. Bethesda, Md.: American Society of Health-System Pharmacists; 2018. 5. Постников СС, Грацианская АН, Костылева МН. Лекарственные поражения почек. Педиатрия 2016; 95(4):67-173. [Postnikov SS, Gratsianskaya AN, Kostyleva MN. Drug lesions of the kidneys. Pediatrics 2016; 95(4):67-173. (In Russian)] 6. Choudhury D, Ahmed Z. Drug-associated renal dysfunction and injury. Nature clinical practice. Nephrology. 2006;2(2):80-91. DOI: 10.1038/ncpneph0076 7. Pannu N, Nadim MK. An overview of druginduced acute kidney injury. http://www.area-c54. It/public/ overview of drug-induced acute kidney injury. 8. Кетова ГГ, Ильичева ОЕ, Коротков ЮВ. Гентамицин: интерстициальный нефрит. Безопасность лекарств. 1998; (3): 15–16. [Ketova GG, Il’icheva OE, Korotkov YuV. Gentamitsin: interstitial jade. Drug Safety. 1998; 3: 15–16. ( In Russian)] 9. Myers RP, McLaughlin K, Hollomby DJ. Acute interstitial nephritis due to omeprazole. American Journal of Gastroenterology. 2001;96(12):3428-3431. DOI: 10.1111/j.1572-0241.2001.05345.x 10. Nast CC. Medication-Induced Interstitial Nephritis in the 21st Century. Advances in chronic kidney disease. 2017;24(2):72-79. DOI: 10.1053/j.ackd.2016.11.016 11. Смирнов АВ, Добронравов ВА, Румянцев АШ, Каюков ИГ. Острое повреждение почек. М.: ООО «Издательство «Медицинское информационное агентство», 2015. 488 с. [Smirnov AV, Dobronravov VA, Rumyantsev ASh, Kayukov IG. Acute kidney injury. M.: LLC Publishing House Medical Information Agency, 2015. 488 p. (In Russian)] 12. Muriithi AK, Leung N, Valeri AM. Biopsy-proven acute interstitial nephritis, 1993-2011: a case series. American Journal of Kidney Diseases: the Offi cial Journal of the National Kidney Foundation. 2014;64(4):558-566. DOI:10.1053/j.ajkd.2014.04.027 13. Paller MS. Drug-induced nephropathies. Th e Medical clinics of North America. 1990;(74):909-17. DOI: 10.1016/s0025-7125(16)30525-9 14. Bendz H: Kidney function in lithium-treated patients. Acta Psychiatrica Scandinavica. 1983;(68):303- 324. DOI: 10.1111/j.1600-0447.1983.tb07012.x 15. Praga M, Sevillano A, Aunon P, Gonzalez E. Changes in the aetiology, clinical presentation and management of acute interstitial nephritis, an increasingly common cause of acute kidney injury. Nephrology, dialysis, transplantation : offi cial publication of the European Dialysis and Transplant Association – European Renal Association. 2015; (30):1472-1479. DOI: 10.1093/ndt/gfu326 16. Bailey JR, Trott SA, Philbrick JT. Ciprofl oxacin-induced acute interstitial nephritis. American Journal of Nephrology. 1992; (12):271-273. DOI: 10.1159/000168458 17. Rosenfeld J, Gura V, Boner G. Interstitial nephritis with acute renal failure aft er erythromycin. British Medical Journal (Clinical research ed.). 1983; (286):938-939. DOI: 10.1136/bmj.286.6369.938 18. Jensen HV, Holm J, Hemmingsen L, Th iesen S, Andersen J. Urinary excretion of albumin and retinol-binding protein in lithium-treated patients. Acta psychiatrica Scandinavica. 1988;78(3):375-378. DOI: 10.1111/j.1600- 0447.1988.tb06351.x. (2007) 19. Ravnskov U. Glomerular, tubular and interstitial nephritis associated with non-steroidal antiinfl ammatory drugs. Evidence of a common mechanism. British Journal of Clinical pharmacology 1999; 47(2): 203–210. DOI:10.1046/j.1365-2125.1999.00869.x 20. Hoff man EW. Phenytoin-induced interstitial nephritis. Southern Medical Journal. 1981;(74):1160-1161. DOI: 10.1097/00007611-198109000-00041 21. Baldwin D.S.Levine B.B.McCluskey R.T.Gallo G.R. Renal failure and interstitial nephritis due to penicillin and methicillin. Th e New England Journal of Medicine. 1968; (279): 1245-1252. DOI: 10.1056/NEJM196812052792302 22. Ruff enach SJ, Siskind MS, Lien YH. Acute interstitial nephritis due to omeprazole. Th e American Journal of Medicine. 1992; (93):472-3. DOI: 10.1016/0002- 9343(92)90181-a 23. Muthukumar T, Jayakumar M, Fernando EM, Muthusethupathi MA. Acute renal failure due to rifampicin: a study of 25 patients. American Journal of Kidney Diseases: the offi cial journal of the National Kidney Foundation. 2002;40(4):690-696. DOI: 10.1053/ajkd.2002.35675 24. Magil AB, Ballon HS, Cameron EC, Rae A. Acute interstitial nephritis associated with thiazide diuretics. Clinical and pathologic observations in three cases. Th e American Journal of Medicine. 1980;69(6):939-43. DOI: 10.1016/s0002-9343(80)80023-4 25. Lin CY, Chiang H. Sodium-valproate-induced interstitial nephritis. Nephron. 1988;48(1):43-6. DOI: 10.1159/000184867 26. Simpson IJ, Marshall MR, Pilmore H, Manley P, Williams L, Th ein H, Voss D. Proton pump inhibitors and acute interstitial nephritis: report and analysis of 15 cases. Nephrology (Carlton). 2006;11(5):381-5. DOI: 10.1111/j.1440-1797.2006.00651.x 27. Asai A, Katsuno T, Yamaguchi M, Iwagaitsu S, Nobata H, Kinashi H, Kitamura H, Banno S, Ito Y. Rabeprazole-induced acute interstitial nephritis. Nephrology (Carlton). 2005; (10): 7-9. DOI: 10.1007/s13730- 019-00437-w 28. Carboplatin-related acute interstitial nephritis in a patient with pancreatic neuroendocrine tumor. CEN case reports. 2020; 9(2):114-121. DOI: 10.1007/s13730- 019-00437-w 29. Asai A, Katsuno T, Yamaguchi M. Carboplatin-related acute interstitial nephritis in a patient with pancreatic neuroendocrine tumor. CEN case reports. 2020;9(2):114- 121. DOI:10.1007/s13730-019-00437-w 30. Perazella MA. Diagnosing drug-induced AIN in the hospitalized patient: A challenge for the clinician. Clinical Nephrology 2014; 81(6):381-388. DOI 10.5414/ CN108301 31. Острый тубулоинтерстициальный нефрит. Клинические рекомендации. 2016 [Acute tubulointerstitial nephritis. Clinical guidelines. 2016 (In Russian)] https://medi.ru/klinicheskie-rekomendatsii/ostryj-tubulointerstitsialnyj-nefrit_14148/#cslm_anch 32. Woodruff AE, Meaney CJ, Hansen EA, Prescott GM. Azithromycin-Induced, Biopsy-Proven Acute Interstitial Nephritis in an Adult Successfully Treated with Low-Dose Corticosteroids. Pharmacotherapy. 2015;35(11):e169-e174. DOI:10.1002/phar.1660 33. Tintillier M, Kirch L, Almpanis C, Cosyns JP, Pochet JM, Cuvelier C. Telithromycin-induced acute interstitial nephritis: a fi rst case report. American Journal of Kidney Diseases : the offi cial journal of the National Kidney Foundation. 2004;44(2):e25-e27. DOI:10.1053/j. Ajkd.2004.04.045 34. Moledina DG, Perazella MA. Drug-Induced Acute Interstitial Nephritis. Clinical journal of the American Society of Nephrology: CJASN. 2017;12(12):2046-2049. DOI:10.2215/CJN.07630717 35. Chowdry AM, Azad H, Mir I, Najar MS., Ashraf BM, Muzafar WM, Ahmed WI. Drug-induced acute interstitial nephritis: Prospective randomized trial comparing oral steroids and high-dose intravenous pulse steroid therapy in guiding the treatment of this condition. Saudi journal of kidney diseases and transplantation: an offi cial publication of the Saudi Center for Organ Transplantation, Saudi Arabia. 2018;29(3):598-607. DOI:10.4103/1319-2442.235171 36. Farid S, Mahmood M, Abu Saleh OM, Hamadah A, Nasr SH, Garrigos ZE, Leung N, Sohail MR. Clinical Manifestations and Outcomes of FluoroquinoloneRelated Acute Interstitial Nephritis. Mayo Clinic proceedings. 2018;93(1):25-31. DOI:10.1016/j.mayocp.2017.08. 024 Saira Farid, Maryam Mahmood, Omar M. Abu Saleh, 37. Goli R, Mukku KK, Raju SB, Uppin MS. Acute Ciprofl oxacin-Induced Crystal Nephropathy with Granulomatous Interstitial Nephritis. Indian Journal of Nephrology. 2017;27(3):231-233. DOI:10.4103/0971-4065.200522 38. Mac K, Chavada R, Paull S, Howlin K, Wong J. Cefepime induced acute interstitial nephritis--a case report. BMC nephrology. 2015;(16):15. DOI:10.1186/ s12882-015-0004-x 39. Сигитова ОН, Архипов ЕВ. Тубулоинтерстициальный нефрит. Лекции. Ж.: Вестник современной клинической медицины. 2010;3(3): 45-49. [Sigitova ON, Arkhipov EV. Tubulointerstitial nephritis. Lectures. J.: Bulletin of modern clinical medicine. 2010; 3(3): 45-49 (In Russian)] 40. Viero RM, Cavallo T. Granulomatous interstitial nephritis. Human Pathology.1995; (26): 1347-1353. DOI: 10.1016/0046-8177(95)90300-3 41. Naidu GD, Ram R, Swarnalatha G, Uppin M, Prayaga AK, Dakshinamurty KV. Granulomatous interstitial nephritis: our experience of 14 patients. Indian Journal of Nephrology. 2013; (23): 415–418. DOI: 10.4103/0971- 4065.120336 42. Javaud N, Belenfant X, Stirnemann J, Laederich J, Ziol M, Callard P, Ronco P, Rondeau E, Fain O. Renal granulomatoses: a retrospective study of 40 cases and review of the literature. Medicine (Baltimore) 2007; 86(3): 170–180. DOI: 10.1097/MD.0b013e3180699f55 43. Namagondlu G, Low SE, Seneviratne R, Banerjee A. Acute renal failure from nitrofurantoin-induced acute granulomatous interstitial nephritis. QJM : monthly journal of the Association of Physicians. 2010; (103): 49-52. DOI: 10.1093/qjmed/hcp146 44. Enriquez R, Cabezuelo JB, Gonzalez C. Granulomatous interstitial nephritis associated with hydrochlorothiazide/amiloride. American Journal of Nephrology. 1995; (15): 270-273. DOI: 10.1159/000168845 45. Ogura M, Kagami S, Nakao M, Kono M, Kanetsuna Y, Hosoya T. Fungal granulomatous interstitial nephritis presenting as acute kidney injury diagnosed by renal histology including PCR assay. Clinical Kidney Journal. 2012; (5): 459–462. DOI: 10.1093/ckj/sfs103 46. David VG, Korula A, Choudhrie L, Michael JS, Jacob S, Jacob CK, John GT. Cryptococcal granulomatous interstitial nephritis and dissemination in a patient with untreated lupus nephritis. Nephrology, Dialysis,Transplantation : offi cial publication of the European Dialysis and Transplant Association – European Renal Association. 2009; (24): 3243–3245. DOI: 10.1093/ndt/gfp293 47. Hotta K, Fukasawa Y, Sasaki H, Seki T, Togashi M, Harada H. Granulomatous tubulointerstitial nephritis in a renal allograft : three cases report and review of literature. Clinical Transplantation. 2012; 26 (24): 70-75. DOI: 10.1111/j.1399-0012.2012.01643.x 48. Ozdemir BH, Sar A, Uyar P, Surena D, Demirhana B, Haberal M . Posttransplant tubulointerstitial nephritis: clinicopathological correlation. Transplantation Proceedings. 2006; 38(2): 466-469. DOI:10.1016/j. transproceed.2005.12.050 49. Meehan SM, Josephson MA, Haas M. Granulomatous tubulointerstitial nephritis in the renal allograft . American Journal of Kidney Diseases: the offi cial journal of the National Kidney Foundation 2000; (36): E27. DOI: 10.1053/ajkd.2000.17735 50. Aminiafshar S, Alimagham M, Abbasi F, FardKhani SK. Acute interstital nephritis associated with rifampicin therapy. Saudi journal of kidney diseases and transplantation : an offi cial publication of the Saudi Center for Organ Transplantation, Saudi Arabia. 2009;20(6):1079- 1080. 51. Alivanis P, Aperis G, Lambrianou F, Zervos A, Paliouras C, Karvouniaris N, Arvanitis A. Reversal of refractory sulfasalazine-related renal failure aft er treatment with corticosteroids. Clinical Th erapeutics. 2010;32(11):1906- 1910. DOI:10.1016/j.clinthera.2010.10.002 52. Salazar MN, Matthews M, Posadas A, Ehsan M, Graeber C. Biopsy proven interstitial nephritis following treatment with vancomycin: a case report. Connecticut Medicine. 2010;74(3):139-141. 53. Stone WJ, Waldron JA, Dixon JH Jr, Primm RK, Horn RG. Acute diff use interstitial nephritis related to chemotherapy of tuberculosis. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 1976;10(1):164-172. DOI:10.1128/ aac.10.1.164 54. Chau K, Yong J, Ismail K, Griffi th N, Liu M, Makris A. Levetiracetam-induced severe acute granulomatous interstitial nephritis. Clinical Kidney journal 2012; 5(3): 234–236. DOI: 10.1093/ckj/sfs023 55. Eguchi E, Shimazu K, Nishiguchi K, Yorifuji S, Tanaka A, Kuwahara T. Granulomatous interstitial nephritis associated with atypical drug-induced hypersensitivity syndrome induced by carbamazepine. Clinical and Experimental Nephrology 2012; 16(1), 168-172. DOI: 10.1007/s10157-011-0531-0 56. Mignon F, Méry JP, Mougenot B, Ronco P, Roland J, Morel-Maroger L. Granulomatous interstitial nephritis. Advances in Nephrology from the Necker Hospital. 1984;(13):219–245. 57. Viero RM, Cavallo T. Granulomatous interstitial nephritis. Human Pathology. 1995;(26):1347–1353. DOI: 10.1016/0046-8177(95)90300-3 58. Bijol V, Mendez GP, Nosé V, Rennke HG. Granulomatous interstitial nephritis: a clinicopathologic study of 46 cases from a single institution. International Journal of Surgical Pathology. 2006;(14):57–63. DOI: 10.1177/106689690601400110 59. Joss N, Morris S, Young B, Geddes C. Granulomatous interstitial nephritis. Clinical journal of the American Society of Nephrology : CJASN. 2007;(2):222–230. DOI: 10.2215/CJN.01790506 60. Leowattana W. Antiviral Drugs and Acute Kidney Injury (AKI). Infectious Disorders Drug Targets. 2019;19(4):375-382. DOI:10.2174/1871526519666190617 154137 61. Rho M, Perazella MA. Nephrotoxicity associated with antiretroviral therapy in HIV-infected patients. Current Drug Safety. 2007;2(2):147-154. DOI:10.2174/157488607780598269 62. Leven C, Hudier L, Picard S, Longuet H, Lorcy N, Cam G, Z Boukerroucha, Dolley-Hitze T, Le Cacheux Ph, Halimi J-M, Le Gall E C, Hanrotel-Saliou C, Arreule A, Massad M, Duveau A, Couvrat-Desvergnes G, Renaudineau E. Médicaments à l’origine d’insuffi sances rénales aiguës allergiques en France en 2013 [Prospective study of drug-induced interstitial nephritis in eleven French nephrology units]. La Presse Médicale. 2014;43(11):e369-e376. DOI:10.1016/j.lpm.2014.03.032 63. Ejaz AA, Fitzpatrick PM, Haley WE, Wasiluk A, Durkin AJ, Zachariah PK. Amlodipine besylate induced acute interstitial nephritis. Nephron. 2000;85(4):354-356. DOI:10.1159/000045688 64. Abadín JA, Durán JA, Pérez de León JA. Probable diltiazem-induced acute interstitial nephritis. Th e Annals of Pharmacotherapy. 1998;32(6):656-658. DOI:10.1345/ aph.17254 65. Smith WR, Neill J, Cushman WC, Butkus DE. Captopril-associated acute interstitial nephritis. American Journal of Nephrology. 1989;9(3):230-235. DOI:10.1159/000167970 66. Cumming A. Acute renal failure and interstitial nephritis aft er clofi brate treatment. British Medical Journal 1980; 281(6254):1529–1530. DOI: 10.1136/bmj.281.6254.1529-a 67. Heap GA, So K, Weedon M, Edney N, Bewshea C, Singh A, Annese V, Beckly J, Buurman D, Chaudhary R, Cole AT, Cooper SC, Creed T, Cummings F, de Boer NK, D’Inca R, D’Souza R, Daneshmend TK, Delaney M, Dhar A, Direkze N, Dunckley P, Gaya DR, Gearry R, Gore S, Halfvarson J, Hart A, Hawkey CJ, Hoentjen F, Iqbal T, Irving P, Lal S, Lawrance I, Lees CW, Lockett M, Mann S, Mansfi eld J, Mowat C, Mulgrew CJ, Muller F, Murray C, Oram R, Orchard T, Parkes M, Phillips R, Pollok R, Radford-Smith G, Sebastian S, Sen S, Shirazi T, Silverberg M, Solomon L, Sturniolo GC, Th omas M, Tremelling M, Tsianos EV, Watts D, Weaver S, Weersma RK, Wesley E, Holden A, Ahmad T.. Clinical Features and HLA Association of 5-Aminosalicylate (5-ASA)-induced Nephrotoxicity in Infl ammatory Bowel Disease [published correction appears in J Crohns Colitis. 2017;11(12):1509]. Journal of Crohn’s and colitis. 2016;10(2):149-158. DOI:10.1093/ecco-jcc/jjv219 68. Perazella MA. Update on the renal eff ects of anticancer agents. Journal of Onco-Nephrology. 2017;1(3):170- 178. DOI: 10.5301/jo-n.5000026 69. Onco-Nephrology. Elseveir 2020, Ed K Finkel, M Perazella, E Cohen. Section 4. Chemotherapy and Radiation Related Kidney Diseases, 127-196. 70. Wanchoo R, Ramirez CB, Barrientos J, Jhaveri KD. Renal involvement in chronic lymphocytic leukemia. Clinical Kidney Journal. 2018;11(5):670-680. DOI:10.1093/ ckj/sfy026 71. Sash M, Perazella M.A. AKI in multiple myeloma: paraproteins, metabolic disturbances, and drug toxicity. Journal of Onco-Nephrology. 2017;1(3):188-197. DOI: 10.5301/jo-n.5000030 72. Wanchoo R, Abudayyeh A, Doshi V, Edeani A, Glezerman IG, Monga D, Rosner M, Jhaveri KD. Renal Toxicities of Novel Agents Used for Treatment of Multiple Myeloma. Clinical journal of the American Society of Nephrology : CJASN. 2017;(12):176–189. DOI: 10.2215/ CJN.06100616 73. Izzedine H, Perazella MA. Anticancer Drug-Induced Acute Kidney Injury. Kidney International Reports. 2017;(2):504-514. DOI: 10.1016/j.ekir.2017.02.008 74. Saly DL, Perazella MA. Th e adverse kidney eff ects of cancer Immunotherapies. Journal of Onco-Nephrology 2018;2(2-3):56-68, DOI: 10.1177/2399369318808806 75. Mamlouk O, Abudayyeh A. Cancer immunotherapy and its renal eff ects. Journal of Onco-Nephrology. 2019; 3(3):151-159, DOI: 10.1177/2399369319866837 76. Hogan JJ, Markowitz GS, Radhakrishnan J. Drug-Induced Glomerular Disease: Immune-Mediated Injury. Clinical journal of the American Society of Nephrology : CJASN. 2015;(10):1300-1310. DOI:10.2215/ CJN.01910215 77. Radhakrishnan J, Perazella MA. Drug-Induced Glomerular Disease: Attention Required! Clinical journal of the American Society of Nephrology : CJASN. 2015;(10):1287-1290. DOI: 10.2215/CJN.01010115 78. Rosner MH, Perazella MA. Acute Kidney Injury in Patients with Cancer. Th e New England Journal of Medicine 2017; (376):1770-1781. DOI: 10.1056/NEJMra1613984 79. Perazella MA, Sprangers B. AKI in Patients Receiving Immune Checkpoint Inhibitors. Clinical journal of the American Society of Nephrology : CJASN. 2019;14(7):1077- 1079. DOI: https://doi.org/10.2215/CJN.02340219/ 80. Gill S, Maus MV, Porter DL. Chimeric antigen receptor T cell therapy: 25 years in the making. Blood reviews. 2016;30(3):157-167. DOI: 10.1016/j.blre.2015.10.003 81. Shirali AC, Perazella MA. Tubulointerstitial Injury Associated With Chemotherapeutic Agents. Advances in Chronic Kidney Disease 2014; 21(1):56-6314-20. DOI: 10.1053/j.ackd.2013.06.010 82. Елисеева ТИ, Балаболкин ИИ. Аллергические реакции на лекарственные средства: современные представления (обзор). Современные технологии в медицине. 2016; 8 (1), 159-172. [TI Eliseeva, II Balabolkin. Allergic reactions to drugs: modern ideas (overview). Modern technologies in Medicine. 2016; 8 (1), 159- 172. ( In Russian)] DOI: 10.17691/stm2016.8.1.22 83. Дядык АИ, Куглер ТЕ. Почечная безопасность ингибиторов протонной помпы. Архивъ внутренней медицины. 2017; 7(6): 415-422. [ Dyadyk AI, Kugler TE. Renal safety of proton pump inhibitors. Th e Russian Archives of Internal Medicine. 2017; 7(6): 415-422. (In Russian)]DOI: 10.20514/2226-6704-2017-7-6-415-422 84. Izzedine H, Guetin V. Drug-induced acute tubulointerstitial nephritis. Oxford Textbook of Clinical Nephrology (4 ed.) Section 4. Chapter 84: 679-686. 85. Moledina DG, Perazella MA. PPIs and kidney disease: from AIN to CKD. Journal of Nephrology 2016; (29): 611-616. DOI: 10.1007/s40620-016-0309-2 86. Baker R. Acute tubulointerstitial nephritis: overview. Oxford Textbook of Clinical Nephrology (4 ed.) 2016. Section 4; Chapter 83: 669-677. 87. Geevasinga N, Coleman PL, Webster AC, Roger SD. Proton pump inhibitors and acute interstitial nephritis. Clinical Gastroenterology and Hepatology: the Offi cial Cinical Practice Journal of the American Gastroenterological Association. 2006; 4(5): 597–604. DOI: 10.1016/j.cgh.2005.11.004 88. Brodsky S, Nadashy T. Acute and chronic tubulointerstitial nephritis. Heptinstall’s Pathology of the Kidney. Ch. 25: 1111-1165. 89. Baker RJ, Pusey CD. Th e changing profi le of acute tubulointerstitial nephritis. Nephrology, dialysis, transplantation : offi cial publication of the European Dialysis and Transplant Association – European Renal Association 2004; (19): 8-11. DOI: 10.1093/ndt/gfg464 90. Kasiske BL, Keane WF. Laboratory assesment of renal biopsy. Brenner and Rector’s the Kidney edited by Karl Skorecki. Elsevier, 10 edition. 2016: 1137-1174. 91. Walker P. Th e renal biopsy. Archives of Pathology and Laboratory Medicine. 2009; (133):181-188. DOI: 10.1043/1543-2165-133.2.181 92. Segerer S, Nelson PJ, Schlondorff D. Chemokines, chemokine receptors, and renal disease: from basic science to pathophysiologic and t herapeutic studies. Journal of the American Society of Nephrology : JASN. 2000;(11):152–176. 93. Kuroiwa T, Schlimgen R, Illei GG, McInnes IB, Boumpas DT. Distinct T cell/renal tubular epithelial cell interactions defi ne diff erential chemokine production: implications for tubulointerstitial injury in chronic glomerulonephritides. Th e Journal of Immunology. 2000;164(6): 3323–3329. DOI: 10.4049/jimmunol.164.6.3323 94. Kelly C, Neilson E. Tubulointerstitial diseases. Brenner and Rector’s the Kidney edited by Karl Skorecki. Elsevier, 10 edition. 2016; Chapter 36:1209-1230. 95. Krishnan N, Perazella MA. Drug-induced acute interstitial nephritis: pathology, pathogenesis, and treatment. Iranian Journal ofKidney Diseases. 2015;9(1):3-13. 96. Shah S, Carter-Monroe N, Atta MG. Granulomatous interstitial nephritis. Clinical Kidney Journal. 2015;8(5):516-523. DOI:10.1093/ckj/sfv053 97. Zafar F, Iqbal AM, Mubarik A, Rojas M, Muddassir S: Rivaroxaban-induced acute interstitial nephritis. Th e American Journal of Case Reports, 2019; (20): 1719-1722. DOI:10.12659/AJCR.917492 98. Raghavan R, Shawar S. Mechanisms of drug-induced interstitial nephritis. Advances in Chronic Kidney Disease. 2017; 24(2): 64–71. DOI: 10.1053/j. ackd.2016.11.004 99. Sampathkumar K, Ramalingam R, Prabakar A, Abraham A: Acute interstitial nephritis due to proton pump inhibitors. Indian Journal of Nephrology. 2013; (23): 304–307. DOI: 10.4103/0971-4065.114487 100. Gruchalla RS, Pirmohamed M: Antibiotic allergy. Th e New England Journal of Medicine, 2006; 354(6): 601– 609. DOI: 10.1056/NEJMcp043986 101. Perazella MA, Markowitz GS: Drug-induced acute interstitial nephritis. Nature reviews. Nephrology. 2010; 6(8): 461–70.DOI: 10.1038/nrneph.2010.71 102. Hartmann JT, Knop S, Fels LM, van Vangerow A, Stolte H, Kanz L, Bokemeyer C. Th e use of reduced doses of amifostine to ameliorate nephrotoxicity of cisplatin/ifosfamide- based chemotherapy in patients with solid tumors. Anticancer Drugs. 2000; (11):1-6. DOI: 10.1097/00001813-200001000-00001 103. Buysen JG, Houthoff HJ, Krediet RT, Arisz L. Acute interstitial nephritis: a clinical and morphological study in 27 patients. Nephrology, dialysis, transplantation : offi cial publication of the European Dialysis and Transplant Association – European Renal Association. 1990;5(2):94-9. DOI: 10.1093/ndt/5.2.94 104. Neilson EG. Pathogenesis and therapy of interstitial nephritis. Kidney International. 1989;35(5):1257-70. DOI: 10.1038/ki.1989.118 105. Chang C, Gershwin ME. Drugs and autoimmunity-a contemporary review and mechanistic approach. Journal of Autoimmunity. 2010;34(3):J266-275. DOI: 10.1016/j.jaut.2009.11.012 106. McCluskey RT, Colvin RB. Immunologic aspects of renal tubular and interstitial diseases. Annual Review of Medicine. 1978; (29): 191-203. DOI: 10.1146/annurev. me.29.020178.001203 107. Alexopoulos E. Drug-induced acute interstitial nephritis. Renal Failure. 1998; (20):809-19. 108. Magalhães-Costa P, Matos L, Chagas C. Chronic tubulointerstitial nephritis induced by 5-aminosalicylate in an ulcerative colitis patient: a rare but serious adverse event. BMJ case reports. 2015; bcr2014207928. DOI: 10.1136/bcr-2014-207928 109. Praga M, Gonzalez E. Acute interstitial nephritis. Kidney International. 2010;77(11): 956–961. DOI: 10.1038/ki.2010.89 110. Perazella MA. AKI in a hospitalized patient with cellulitis. Clinical journal of the American Society of Nephrology : CJASN. 2013; (8): 658-664. DOI: 10.2215/ CJN.09370912 111. Weber M, Braun B, Köhler H. Ultrasonic fi ndings in analgesic nephropathy. Nephron. 1985;39(3):216-22. DOI: 10.1159/000183375 112. Pusey CD, Saltissi D, Bloodworth L, Rainford DJ, Christie JL. Drug associated acute interstitial nephritis: Clinical and pathological features and the response to high dose steroid therapy. Th e Quarterly Journal of Medicine. 1983;(52):194-211. 113. Rossert J. Drug-induced interstitial nephritis. Kidney International. 2001; (60):804-817. DOI: 10.1046/j. 1523-1755.2001.060002804.x 114. Cameron JS. Allergic interstitial nephritis: clinical features and pathogenesis. Th e Quarterly Journal of Medicine. 1988; (250):97-115. 115. Lucas GNC, Leitão ACC, Alencar RL, Xavier RMF, Daher EF, Silva Junior GBD. Pathophysiological aspects of nephropathy caused by non-steroidal anti-infl ammatory drugs. Jornal brasileiro de nefrologia. 2019;41(1):124-130. DOI:10.1590/2175-8239-JBN-2018-0107 116. Burdmann EA, Lima EQ, Vieira JM, Júnior, Vidal EC. Nefropatia tóxica e tubulointersticial. In: Riella MC, editor. Princípios de Nefrologia e Distúrbios Hidreletrolíticos. 6ª ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan; 2018: 407–438. 117. Harirforoosh S, Asghar W, Jamali F. Adverse effects of nonsteroidal antiinfl ammatory drugs: an update of gastrointestinal, cardiovascular and renal complications. Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences. 2013;(16):821–847. DOI: 10.18433/J3VW2F 118. Dreischulte T, Morales DR, Bell S, Guthrie B. Combined use of nonsteroidal anti-infl ammatory drugs with diuretics and/or renin-angiotensin system inhibitors in the community increases the risk of acute kidney injury. Kidney International. 2015;(88):396–403. DOI: 10.1038/ki.2015.101 119. Zhang X, Donnan PT, Bell S, Guthrie B. Non-steroidal anti-infl ammatory drug induced acute kidney injury in the community dwelling general population and people with chronic kidney disease: systematic review and meta-analysis. BMC Nephrology (BMC Nephrol). 2017;(18):256–268, DOI: 10.1186/s12882-017-0673-8 120. Hörl WH. Nonsteroidal Anti-Infl ammatory Drugs and the Kidney. Pharmaceuticals (Basel, Switzerland). 2010;3(7):2291-2321. DOI: 10.3390/ph3072291 121. Sierra M. Systematic review: proton pump inhibitor-associated acute interstitial nephritis. Alimentary Pharmacology and Th erapeutics. 2007; (26): 545-553. DOI: 10.1111/j.1365-2036.2007.03407.x 122. Michel DM, Kelly CJ. Acute interstitial nephritis. Journal of the American Society of Nephrology : JASN. 1998;(9):506–515. 123. Malek DE, Malley LA, Slone TW, Elliott GS, Kennedy GL, Mellert W, Deckardt K, Gembardt C, Hildebrand B, Murphy SR, Bower DB, Wright GA. Repeated dose toxicity study (28 days) in rats and mice with N-methylpyrrolidone (NMP). Drug and Chemical Toxicology. 1997;20(1–2):63–77. DOI: 10.3109/01480549709011079 124. Koselj M, Kveder R, Bren AF, Rott T. Acute renal failure in patients with drug-induced acute interstitial nephritis. Renal Failure. 1993;15(1):69–72. DOI: 10.3109/08860229309065575 125. González E, Gutiérrez E, Galeano C, Chevia C, de Sequera P, Bernis C, Parra EG, Delgado R, Sanz M, Ortiz M, Goicoechea M, Quereda C, Olea T, Bouarich H, Hernández Y, Segovia B, Praga M; Grupo Madrileño De Nefritis Intersticiales. Early steroid treatment improves the recovery of renal function in patients with drug-induced acute interstitial nephritis. Kidney International. 2008;73(8):940–6. DOI: 10.1038/sj.ki.5002776 126. Patel S, Hossain MA, Ajam F, Patel M, Nakrani M, Patel J, Alhillan A, Hammoda M, Alrefaee A, Levitt M, Asif A. Dabigatran-Induced Acute Interstitial Nephritis: An Important Complication of Newer Oral Anticoagulation Agents. Journal of Clinical Medicine Research. 2018;10(10):791-794. DOI:10.14740/jocmr3569w 127. Basetty P, Keith B. A cautionary tale: dabigatran toxicity associated with allergic interstitial nephritis. American Journal of Kidney Diseases. 2013;61(4):B24. 128. Abdulhadi B, Mulki R, Goyal A, Rangaswami J. Novel oral anticoagulant and kidney injury: apixaban-related acute interstitial nephritis. BMJ case reports. 2017;2017:bcr2017221641. DOI:10.1136/bcr2017-221641 129. Monahan RC, Suttorp MM, Gabreels B. A case of rivaroxaban-associated acute tubulointerstitial nephritis. Th e Netherlands Journal of Medicine. 2017;75(4): 169-171. 130. Kadiyala D, Brewster UC, Moeckel GW. Dabigatran induced acute kidney injury. Proceedings of the American Society of Nephrology Annual Meeting. 2012. 131. Escoli R, Santos P, Andrade S, Carvalho F. Dabigatran-Related Nephropathy in a Patient with Undiagnosed IgA Nephropathy . Case Reports in Nephrology. 2015;(2015):298261. DOI: 10.1155/2015/298261 132. Escoli R, Santos P, Andrade S, Carvalho F. Dabigatran-Related Nephropathy in a Patient with Undiagnosed IgA Nephropathy. Case Reports in Nephrology. 2015;(2015):298261. DOI: 10.1155/2015/298261 133. Golla A, R. Goli, Nagalla VK, Kiran BV, Raju DSB, Uppin MS. Indian Journal of Nephrology. Warfarin-related Nephropathy. 2018; 28(5): 378–381. DOI: 10.4103/ijn.IJN_3_17 134. Ryan M, Ware K, Qamri Z, Satoskar A, Wu H, Nadasdy G. Warfarin-related nephropathy is the tip of the iceberg: Direct thrombin inhibitor dabigatran induces glomerular hemorrhage with acute kidney injury in rats. Nephrology, dialysis, transplantation : offi cial publication of the European Dialysis and Transplant Association – European Renal Association. 2014;(29):2228-2234. DOI: 10.1093/ndt/gft 380 ]/ 135. Sasson E, James M, Russell M, Todorov D, Cohen H. Probable Rivaroxaban-Induced Full Body Rash: A Case Report. Journal of Pharmacy Practice. 2018; 31(5):503-506. DOI: 10.1177/0897190017722872 136. Chan YH, Yeh YH, Hsieh MY, Chia-Yu Chang, Hui-Tzu Tu, Shang-Hung Chang, Lai-Chu See, ChangFu Kuo, Chi-Tai Kuo. Th e risk of acute kidney injury in Asians treated with apixaban, rivaroxaban, dabigatran, or warfarin for non-valvular atrial fi brillation: A nationwide cohort study in Taiwan. International Journal of Cardiology. 2018;(265):83-89. DOI:10.1016/j.ijcard.2018.02.07 137. Sise ME, Seethapathy H, Reynolds KL. Diagnosis and Management of Immune Checkpoint Inhibitor-Associated Renal Toxicity: Illustrative Case and Review. Th e Oncologist. 2019;24(6):735-742.DOI: 10.1634/theoncologist.2018-0764 138. Preddie DC, Markowitz GS, Radhakrishnan J, Nickolas TL, D’Agati VD, Schwimmer JA, Gardenswartz M, Rosen R, Appel GB. Mycophenolate mofetil for the treatment of interstitial nephritis. Clinical Journal of the American Society of Nephrology : CJASN. 2006;1(4):718-22. DOI: 10.2215/CJN.01711105 139. Brahmer J, Lacchetti C, Schneider B, Atkins M, Brassil K, Caterino J, Chau I, Ernstoff M, Gardner J, Ginex P, Hallmeyer S, Holter J, Leighl N, Mammen J, McDermott D, Naing A, Nastoupil L, Phillips T, Porter L, Puzanov I, Reichner C, Santomasso B, Seigel C, Spira A, Suarez-Almazor M, Wang Y, Weber J, Wolchok J, Th ompson J. Management of immune-related adverse events in patients treated with immune checkpoint inhibitor therapy: American Society of Clinical Oncology clinical practice guideline. Journal of Clinical Oncology. 2018;36: 1714- 1768. DOI: 10.1200/JCO.2017.77.6385 140. Haanen JBAG, Carbonnel F, Robert C, Kerr KM, Peters S, Larkin J, Jordan K; ESMO Guidelines Committee. Management of toxicities from immunotherapy: ESMO Clinical Practice Guidelines for diagnosis, treatment and follow-up. Annals of oncology : offi cial journal of the European Society for Medical Oncology. 2018;29(4):iv264- iv266. DOI: 10.1093/annonc/mdy162 141. Puzanov I, Diab A, Abdallah K, Bingham C, Brogdon C, Dadu R, Hamad L, Kim S, Lacouture M, LeBoeuf N, Lenihan D, Onofrei C, Shannon V, Sharma R, Silk A, Skondra D, Suarez-Almazor M, Wang Y, Wiley K, Kaufman H, Ernstoff M. Managing toxicities associated with immune checkpoint inhibitors: Consensus recommendations from the Society for Immunotherapy of Cancer (SITC) Toxicity Management Working Group. Journal of Immunotherapy of Cancer. 2017;(5):1–28. DOI: 10.1186/ s40425-017-0300-z Комментарии Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 10 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 48 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_num_rows() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 28 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_fetch_assoc() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 34 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Просмотров: 4248 Вафина А.Р., Визель И.Ю., Визель А.А., Скороходкина О.В., Лунцов А.В., Салахова И.Н. Бронхиальная астма в практике аллерголога и пульмонолога: сравнительный анализ Страницы: 51-59  Описание Авторы Аннотация Ключевые слова Список литературы Комментарии Статистика Вафина АР, Визель ИЮ, Визель АА, Скороходкина ОВ, Лунцов АВ, СалаховаИН. Бронхиальная астма в практике аллерголога и пульмонолога: сравнительный анализ. Сибирское медицинское обозрение. 2021;(4):51-59. DOI 10.20333/25000136-2021-4-51-59 Авторы: Вафина Аделя Рустемовна ; Казанский государственный медицинский университет; adelyavafina@gmail.com Визель Ирина Юрьевна ; Казанский государственный медицинский университет; tatpulmo@mail.ru Визель Александр Андреевич ; Казанский государственный медицинский университет; lordara@inbox.ru Скороходкина Олеся Валерьевна ; Казанский государственный медицинский университет; Лунцов Алексей Владимирович ; Республиканская клиническая больница; Салахова Ирина Николаевна ; Казанский государственный медицинский университет; iboroznova@gmail.com Аннотация: Цель работы. Проведение сравнительного анализа контингента пациентов с бронхиальной астмой, находящихся под наблюдением у пульмонологов и аллергологов. Материал и методы. Было обследовано и проанализировано 377 случаев бронхиальной астмы. Исследование было не интервенционным, наблюдательным, сравнительным в условиях реальной клинической практики. Больным проводили сбор анамнеза, оценивали приверженность назначениям, уровень контроля бронхиальной астмы, проводили физикальное обследование, запись спирометрии, фиксировали лабораторные данные и проведенное раннее лечение. Результаты исследований были обработаны с помощью программы SPSS-18. Результаты. Пациенты, наблюдавшиеся у пульмонологов, чаще имели неконтролируемую БА, среди них почти в 2 раза больше было пациентов с тяжёлым течением заболевания и объём форсированного выдоха за 1 секунду был ниже нормальных значений, у них значимо чаще встречались обострения и госпитализации. Среди пациентов, наблюдавшихся у аллергологов было больше мужчин, они были моложе, значительно чаще имели контролируемую бронхиальную астму и бронхиальную астму лёгкого течения, в 3 раза чаще страдали ринитом, у них в течение последнего года было меньше обострений и госпитализаций, в 2 раза реже ОФВ1 был ниже нормы, в 2 раза реже пользовались бронхолитиками короткого действия. Пациенты, наблюдавшиеся у пульмонологов чаще имели тяжёлое, неконтролируемое заболевание, с наличием внелёгочных сопутствующих заболеваний. По частоте базисной терапии бронхиальной астмы в виде ингаляций ингаляционных глюкокортикостероидов и их сочетаний длительно действующими бронхолитиками пациенты не различались. Заключение. Бронхиальная астма – заболевание, гетерогенность проявлений которого приводит к наблюдению пациентов с одной нозологией у специалистов двух специальностей, что обосновано различиями в клиническом профиле, которые установлены в данном исследовании. Ключевые слова: бронхиальная астма, аллерголог, пульмонолог, наблюдение, лечение. Список литературы: 1. Global Initiative for Asthma. GINA 2021. [Electronic resource], 03.05.2021. URL: https://ginasthma.org. 2. Бронхиальная астма. Клинические рекомендации. 2019. [Электронный ресурс], 03.05.2021. URL https://spulmo.ru/upload/kr_bronhastma_2019.pdf[Bronchial asthma. Clinical guidelines. 2019. [Electronic resource], 03.05.2021. URL https://spulmo.ru/upload/ kr_bronhastma_2019.pdf (In Russian)]. 3. Ильина НИ, Курбачева ОМ, Новик ГА, Вишнева ЕА, Алексеева АА, Селимзянова ЛР. Руководство для врачей. Российская ассоциация аллергологов и клинических иммунологов. Союз педиатров России. Москва. 2019. Сер.15. Болезни детского возраста от А до Я. 84 с. [Ilyina NI, Kurbacheva OM, Novik GA, Vishneva EA, Alekseeva AA, Selimzyanova LR. A guide for doctors. Russian Association of Allergists and Clinical Immunologists. Union of Pediatricians of Russia. Moscow. 2019. Ser. 15. Diseases of childhood from A to Z. 84 p. (In Russian)] 4. Федосеев ГБ, Емельянов АВ, Линцов АЕ, Лотоцкий ЛЮ, Ловицкий СВ, Марченко ВН, Минеев ВН, Немцов ВИ, Петрова МА, Синицына ТМ, Тотолян АА, Трофимов ВИ. Биологические дефекты – основа развития бронхиальной астмы. Аллергология. 1998;(1):13-16. [Fedoseev GB, Emelyanov AV, Lintsov AE, Lototsky LYu, Lovitsky SV, Marchenko VN, Mineev VN, Nemtsov VI, Petrova MA, Sinitsyna TM, Totolyan AA, Trofi mov VI. Biological defects are the basis for the development of bronchial asthma. Allergology. 1998;(1):13-16. (In Russian)] 5. Фофанова ТВ, Агеев ФТ, Смирнова МД, Свирида ОН, Кузьмина ОЕ, Тхостов АШ, Нелюбина АС. Отечественный опросник приверженности терапии: апробация и применение в амбулаторной практике. Системные гипертензии. 2014;(2):13-16. [Fofanova TV, Ageev FT, Smirnova MD, Svirida ON, Kuzmina OE, Tkhostov Ash, Nelubina AS. Domestic questionnaire of adherence to therapy: testing and application in outpatient practice. Systemic Hypertension. 2014;(2):13-16. (In Russian)] 6. Juniper EF, O’Byrne PM, Guyatt GH, Ferrie PJ, King DR. Development and validation of a questionnaire to measure asthma control. European Respiratory Journal.1999;14(4):902-907. DOI: 10.1034/j.1399- 3003.1999.14d29.x 7. Yancey SW, Keene ON, Albers FC, Ortega H, Bates S, Bleecker ER, Pavord I. Biomarkers for severe eosinophilic asthma. Journal of Allergy and Clinical Immunology. 2017; 140(6): 1509-1518. DOI: 10.1016/j. Jaci.2017.10.005 8. Чучалин АГ, Айсанов ЗР, Черняк АВ, Чикина СЮ, Калманова ЕН. Методические рекомендации по использованию метода спирографии. Российское респираторное общество. Ссылка активна на 05.05.2021. [Chuchalin AG, Aisanov ZR, Chernyak AV, Chikina SYu, Kalmanova EN. Guidelines for the use of the method of spirography. Russian Respiratory Society. Assessed May 05, 2021 (In Russian)] https://spulmo. ru/obrazovatelnye-resursy/federalnye-klinicheskierekomendatsii/ 9. Наследов АД SPSS 19: профессиональный статистический анализ данных. СПб.: Питер, 2011. 416 с. [Nasledov AD SPSS 19: Professional Statistical Data Analysis. SPb .: Piter, 2011. 416 p. (In Russian)] 10. Авдеев СН, Айсанов ЗР, Архипов ВВ, Белевский АС, Визель АА, Демко ИВ, Емельянов АВ, Ильина НИ, Курбачева ОМ, Лещенко ИВ, Ненашева НМ, Овчаренко СИ, Фассахов РС. Принципы выбора терапии для больных лёгкой бронхиальной астмой. Согласованные рекомендации РААКИ и РРО. Практическая пульмонология, 2017;(1):82-92. [Avdeev SN, Aisanov ZR, Arkhipov VV, Belevsky AS, Vizel AA, Demko IV, Emelyanov AV, Ilyina NI, Kurbacheva OM, Leshchenko IV, Nenasheva NM, Ovcharenko SI, Fassakhov RS. Th e principles of choosing therapy for patients with mild bronchial asthma. Agreed recommendations of RAAKI and RRO. Practical Pulmonology. 2017;(1):82-92. (In Russian)]. 11. Вафина АР, Салахова ИН, Визель ИЮ, Рахматуллина НМ, Дьякова ЕВ, Визель АА, Шакирова ГР. Сравнительный анализ данных больных бронхиальной астмой в реальной практике аллергологов и пульмонологов. Практическая пульмонология. 2018;(3):3- 7. [Vafi na AR, Salakhova IN, Vizel IYu, Rakhmatullina NM, Dyakova EV, Vizel AA, Shakirova GR. Comparative analysis of data of patients with bronchial asthma in real practice of allergists and pulmonologists. Practical Pulmonology. 2018;(3):3-7. (In Russian)] 12. Авдеев СН, Волкова ОА, Демко ИВ, Игнатова ГЛ, Лещенко ИВ, Канукова НА, Куделя ЛМ, Невзорова ВА, Недашковская НГ, Уханова ОП, Шульженко ЛВ, Фассахов РС. Организация помощи пациентам с тяжелой бронхиальной астмой в различных субъектах Российской Федерации. От эндотипов и фенотипов бронхиальной астмы к персонализированному выбору терапии. Терапевтический архив. 2020;92(2):119–123. [Avdeev SN, Volkova OA, Demko IV, Ignatova GL, Leshchenko IV, Kanukova NA, Kudelya LM, Nevzorova VA, Nedashkovskaya NG, Ukhanova OP, Shulzhenko LV, Fassakhov RS. Organization of care for patients with severe bronchial asthma in various constituent entities of the Russian Federation. From endotypes and phenotypes of bronchial asthma to personalized therapy choices. Th erapeutic Archive. 2020;92(2):119–123. (In Russian)] DOI: 10.26442/00403660.2020.02.000555 13. Ильина НИ, Курбачева ОМ, Сизякина ЛП, Уханова ОП, Шогенова МС, Брисин ВЮ. Иммунобиологические препараты в лечении бронхиальной астмы: опыт и перспективы применения (совет экспертов). Российский аллергологический журнал. 2015;(5):90-93. [Ilyina NI, Kurbacheva OM, Sizyakina LP, Ukhanova OP, Shogenova MS, Brisin VYu. Immunobiological preparations in the treatment of bronchial asthma: experience and prospects for their use (expert advice). Russian Journal of Allergy. 2015;(5):90-93. (In Russian)] 14. Скороходкина ОВ, Лунцов АВ, Зяпбарова ГР, Терех РА. Сравнительный десятилетний анализ эффективной диагностики бронхиальной астмы у пациентов призывного возраста. Практическая медицина. 2016;4(96):102-105. [Skorokhodkina OV, Luntsov AV, Zyapbarova GR, Terekh RA. Comparative ten-year analysis of eff ective diagnostics of bronchial asthma in patients of military age. Practical Medicine. 2016;4 (96):102-105. (In Russian)] 15. Janson C, Johannessen A, Franklin K, Svanes C, Schiöler L, Malinovschi A, Gislason T, Benediktsdottir B, Schlünssen V, Jõgi R, Jarvis D, Lindberg E. Change in the prevalence asthma, rhinitis and respiratory symptom over a 20 year period: associations to year of birth, life style and sleep related symptoms. BioMed Central Pulmonary Medicine. 2018;18(1):152. DOI: 10.1186/s12890-018- 0690-9 Комментарии Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 10 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 48 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_num_rows() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 28 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_fetch_assoc() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 34 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Просмотров: 4247 Описание Авторы Аннотация Ключевые слова Список литературы Комментарии Статистика Ахвердян ЮР, Папичев ЕВ, Заводовский БВ, Полякова ЮВ, Сивордова Л. Е.Прогнозирование тяжести остеопороза у пациентов с ревматоидным артритом путем определения уровня фетуина-А. Сибирское медицинское обозрение. 2021;(4):60-65.. DOI 10.20333/25000136-2021-4-60-65 Авторы: Ахвердян Юрий Рубенович ; научно-исследовательский институт клинической и экспериментальной ревматологии им. А. Б. Зборовского; Папичев Евгений Васильевич ; научно-исследовательский институт клинической и экспериментальной ревматологии им. А. Б. Зборовского; Заводовский Борис Валерьевич ; научно-исследовательский институт клинической и экспериментальной ревматологии им. А. Б. Зборовского; Полякова Юлия Васильевна ; научно-исследовательский институт клинической и экспериментальной ревматологии им. А. Б. Зборовского; Сивордова Лариса Евгеньевна ; научно-исследовательский институт клинической и экспериментальной ревматологии им. А. Б. Зборовского; Аннотация: Цель исследования. Изучение зависимости тяжести течения остеопороза от уровня фетуина-А с целью прогнозирования тяжести течения остеопороза у пациентов с ревматоидным артритом. Материал и методы. Мы обследовали 110 пациентов с диагнозом ревматоидный артрит (средний возраст 54,2+11,97 лет). Диагноз ставился на основании критериев (ACR/EULAR) 2010 г. В качестве контрольной группы обследовали 30 условно здоровых лиц. Определение минеральной плотности костной ткани проводилось с использованием DXA (денситометр Lunar DPX-NT GE). Уровень фетуина-А определялся непрямым иммуноферментным методом (тест-система HumanFetuin-A ELISA). Результаты. Сре дний уровень фетуина-А в сыворотке крови здоровых лиц, составил от 653,55 мкг/мл до 972,19 мкг/мл. Нами были выделены 2 группы пациентов с ревматоидным артритом: с уровнем фетуина-А сыворотки крови < 653,55 мкг/мл (23 пациента) и нормальными значениями фетуина-А – 653,55 мкг/мл и выше (87 пациентов). Пониженный уровень фетуина-А был выявлен у 20 пациентов (87 %) в группе больных остеопорозом и только у 3 (13 %) пациентов с РА, не страдающих остеопорозом (р<0,001). Остеопоретические переломы были диагностированы у 12 (14 %) больных группы пациентов с нормальным уровнем фетуина-А и отсутствовали у 75 (86 %) пациентов (р<0,001). Кроме того, у больных ревматоидным артритом со сниженным уровнем фетуина-А средние значения минеральной плотности костной ткани в области шейки бедра, позвоночника, Total были достоверно ниже (р<0,001). Для определения диагностической точности лабораторных тестов использовалась характеристическая кривая (ROC кривая). Значение площади под ROC-кривой составило 0,663, точка cut-off соответствует уровню фетуина-А равному 660,3 мкг/мл. Данному значению соответствует специфичность 84,72 %, чувствительность 47,37 %. Заключение. Нами были выявлены статистически значимые корреляции между уровнем фетуина-А сыворотки крови больных ревматоидным артритом, частотой развития остеопороза и его осложнений (р<0,001). Лабораторное определение фетуина-А для прогнозирования тяжести течения остеопороза у пациентов с ревматоидным артритом обладает хорошим качеством и может рекомендоваться для использования в клинической практике Ключевые слова: ревматоидный артрит, остеопороз, низкоэнергетический перелом, фетуин-А, цитокин, гепатокин Список литературы: 1. Лесняк ОМ, Баранова ИА, Белова КЮ, Гладкова ЕН, Евстигнеева ЛП, Ершова ОБ, Каронова ТЛ, Кочиш АЮ, Никитинская ОА, Скрипникова ИА, Торопцова НВ, Арамисова РМ. Остеопороз в Российской Федерации: эпидемиология, медико-социальные и экономические аспекты проблемы (обзор литературы). Травматология и ортопедия России. 2018;24(1):155-168. [Lesnyak OM, Baranova IA, Belova KYu, Gladkova EN, Evstigneeva LP, Ershova OB, Karonova TL, Kochish AYu, Nikitinskaya OA, Skripnikova IA, Toroptsova NV, Aramisova RM. Osteoporosis in russian federation: epidemiology, sociomedical and economical aspects (review). Traumatology and Orthopedics of Russia. 2018;24(1):155-168. (In Russian)] DOI:10.21823/2311-2905-2018-24-1-155- 168 2. Мельниченко ГА, Белая ЖЕ, Рожинская ЛЯ, Торопцова НВ, Алексеева ЛИ, Бирюкова ЕВ, Гребенникова ТА, Дзеранова ЛК,Древаль АВ, Загородний НВ, Ильин АВ, Крюкова ИВ, Лесняк ОМ, Мамедова ЕО, Никитинская ОА, Пигарова ЕА, Родионова СС, Скрипникова ИА, Тарбаева НВ, Фарба ЛЯ, Цориев ТТ, Чернова ТО, Юренева СВ, Якушевская ОВ, Дедов ИИ. Федеральные клинические рекомендации по диагностике, лечению и профилактике остеопороза. Проблемы эндокринологии. 2017;63(6):392-426. [Melnichenko GA, Belaya ZhE, Rozhinskaya LYa, Toroptsova NV, Alekseeva LI, Biryukova EV, Grebennikova TA, Dzeranova LK, Dreval’ AV, Zagorodniy NV, Il’yin AV, Kryukova IV, Lesnyak OM, Mamedova EO, Nikitinskaya OA, Pigarova EA, Rodionova SS, Skripnikova IA, Tarbaeva NV, Farba LYa, Tsoriev TT, Chernova TO, Yureneva SV, Yakushevskaya OV, Dedov II. Russian clinical guidelines on the diagnostics, treatment, and prevention of osteoporosis. Problems of Endocrinology. 2017;63(6):392- 426. (In Russian)] DOI: 10.14341/probl2017636392-42 3. Алексеева ЛИ, Баранова ИА, Белова КЮ, Ершова ОБ, Зазерская ИЕ, Зоткин ЕГ, Лесняк ОМ, Никитинская ОА, Рожинская ЛЯ, Скрипникова ИА, Смирнов АВ, Щеплягина ЛА Клинические рекомендации по профилактике и ведению больных с остеопорозом. Ярославль: Литера; 2012. 23 c. [Alekseeva LI, Baranova IA, Belova KYu, Ershova OB, Zazerskaya IE, Zotkin EG, Lesnyak OM, Nikitinskaya OA, Rozhinskaya LYa, Skripnikova IA, Smirnov AV, Shcheplyagina LA. Clinical guidelines for the prevention and management of patients with osteoporosis. Yaroslavl’: Litera; 2012. 23p. (In Russian)] 4. Белая ЖЕ, Рожинская ЛЯ, Гребенникова ТА, Kanis JA, Пигарова ЕА, Родионова СС, Торопцова НВ, Никитинская ОА, Скрипникова ИА, Драпкина ОМ, Ершова ОБ, Бирюкова ЕВ, Лесняк ОМ, Цориев ТТ, Белова КЮ, Марченкова ЛА, Дзеранова ЛК, Древаль АВ, Мамедова ЕО, Ткачева ОН, Дудинская ЕН, Никанкина ЛВ, Фарба ЛЯ, Чернова ТО, Юренева СВ, Якушевская ОВ, Илюхина ОБ, Крюкова ИВ, Тарбаева НВ, Петряйкин АВ, Загородний НВ, Мельниченко ГА, Дедов ИИ. Краткое изложение проекта федеральных клинических рекомендаций по остеопорозу. Остеопороз и остеопатии. 2020;23(2):4- 21. [Belaya ZE, Rozhinskaya LYa, Grebennikova TA, Kanis JA, Pigarova EA, Rodionova SS, Toroptsova NV, Nikitinskaya OA, Skripnikova IA, Drapkina OM, Ershova OV, Biryukova EV, Lesnyak OM, Tsoriev TT, Belova KY, Marchenkova LA, Dzeranova LK, Dreval’ AV, Mamedova EO, Tkacheva ON, Dudinskaya EN, Nikankina LV, Farba LY, Chernova TO, Yureneva SV, Yakushevskaya OV, Ilyukhina OB, Kryukova IV, Tarbaeva NV, Petryaykin AV, Zagorodniy NV, Mel’nichenko GA, Dedov II. Summary of the Draft Federal Clinical Guidelines for Osteoporosis. Osteoporosis and Bone Diseases.2020;23(2):4-21. (In Russian)] DOI: https://doi.org/10.14341/osteo12373 5. McCloskey EV, Oden A, Harvey NC, Leslie W, Hans D, Johansson H, Barkmann R, Boutroy S, Brown, R. Chapurlat, Elders P, Fujita Y, Glüer C, Goltzman D, Iki M, Karlsson M, Kindmark A, Kotowicz M, Kurumatani N, Kwok T, Lamy O, Leung J, Lippuner K, Ljunggren Ö, Lorentzon M, Mellströ m D, Merlijn T, Oei L, Ohlsson C, Pasco J, Rivadeneira F, Rosengren B, Sornay-Rendu E, Szulc P, Tamaki J, Kanis J. A Meta-Analysis of Trabecular Bone Score in Fracture Risk Prediction and Its Relationship to FRAX. Journal of Bone and Mineral Research. 2016;31(5):940-948. DOI: https://doi.org/10.1002/ jbmr.2734 6. Ganda K, Mitchell PJ, Seibel MJ. Chapter 3 – Models of Secondary Fracture Prevention: Systematic Review and Metaanalysis of Outcomes. Secondary Fracture Prevention. An International Perspective. 2019; 33-62. 7. Marques A, Ferreira RJ, Santos E, Loza E, Carmona L, Silva J. The accuracy of osteoporotic fracture risk prediction tools: a systematic review and meta-analysis. Annals of the RheumaticDiseases. 2015;(74):1958–67. 8. Дыдыкина ИС, Алексеева ЛИ. Остеопороз при ревматоидном артрите: диагностика, факторы риска, переломы, лечение. Научно-практическая ревматология. 2011;49(5):13-17. [Dydykina IS, Alekseeva LI. Osteoporosis in rheumatoid arthritis: diagnosis, risk factors, fractures, treatment. Rheumatology Science and Practice. 2011;49(5):13-17.(In Russian)] DOI:10.14412/1995-4484-2011-1454 9. Demetriou M, Binkert Ch, Sukhu B, Tenenbaum H, Dennis J. Fetuin/alpha2-HS Glycoprotein Is a Transforming Growth Factor-Beta Type II Receptor Mimic and Cytokine Antagonist. Journal of Biological Chemistry. 1996;(271):12755-12761.DOI:10.1074/jbc.271.22.12755 10. Binkert C, Demetriou M, Sukhu B., Szweras Mi, Tenenbaum H, Dennis J. Regulation of osteogenesis by fetuin. Journal of Biological Chemistry. 1999;274(40):28514- 28520.DOI:10.1074/jbc.274.40.28514 11. DeLong ER, DeLong DM, Clarke-Pearson DL. Comparing the areas under two or more correlated receiver operating characteristic curves: a nonparametric approach. Biometrics. 1988;44(3):837-845. Комментарии Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 10 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 48 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_num_rows() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 28 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_fetch_assoc() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 34 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Просмотров: 4247 Описание Авторы Аннотация Ключевые слова Список литературы Комментарии Статистика Мудров ВА, Якимова АВ, Зиганшин АМ. Технология прогнозирования дородового излития околоплодных вод. Сибирское медицинское обозрение. 2021;(4):66-72. DOI 10.20333/25000136-2021-4-66-72 Авторы: Мудров Виктор Андреевич к.м.н., доцент; Читинская государственная медицинская академия; - Якимова Анна Валентиновна ; Новосибирский государственный медицинский университет; Зиганшин Айдар Миндиярович ; Башкирский Государственный медицинский университет; Аннотация: Цель исследования. Создание технологии прогнозирования дородового излития околоплодных вод, основанной на общедоступных методах лабораторного и инструментального исследования. Материал и методы. На базе родовспомогательных учреждений г. Чита и г. Уфа за 2018-2021 гг. проведен ретроспективный анализ 200 случаев родов у пациенток, поступивших в стационар накануне своевременных родов (1-2 дня). В ходе исследования было выделено 2 исследуемые группы: 1 группа включала 128 женщин со своевременным излитием околоплодных вод; 2 группа – 72 пациентки с дородовым излитием околоплодных вод. Группы сопоставимы по возрасту, антропометрическим параметрам и экстрагенитальной патологии. При поступлении всем женщинам проводилось общеклиническое и ультразвуковое исследование. Статистическая обработка результатов осуществлялась с помощью программы IBM SPSS Statistics Version 25.0. Результаты. Технология прогнозирования дородового излития околоплодных вод основывалась на обучении многослойного персептрона. Структура обучаемой нейронной сети включала 5 входных нейронов: индекс массы тела, высота дна матки, уровень общего билирубина, активированное частичное тромбопластиновое время и индекс амниотической жидкости. Процент неверных предсказаний полученной нейросети составил 28,5 %. Заключение. Комплексный подход, основанный на интеграции в структуре нейронной сети результатов общедоступных методов лабораторного и инструментального исследования накануне родов, позволяет с точностью до 75 % прогнозировать вероятность дородового излития околоплодных вод. Применение данной технологии в клинической практике позволит в перспективе не только своевременно приступить к подготовке родовых путей, но и снизить частоту неблагоприятных акушерских и перинатальных исходов Ключевые слова: технология, прогнозирование, дородовое излитие околоплодных вод, аномалии родовой деятельности Список литературы: 1. Оперативное акушерство Манро Керра. Под ред. МА Курцера. М.: Рид Элсивер; 2015. 392 c. [Kurcer MA, editor. Munro Kerr’s Operative Obstetrics. Moscow: Elseivier Ltd; 2015. 392 p. (In Russian)] 2. Баев ОР, Васильченко ОН, Кан НЕ, Клименченко НИ, Митрохин СД, Тетруашвили НК, Ходжаева ЗС, Шмаков РГ, Дегтярев ДН, Тютюнник ВЛ, Адамян ЛВ. Преждевременный разрыв плодных оболочек. Преждевременное излитие вод. Акушерство и гинекология.2013;(9):123-134. [Baev OR, Vasilchenko ON, Kan NE, Klimenchenko NI, Mitrokhin SD, Tetruashvili NK, Khodzhaeva ZS, Shmakov RG, Degtyarev DN, Tyutyunnik VL, Adamyan LV. Clinical guidelines for preterm amniorrhea. Obstetrics and Gynegology. 2013;(9):123-134. (In Russian)] 3. Борщева АА, Перцева ГМ, Логинов ИА. Факторы риска и исход родов при несвоевременном излитии околоплодных вод. Кубанский научный медицинский вестник.2017;24(5):10-13. [Borshcheva AA, Pertseva GM, Loginov IA. Risk factors and outcome of labor at ill-timed discharge of amniotic fl uid. Kuban Scientific Medical Bulletin. 2017;24(5):10-13. (In Russian)] DOI: 25207 / 1608-6228-2017-24-5-10-13 4. Клинические рекомендации Минздрава России от 06 мая 2014 г. №15-4/10/2-3190 «Кесарево сечение. Показания, методы обезболивания, хирургическая техника, антибиотикопрофилактика, ведение послеоперационного периода». Ссылка активна на06.2021. [Clinical recommendations of the Ministry of Health of Russia dd. 06 May 2014. №15- 4/10/2-3190 «Caesarean section. Indications, methods of anesthesia, surgical technique, antibiotic prophylaxis, postoperative management». Accessed June 05, 2021 (In Russian).] http://www.consultant.ru/document/cons_ doc_LAW_320589/ 5. Yasmina A, Barakat A. Prelabour rupture of membranes (PROM) at term: prognostic factors and neonatal consequences. The Pan African Medical Journal. 2017;(26):68. DOI: 11604/pamj.2017.26.68.11568 6. Ismail AQ, Lahiri S. Management of prelabour rupture of membranes (PROM) at term. Journal of Perinatal Medicine. 2013;41(6):647-649. DOI: 1515/jpm-2013-0078 7. Luo X, Pan J, Wang L, Wang P, Zhang M, Liu M, Dong Z, Meng Q, Tao X, Zhao X, Zhong J, Ju W, Gu Y, Jenkins EC, Brown WT, Shi Q, Zhong N. Epigenetic regulation of lncRNA connects ubiquitin-proteasome system with infection-infl ammation in preterm births and preterm premature rupture of membranes. BMC Pregnancy and Childbirth. 2015;(15):35. DOI: 1186/s12884-015- 0460-0 8. Menon R, Boldogh I, Hawkins HK, Woodson M, Polettini J, Syed TA, Fortunato SJ, Saade GR, Papaconstantinou J, Taylor RN. Histological evidence of oxidative stress and premature senescence in preterm premature rupture of the human fetal membranes recapitulated in vitro. Th e American Journal of Pathology. 2014;184(6):1740-1751. DOI: 1016/j.ajpath.2014.02.011 9. Dutta EH, Behnia F, Boldogh I, Saade GR, Taylor BD, Kacerovský M, Menon R. Oxidative stress damage-associated molecular signaling pathways differentiate spontaneous preterm birth and preterm premature rupture of the membranes. Molecular Human Reproduction.2016;22(2):143-157. DOI: 1093/molehr/gav074 10. Клинические рекомендации Минздрава России от 06 мая 2014г. №15-4/10/2-3185 «Оказание медицинской помощи при одноплодных родах в затылочном предлежании (без осложнений) и в послеродовом периоде». Ссылка активна на06.2021. [Clinical recommendations of the Ministry of Health of Russia dd. 06 May 2014. №15-4/10/2-3185 «Providing medical care for singleton labor in the occipital presentation (without complications) and in the postpartum period». Accessed June 05, 2021. (In Russian).] http://www. consultant.ru/document/Cons_doc_LAW_320795/ 11. Акушерство: национальное руководство. Под ред. ГМ Савельевой, ГТ Сухих, ВН Серова, ВЕ Радзинского. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2018. 1088 c. [Savelyeva GM, Sukhikh GT, Serov VN, Radzinsky VE, editors. Obstetrics: national guide. Moscow: GEOTAR-Media; 2018. 1088 p. (In Russian)] 12. Эберхард Мерц. Ультразвуковая диагностика в акушерстве и гинекологии. Том 1: Акушерство. М.: МЕДпресс-информ; 2016. 720 с. [Eberkhard Merts. Ultrasound diagnostics in obstetrics and gynecology. Volume 1: Obstetrics. Moscow: MEDpress-inform; 2016. 720 p. (In Russian)] 13. Uniform requirements for manuscripts submitted to biomedical journals. International Committee of Medical Journal Editors. Annals of Internal Medicine. 1997;126(1):36-47. DOI: 7326/0003-4819-126-1- 199701010-00006 14. Lang TA, Altman DG. Statistical analyses and methods in the published literature: Th e SAMPL guidelines. Medical Writing. 2016;25(3):31-36. DOI: 18243/ eon/2016.9.7.4 15. Katz D, Beilin Y. Disorders of coagulation in pregnancy. British Journal of Anaesthesia.2015;115(2):ii75-88. DOI: 1093/bja/aev374 16. Дятлова ЛИ, Михайлов АВ, Чеснокова НП, Понукалина ЕВ, Глухова ТН. Активация антирадикальных механизмов защиты в системе «мать – плацента – плод» как прогностический критерий дородового излития околоплодных вод. Современные проблемы науки и образования. 2013;3. Ссылка активна на 05.06.2017. [Dyatlova LI, Mikhailov AV, Chesnokova NP, Ponukalina EV, Glukhova TN. Activation of antiradical defense mechanisms in the «mother – placenta – fetus» system as a prognostic criterion for prelabour rupture of membranes. Modern Problems of Science and Education. 2013;3. Accessed June 05, 2021. (In Russian)] http://www. science-education.ru/ru/article/view?id=9520 17. Наркевич АН, Наркевич АА, Виноградов КА. Интервальная оценка медианы и ее автоматизация. Врач и информационные технологии. 2013;(4):40- 49. [Narkevich AN, Narkevich AA, Vinogradov KA. Interval estimation of the median and its automation. Doctor and Information Technologies. 2013;(4):40-49. (In Russian)] 18. Kumar R, Indrayan A. Receiver operating characteristic (ROC) curve for medical researchers. Indian Pediatrics. 2011;48(4):277-287. DOI: 10.1007/s13312-011- 0055-4 Комментарии Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 10 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 48 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_num_rows() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 28 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_fetch_assoc() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 34 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Просмотров: 4246 Описание Авторы Аннотация Ключевые слова Список литературы Комментарии Статистика Теппер ЕА, Таранушенко ТЕ, Наркевич АН. Заболеваемость школьников и эффективность диспансерного наблюдения на различных этапах обучения. Сибирское медицинское обозрение. 2021;(4):73-79. DOI 10.20333/25000136-2021-4-73-79 Авторы: Теппер Елена Александровна кандидат медицинских наук, доцент кафедры поликлинической терапии, семейной медицины и ЗОЖ с курсом ПО; Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В. Ф. Войно-Ясенецкого; eltepper@mail.ru Таранушенко Татьяна Евгеньевна доктор медицинских наук, профессор, заведующая кафедрой педиатрии ИПО; Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В. Ф. Войно-Ясенецкого; tetar@rambler.ru Наркевич Артем Николаевич к.м.н.; Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В. Ф. Войно-Ясенецкого; narkevichart@gmail.com Аннотация: В публикации представлены результаты исследования состояния здоровья 437 школьников на разных этапах школьного образования (перед поступлением в школу, по окончанию первого класса, при переходе на предметное образование и по окончанию школьного образования) и в зависимости от возраста начала обучения. Динамическая оценка показателей выявляемости у школьников на протяжении 10 летнего периода наблюдения в зависимости от возраста начала обучения показала нарастание доли учащихся, страдающих заболеваниями верхних дыхательных путей, костно-мышечной системы и органа зрения. Существенное нарастание перечисленной патологии преобладало на втором и четвертых этапах наблюдения и преимущественно среди учащихся, начавших образование с 6 и 8 летнего возраста. Полученные данные усилили значимость формирования здорового образа жизни и навыков у учащихся и их родителей в рамках Приоритетных национальных проектов в России. Цель исследования. Оценить состояние здоровья школьников, начавших, обучение в разном возрасте, в течение 10- летнего периода наблюдения на основе динамического анализа показателей исчерпанной и общей заболеваемости, выявляемости значимой патологии (ОРВИ) и индекса здоровья. Материал и методы. В выполненном исследовании проведена оценка динамического состояния здоровья 437 учащихся на разных этапах школьного образования (перед поступлением в школу, по окончанию первого класса, при переходе на предметное обучение и по окончанию школьного образования) на основании сведений анамнеза и медицинской документации, данных клинического осмотра, заключений врачей узких специальностей по данным диспансерных осмотров. Полученные результаты представлены в группах школьников с учетом возраста начала обучения. Результаты. Результаты проведенного исследования с анализом показателей состояния здоровья учащихся свидетельствуют о сниженных функциональных резервах и более неблагоприятной направленности показателей заболеваемости (исчерпанной, общей, числа заболеваний на одного учащегося в год) в течение школьного обучения среди детей, начавших образование с 6 и 8 летнего возраста. Заключение. Представленный анализ состояния здоровья учащихся на разных этапах школьного образования в зависимости от возраста начала обучения позволил представить обобщенные данные заболеваемости школьников за 10-летний период динамического наблюдения, обозначить неблагоприятные тенденции в состоянии здоровья детей, начавших обучение в возрасте 6 и 8 лет, и отметить необходимость более пристального внимания к детям с более низким хронологическим возрастом по сравнению с функционально готовыми сверстниками, что в условиях школьной нагрузки увеличивает вероятность неблагополучной адаптации с последующими нарушениями состояния здоровья ребенка и высокой заболеваемостью на протяжении всего периода обучения Ключевые слова: дети, здоровье школьников, возраст начала обучения, заболеваемость, школьная патология, индекс здоровья. Список литературы: 1. Резолюция WHA64.28. Молодежь и риски для здоровья. Опубликовано: Шестьдесят четвертая сессия Всемирной ассамблеи здравоохранения, Женева, 16–24 мая 2011 г. года Резолюции и решения, приложения. Женева: Всемирная организация здравоохранения; 2011:28 (документ WHA64/2011/ REС) Доступно по: http://apps.who.intgb.ebwha.pdf fi les.:WHA64-REC1.A64.REC1ru.pdf. page 23, по состоянию на 30 июня 2014 г.). [Initial Resolution Children WHA64.28. completion Youth and status months risks to health vision. period Published: some Sixty fi lmed fourth session of schoolchildren of the World First Health Assembly Groups, observation, Geneva, 16-24 May 2011. Resolutions and mode decisions, annex. Geneva address: posture World Summer Health Organization; 2011: 28 (referrals document age WHA64 / 2011 / REС values) Available at: http: // students //// apps.registered who. age int det gb.numberebwha.d..pdf fi les.:WHA64- rams REC1. Diseases A64.war REC1-activity ru.taken pdf.mail page 23, Krasnoyarsk as received as before at the end of June 30, 2014). (In Russian)] 2. Атамбаева РМ, Кочкорова ФА, Цивинская ТА, Эсенаманова МК, Эрбаев АТ. Структура obзаболеваемости детей и подростков, проживающих в Нарынской области Кыргызской Республики. Здравоохранение Кыргызстана. 2018;(2):105-109. [Atambaeva RM, Kochkorova FA, Tsivinskaya TA, Esenamanova MK, Erbaev AT. The structure of morbidity in children and adolescents living in the Naryn region of the Kyrgyz Republic. Healthcare of Kyrgyzstan. 2018; (2): 105-109. (In Russian)] 3. Baevskii RM. Chernikova AG. Assessment of adaptation risk in an individual prenosological monitoring system. Neuroscience and Behavioral Physiology.2016; 46(4):437-445. 4. Аношкина ЕВ. Динамика заболеваемости болезнями органов дыхания детского населения страны. Медицинский альманах. 2018;3(54):120-123. [Anoshkina EV. Dynamics of the incidence of respiratory diseases in the child population of the country. Medical Almanac. 2018; 3 (54): 120 -123. (In Russian)] 5. Хузиханов ФВ, Мухаметдинова АА. Изучение медико-биологических, медико-социологических и организационных факторов влияющих на заболеваемость детей школьного возраста. Казанский медицинский наблюдения журнал. 2018; 99 (3):467-471. [Khuzikhanov FV, Mukhametdinova AA. Study of medical-biological, medical-sociological and organizational factors aff ecting the incidence of schoolage children. Kazan Medical Journal. 2018; 99 (3): 467- 471. (In Russian)] 6. Теппер ЕА. Особенности формирования школьной патологии в течение десяти лет обучения. Саратовский научно-медицинский журнал. 2013: 9 (1): 101 -106. [Tepper EA. Features of the formation of school pathology during ten years of study. Saratov Journal of Medical Scientifi c Research. 2013: 9 (1): 101-106. (In Russian)] 7. Суворова АВ, Якубова ИШ, Чернякина ТС. Динамика показателей состояния здоровья детей и подростков Санкт-Петербурга за 20-летний период. Гигиена и санитария. 2017; 96 (4): 332-338. [Suvorova AV, Yakubova ISh, Chernyakina TS. Dynamics of indicators of the health status of children and adolescents in St. Petersburg over a 20-year period. Hygiene and Sanitation. 2017; 96 (4): 332-338. (In Russian)] DOI: http://dx. DOI.org/10.18821/0016-9900-2017-96-4332-338 8. Баранов АА, диспансерноНамазова-поступлении Баранова ЛС, первоклассников Альбицкий ВЮ, медицинский Терлецкая РН. rec1 Состояние были здоровья число детей современной учащихся России. Вопросы современной педиатрии. 2018;(17): 426-434. [Baranov AA, Namazova-Baranova LS, Albitsky VYu, Terletskaya RN. Th e state of health was the number of children of modern Russian students. Problems of Modern Pediatrics. 2018;(17): 426-434. (In Russian)] 9. Альбицкий ВЮ, Модестов АА, Косова СА, Бондарь ВИ, Волков ИМ. Исчерпанная заболеваемость детского населения России в зависимости от типов поселений. Российский педиатрический журнал. 2012; (6):39-43. [Albitsky VYu, Modestov AA, Kosova SA, Bondar VI, Volkov IM. Exhausted morbidity in the child population of Russia depending on the types of settlements. Russian Pediatric Journal. 2012; (6): 39-43. (In Russian)] 10. Кучма ВР, Сухарева ЛМ, Рапопорт ИК, Шубочкина ЕИ, Скоблина НА, Милушкина ОЮ. Популяционное здоровье детского населения, риски здоровью и санитарно-эпидемиологическое благополучие обучающихся: проблемы, пути решения, технологии деятельности. Гигиена и санитария. 2017;96(10): 990-995. [Kuchma VR, Sukhareva LM, Rapoport IK, Shubochkina EI, Skoblina NA, Milushkina OYu. Population health of the child population, health risks and sanitary and epidemiological well-being of students: problems, solutions, technology of activity. Hygiene and Sanitation. 2017; 96 (10): 990-995. (In Russian)] 11. Рапопорт ИК, Сухарева ЛМ. Особенности формирования нарушений системы пищеварения и обмена веществ у московских учащихся в процессе обучения школе. Здоровье населения и среда обитания. 2018;8 (305):11-16. [Rapoport IK, Sukhareva LM. Features of the formation of disorders of the digestive system and metabolism in Moscow students in the process of teaching school. Public Health and Life Environment. 2018;8 (305):11-16. (In Russian)] 12. Robles А, Gjelsvik А, HirwayР. Adverse childhood experiences and protective factors with school engagement. Pediatrics. 2019: e20182945. DOI: 10.1542 peds:2018-2945 13. Сетко ИМ. Современные проблемы состояния здоровья школьников в условиях комплексного влияния факторов среды обитания. Оренбургский медицинский вестник. 2018; 2 (22): 4 -13. [Setko IM. Modern problems of the health status of schoolchildren in the context of the complex infl uence of environmental factors. Orenburg Medical Bulletin. 2018; 2 (22): 4-13. (In Russian)] 14. Баранов АА, Намазова-Баранова ЛС, Байбарина ЕН, Чумакова ОВ, Устинова НВ, Антонова ЕВ, Терлецкая РН, Вишнева ЕА, Геворкян АК, Кожевникова ОВ, Сурков АН. Оценка качества проведения профилактических медицинских осмотров несовершеннолетних. Вестник Росздравнадзора. 2016; (3):49- 54. [Baranov AA, Namazova-Baranova LS, Baybarina EN, Chumakova OV, Ustinova NV, Antonova EV, Terletskaya RN, Vishneva EA, Gevorkyan AK, Kozhevnikova OV, Surkov AN. Assessment of the quality of preventive medical examinations of minors. Bulletin of Roszdravnadzor. 2016; (3): 49-54. (In Russian)] 15. Баранов АА, Намазова-Баранова ЛС, Терлецкая РН, Антонова ЕВ, Устинова НВ, Байбарина ЕН, Чумакова ОВ. Итоги профилактических медицинских осмотров детского населения Российской федерации в 2014 году. Педиатр. 2017; 8: (1): 33-39. Baranov AA, Namazova-Baranova LS, Terletskaya RN, Antonova EV, Ustinova NV, Baybarina EN, Chumakov OV. Results of preventive medical examinations of the child population of the Russian Federation in 2014. Pediatrician. 2017; 8: (1): 33-39. (In Russian)] Комментарии Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 10 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 48 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_num_rows() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 28 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_fetch_assoc() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 34 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Просмотров: 4244 Описание Авторы Аннотация Ключевые слова Список литературы Комментарии Статистика Махмутов РФ. Оценка гуморального и цитокинового статусов у детей при первичной форме Эпштейна-Барр вирусной инфекции, рекуррентных респираторных заболеваниях и аденовирусной инфекции. Сибирское медицинское обозрение. 2021;(4):80-84. DOI 10.20333/25000136-2021-4-80-84 Авторы: Махмутов Равил Фаткулислямович ; Донецкий национальный медицинский университет имени М. Горького; Аннотация: Цель исследования: оценить гуморальный и цитокиновый статус у детей при инфекционном мононуклеозе (вызванным вирусом Эпштейна– Барр), рекуррентных респираторных заболеваниях и аденовирусной инфекции. Материал и методы. Изучены показатели гуморального (иммуноглобулины IgА, IgМ, IgG) и цитокинового (интерфероны ИФН–α и ИФН–γ, интерлейкины ИЛ–1β и ИЛ–6) иммунитета 93 детей с инфекционным мононуклеозом (вызванным вирусом Эпштейна–Барр) (ИМ), 167 детей с рекуррентными респираторными заболеваниями верхних дыхательных путей (РРЗ) и 76 детей с аденовирусной инфекцией (АДВИ) в возрасте от 1 до 18 лет, а также 90 детей аналогичного возраста без заболеваний с лимфопролиферативным синдромом и без хронической соматической патологии в стадии обострения на момент исследования. Результаты. Снижение противовирусной защиты организма детей с вирусными инфекциями в сочетании с лимфопролиферативным синдромом проявлялось в снижении у них в 1,5-2 раза ИФН–α и ИФН–γ. Значительно повышенные уровни провоспалительных интерлейкинов ИЛ–1β и ИЛ–6 у детей с вирусными инфекциями в сочетании с лимфопролиферативным синдромом указывали на тяжелое течение патологического процесса, преимущественно при инфекционном мононуклеозе (вызванным вирусом Эпштейна–Барр). Результаты исследования цитокинов периферической крови при инфекционных заболеваниях можно рассматривать как дополнительные лабораторные критерии при дифференциальной диагностике заболеваний с лимфопролиферативным синдромом. Заключение. Поскольку интерфероны подавляют репликацию вирусов, изучение цитокинового статуса у детей при инфекционном мононуклеозе (вызванным вирусом Эпштейна-Барр), рекуррентных респираторных заболеваниях и аденовирусной инфекции является особенно актуальным для практического здравоохранения. Ключевые слова: цитокины, иммуноглобулины, инфекционные заболевания, лимфопролиферативный синдром, дети Список литературы: 1. Горейко ТВ, Калинина НМ, Дрыгина ЛБ. Современные представления об иммунопатогенезе инфекции, вызванной вирусом Эпштейна–Барр. Инфекции и иммунитет. 2011; 2 (2): 121–30. [Goreiko TV, Kalinina NM, Drygina LB. Modern concepts of immunopathogenesis of infection caused by the Epstein-Barr virus. Infection and Immunity. 2011; 2 (2): 121-30. (In Russian)] 2. Pinninti S, Hough-Telford C, Pati S, Boppana S. Cytomegalovirus and Epstein—Barr Virus Infections. Pediatrics in Review. 2016; 37(6): 223–30. DOI: 10.1542/ pir.2015-0072 3. Богадельников ИВ, Хамид Фазел, Кубышкин АВ. Лимфаденопатии при инфекционных заболеваниях у детей. Донецк; 2013: 224с. [Bogadelnikov IV, Hamid Fazel, Kubyshkin AV. Lymphadenopathies in infectious diseases in children. Donetsk; 2013: 224p. (In Russian)] 4. Савенкова МС, Караштина ОВ, Шабат МБ, Красева ГН, Абрамова НА, Красева ТЕ. Интерфероновый статус и выбор индукторов интерферонов у часто болеющих детей. Детские инфекции. 2016;15(2):45- 51. [Sav enkovа MS, Karashtinа OV, Shabat MB, Kraseva GN, Abramova NA, Kraseva TE. Interferon Status and Choice of Interferons Inducers in Frequently Ill Children. Children Infections. 2016;15(2):45-51. (In Russian)] DOI:10.22627/2072-8107-2016-15-2-45-51 5. Касымова ЕБ, Башкина ОА, Галимзянов ХМ. Особенности иммунного статуса и факторы риска хронического течения Эпштейна–Барр вирусной инфекции у детей. Новая наука: современное состояние и пути развития. 2016; 98 (8): 16-20. [Kasymova EB, Bashkina OA, Galimzyanov KhM. Features of the immune status and risk factors for the chronic course of the Epstein-Barr viral infection in children. New Science: Current State And Development Paths. 2016; 98 (8): 16-20. (In Russian)] 6. Ершов ФИ, Наровлянский АН. Использование индукторов интерферона при вирусных инфекциях. Вопросы вирусологии. 2015; 60(2): 5-10. [Ershov-FI, Narovlyansky AN. The use of interferon inducers in viral infections. Virology Issues. 2015; 60 (2): 5-10. (In Russian)] 7. Симованьян ЭН, Денисенко ВБ, Григорян АВ, Ким МА, Бовтало ЛФ, Белугина ЛВ. Эпштейна-Барр вирусная инфекция у детей: совершенствование программы диагностики и лечения. Детские инфекции. 2016;15(1):15-24. [Simovanyan EN, Denisenko VB, Grigoryan AV, Kim MA, Bovtalo LF, Belugina LV. Epstein-Barr Virus Infection in Children: Improving the Diagnosis and Treatment Program. Children Infections. 2016;15(1):15-24. (In Russian)] DOI: 10.22627/2072- 8107-2016-15-1-15-24 8. David Kotzbauer, Gary Frank, Wei Dong, Steve Shore. Clinical and laboratory characteristics of disseminated herpes simplex virus infection in neonates. Hospital pediatrics. 2014; 4(3):167–71. DOI: 10.1542/ hpeds.2013-0086 9. Кравченко ЛВ. Уровень цитокинов при Эпштейна–Барр вирусной инфекции у новорожденных и детей первых месяцев жизни. Современные проблемы науки и образования. 2017; (2): 79. [Kravchenko LV. Th e level of cytokines in Epstein-Barr viral infection in newborns and children in the fi rst months of life. Modern Problems of Science and Education. 2017; (2): 79. (In Russian)] 10. Махмутов РФ. Значимость оценки цитокинового статуса у детей при заболеваниях с лимфопролиферативным синдромом. Медико-социальные проблемы семьи. 2020;25(3):34-38. [Makhmutov RF. The significance of assessing the cytokine status in children with diseases with lymphoproliferative syndrome. Medical and Social Problems of Family. 2020;25(3):34-38. (In Russian)] Комментарии Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 10 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 48 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_num_rows() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 28 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_fetch_assoc() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 34 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Просмотров: 4243 Описание Авторы Аннотация Ключевые слова Список литературы Комментарии Статистика Дроздов ЕС, Баранов АИ, Шкатов ДА, Клоков СС. Выбор оптимального вида кассеты сшивающего аппарата при дистальной резекции поджелудочной железы. Сибирское медицинское обозрение. 2021;(4):85-91. DOI 10.20333/25000136-2021-4-85-91 Авторы: Дроздов Евгений Сергеевич врач-онколог; Томский областной онкологический диспансер; johnacro@list.ru Баранов Андрей Игоревич д.м.н., профессор; Новокузнецкий государственный институт усовершенствования врачей; bar106@yandex.ru Шкатов Дмитрий Анатольевич ; Томский областной онкологический диспансер; Клоков Сергей Сергеевич ; Медицинский центр им. Г.К. Жерлова; Сибирский государственный медицинский университет; Томская обл., г. Северск, переулок Чекист, 3; Томск, Московский тракт, 2; тел.: +7(382)2414785; e-mail: apk@gastro.tomsk.ru Аннотация: Цель исследования. Изучить факторы риска развития послеоперационной панкреатической фистулы у пациентов перенесших дистальную резекциию поджелудочной железы с применением сшивающе-режущих степлерных аппаратов, а так же установить критерии подбора оптимального вида кассеты для данных аппаратов, позволяющих снизить частоту развития панкреатической фистулы. Материал и методы. Проведено двухцентровое ретроспективно-проспективное контролируемое исследование. В исследование включено 46 пациентов (19 (41,3 %) мужчин и 27 (58,7 %) женщин). Все пациенты, включённые в исследование, были прооперированы в объеме дистальной резекции поджелудочной железы с использованием степлерных аппаратов для пересечения поджелудочной железы и закрытия ее культи. Во всех случаях проводили измерение толщины поджелудочной железы в области резекции, а также рассчитывали разницу между данным показателем и высотой закрытия скоб кассеты сшивающего аппарата. Пациенты были разделены на две группы: 1) без послеоперационной панкреатической фистулы или с биохимической несостоятельностью; 2) с клинически значимыми панкреатическими фистулами. Результаты. Клинически значимые послеоперационные панкреатические фистулы развились в 15 (32,6 %) случаях (тип В – 14 (93,3 %), тип С – 1 (6,7 %) случай). Имелась статистически значимая разница средней толщины паренхимы поджелудочной железы в зоне резекции между группами пациентов без и с наличием клинически значимых панкреатических фистул (15,4 ± 4,3 мм против 12,3 ± 3,5 мм, р = 0,01 и 12,8 ± 2,3 мм против 16,4 ± 3,1 мм, р < 0,01 соответственно). Частота развития клинически значимых панкреатических фистул была достоверно ниже при значении разницы толщины паренхимы поджелудочной железы в зоне резекции и высотой закрытия скоб сшивающего аппарата от 8 до 14 мм (9,5 %), в сравнении с значением данного показателя менее 8 мм (55,6 %, р <0,01 ) и более 14 мм (50,0 %, р <0,01). Заключение. При анализе факторов риска развития послеоперационных панкреатических фистул после дистальной резекции поджелудочной железы, установлено, что статистически значимыми факторами риска данного осложнения являются, большая толщина паренхимы поджелудочной железы в зоне резекции, а также разница толщины паренхимы поджелудочной железы в зоне резекции и высотой закрытия скоб сшивающего аппарата, при этом установлено, что оптимальным значением последнего показателя позволяющего достичь минимальной частоты послеоперационной панкреатической фистулы является значение от 8 до 14 мм. Ключевые слова: панкреатическая фистула, дистальная резекция, культя поджелудочной железы, степлерный аппарат Список литературы: 1. Yoshida Y, Matsumoto I, Matsumoto M, Kawaguchi K, Murase T, Kamei K, Satoi S, Takebe A, Nakai T, Takeyama Y. Transpancreatic mattress suture with Vicryl mesh around the stump decreases postoperative pancreatic fistula after distal pancreatectomy. Journal of hepato-biliary-pancreatic sciences. 2019;26(11):510-516. DOI: 10.1002/jhbp.664 2. Zhang H, Zhu F, Shen M, Tian R, Shi CJ, Wang X, Jiang JX, Hu J, Wang M, Qin RY. Systematic review and meta-analysis comparing three techniques for pancreatic remnant closure following distal pancreatectomy. Th e British Journal of Surgery. 2015; 102(1):4-15. DOI: 10.1002/bjs.9653 3. Peng YP, Zhu XL, Yin LD, Zhu Y, Wei JS, Wu JL, Miao Y. Risk factors of postoperative pancreatic fi stula in patients aft er distal pancreatectomy: a systematic review and meta-analysis. Scientifi c Reports. 2017;7(1):185. DOI: 10.1038/s41598-017-00311-8 4. Bag YM, Topel C, Ozdemir E, Saglam K, Sumer F, Kayaalp C. A Novel Radiological Predictor for Postoperative Pancreatic Fistula Aft er Stapled Distal Pancreatectomy. Th e American Surgeon. 2020:3134820952429. DOI: 10.1177/0003134820952429. Epub ahead of print 5. Wang GQ, Yadav DK, Jiang W, Hua YF, Lu C. Risk Factors for Clinically Relevant Postoperative Pancreatic Fistula (CR-POPF) aft er Distal Pancreatectomy: A Single Center Retrospective Study. Canadian Journal of Gastroenterology & Hepatology. 2021;(2021):8874504. DOI: 10.1155/2021/8874504 6. Song KB, Hong S, Kim HJ, Park Y, Kwon J, Lee W, Jun E, Lee JH, Hwang DW, Kim SC. Predictive Factors Associated with Complications aft er Laparoscopic Distal Pancreatectomy. Journal of Clinical Medicine. 2020;9(9):2766. DOI: 10.3390/jcm9092766 7. Diener MK, Seiler CM, Rossion I, Kleeff J, Glanemann M, Butturini G, Tomazic A, Bruns CJ, Busch OR, Farkas S, Belyaev O, Neoptolemos JP, Halloran C, Keck T, Niedergethmann M, Gellert K, Witzigmann H, Kollmar O, Langer P, Steger U, Neudecker J, Berrevoet F, Ganzera S, Heiss MM, Luntz SP, Bruckner T, Kieser M, Büchler MW. Effi cacy of stapler versus hand-sewn closure aft er distal pancreatectomy (DISPACT): a randomised, controlled multicentre trial. Lancet. 2011;377(9776):1514- 1522. DOI: 10.1016/S0140-6736(11)60237-7 8. Chekan E, Whelan RL. Surgical stapling devicetissue interactions: what surgeons need to know to improve patient outcomes. Medical Devices (Auckland, N.Z.). 2014;(7):305-318. DOI: 10.2147/MDER.S67338 9. Bassi C, Marchegiani G, Dervenis C, Sarr M, Abu Hilal M, Adham M, Allen P, Andersson R, Asbun HJ, Besselink MG, Conlon K, Del Chiaro M, Falconi M, Fernandez-Cruz L, Fernandez-Del Castillo C, Fingerhut A, Friess H, Gouma DJ, Hackert T, Izbicki J, Lillemoe KD, Neoptolemos JP, Olah A, Schulick R, Shrikhande SV, Takada T, Takaori K, Traverso W, Vollmer CR, Wolfgang CL, Yeo CJ, Salvia R, Buchler M; International Study Group on Pancreatic Surgery (ISGPS). Th e 2016 update of the International Study Group (ISGPS) defi nition and grading of postoperative pancreatic fi stula: 11 Years Aft er. Surgery. 2017;161(3):584-591. DOI: 10.1016/j.surg.2016.11.014 10. Chong E, Ratnayake B, Lee S, French JJ, Wilson C, Roberts KJ, Loveday BPT, Manas D, Windsor J, White S, Pandanaboyana S. Systematic review and meta-analysis of risk factors of postoperative pancreatic fi stula aft er distal pancreatectomy in the era of 2016 International Study Group pancreatic fi stula defi nition. HPB (Oxford). 2021;(21):1365-182. DOI: 10.1016/j.hpb.2021.02.015 11. Schorn S, Vogel T, Demir IE, Demir E, Safak O, Friess H, Ceyhan GO. Do somatostatin-analogues have the same impact on postoperative morbidity and pancreatic fi stula in patients aft er pancreaticoduodenectomy and distal pancreatectomy? - A systematic review with metaanalysis of randomized-controlled trials. Pancreatology. 2020;20(8):1770-1778. DOI: 10.1016/j.pan.2020.10.043 12. Deng Y, He S, Cheng Y, Cheng N, Gong J, Gong J, Zeng Z, Zhao L. Fibrin sealants for the prevention of postoperative pancreatic fi stula following pancreatic surgery. The Cochrane Database of Systematic Reviews. 2020;3(3):CD009621. DOI: 10.1002/14651858 13. Hirashita T, Ohta M, Yada K, Tada K, Saga K, Takayama H, Endo Y, Uchida H, Iwashita Y, Inomata M. Effect of pre-firing compression on the prevention of pancreatic fistula in distal pancreatectomy. American Journal of Surgery. 2018;216(3):506-510. DOI: 10.1016/j. Amjsurg.2018.03.023 14. Sepesi B, Moalem J, Galka E, Salzman P, Schoeniger LO. Th e infl uence of staple size on fi stula formation following distal pancreatectomy. Journal of gastrointestinal surgery : offi cial journal of the Society for Surgery of the Alimentary Tract. 2012;16(2):267-274. DOI: 10.1007/s11605-011-1715-3 15. Kang MK, Kim H, Byun Y, Han Y, Choi YJ, Kang JS, Kwon W, Han IW, Shin SH, Choi DW, You Y, Heo JS, Jang JY. Optimal stapler cartridge selection to reduce post-operative pancreatic fi stula according to the pancreatic characteristics in stapler closure distal pancreatectomy. HPB (Oxford). 2021;23(4):633-640. DOI: 10.1016/j.hpb.2020.09.004 16. Fukuda Y, Yamada D, Eguchi H, Iwagami Y, Noda T, Asaoka T, Wada H, Kawamoto K, Gotoh K, Mori M, Doki Y. A novel preoperative predictor of pancreatic fi stula using computed tomography aft er distal pancreatectomy with staple closure. Surgery Today. 2017;47(10):1180- 1187. DOI: 10.1007/s00595-017-1495-9 17. Okano K, Oshima M, Kakinoki K, Yamamoto N, Akamoto S, Yachida S, Hagiike M, Kamada H, Masaki T, Suzuki Y. Pancreatic thickness as a predictive factor for postoperative pancreatic fi stula aft er distal pancreatectomy using an endopath stapler. Surgery Today. 2013;43(2): 141-147. DOI: 10.1007/s00595-012-0235-4 Комментарии Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 10 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 48 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_num_rows() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 28 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_fetch_assoc() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 34 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Просмотров: 4242 Описание Авторы Аннотация Ключевые слова Список литературы Комментарии Статистика Павлов АВ, Тимофеев ВЕ, Овчинникова НВ, Лазутина ГС, Пронин НА, Бахарев ИВ. Микрохирургическая анатомия артерий переднего продырявленного вещества головного мозга человека. Сибирское медицинское обозрение. 2021;(4):92-97. DOI 10.20333/25000136-2021-4-92-97 Авторы: Павлов Артем Владимирович ; Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И. П. Павлова; Тимофеев Василий Егорович ; Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И. П. Павлова; Овчинникова Наталья Владимировна ; Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И. П. Павлова; Лазутина Галина Степановна ; Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И. П. Павлова; Пронин Николай Алексеевич ; Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И. П. Павлова; Бахарев Илья Вячеславович ; Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И. П. Павлова; Аннотация: Цель исследования. Детализировать особенности расположения артериальных ветвей в зоне переднего продырявленного вещества. Материал и методы. Работа выполнена на материале головного мозга 25 людей обоих полов из архива кафедры анатомии ФГБОУ ВО РязГМУ Минздрава России. Для верификации артерий до фиксации головного мозга в формальдегиде была выполнена их инъекция раствором желатина. Оценивали особенности отхождения центральных артерий от внутренней сонной артерии, средней мозговой артерии, передней мозговой артерии, их калибр и количество. Определяли количественные особенности расположения центральных артерий в плоскости переднего продырявленного вещества. Результаты. Исследование показало, что расположение прободающих артерий в переднем продырявленном веществе имеет зависимость от уровня их отхождения. Источниками артериальных ветвей, идущих в переднем продырявленном веществе, являются внутренняя сонная, передняя, средняя мозговая и передняя ворсинчатая артерия. Прободающие ветви от внутренней сонной артерии были зарегистрированы в 98 % случаев в обоих полушариях. Одностороннее (слева) отсутствие ветвей от С4-сегмента было отмечено только в одном случае. От М1 сегмента средней мозговой артерии отходили наиболее многочисленные артерии. При этом, большее количество ветвей входило в латеральную группу, превышая число таковых в медиальной группе в 2,3 раза, в среднем. При этом количество ветвей в каждой группе относительно стороны тела достоверно не отличалось. Заключение. Знание анатомии переднего продырявленного вещества, особенностей расположения ветвей средней мозговой артерии и передней ворсинчатой артерии важно и представляет интерес для клиницистов с позиций диагностики и оперативного лечение опухолей головного мозга и аневризм его артериального круга. Ключевые слова: головной мозг, переднее продырявленное вещество, артерии головного мозга, прободающие артерии, лентикулостриарные артерии. Список литературы: 1. Basma J, Saad H, Abuelem T, Krisht K, Cai L, Pravdenkova S, Krisht AF. Anterior perforated substance region aneurysms: review of a series treated with microsurgical technique. Neurosurgical Review. 2021. DOI:10.1007/s10143-021-01485-6. 2. Rhoton AL Jr. Anatomy of saccular aneurysms. Surgical Neurology. 1980;14(1):59-66. PMID: 7414487. 3. Viale GL, Turtas S, Pau A. Surgical removal of striate arteriovenous malformations. Surgical Neurology.1980;14(5):321-4. 4. Tahir RA, Haider S, Kole M, Griffi th B, Marin H. Anterior Cerebral Artery: Variant Anatomy and Pathology. Journal of Vascular and Interventional Neurology. 2019;10(3):16-22. 5. Фомкина ОА, Николенко ВН, Гладилин ЮА. Анатомия клиновидной части средней мозговой артерии взрослых людей. Саратовский научномедицинский журнал. 2016; 12 (1): 15-18. [Fomkina OA, Nikolenko VN, Gladilin YUA. Anatomy of the wedge-shaped part of the adult middle cerebral artery. Saratov Scientifi c Medical Journal. 2016; 12 (1): 15-18. (In Russian)] 6. Park DH, Kang SH, Lee JB, Lim DJ, Kwon TH, Chung YG, Lee HK. Angiographic features, surgical management and outcomes of proximal middle cerebral artery aneurysms. Clinical Neurology and Neurosurgery. 2008; 110(6), 544–551. DOI: 10.1016/j.clineuro.2008.02.014 7. Lee JM, Joo SP, Kim TS, Go EJ, Choi HY, Seo BR. Surgical management of anterior cerebral artery aneurysms of the proximal (A1) segment. World Neurosurgery. 2010; (74):478–82. DOI:10.1016/j.wneu.2010.06.040 8. Lasjaunias P, Berenstein, A. Surgical neuro-angiography. Vol. 1. Berlin: Springer; 2006. 9. Perlmutter D, Rhoton AL Jr. Microsurgical anatomy of the anterior cerebral-anterior communicating-recurrent artery complex. Journal of Neurosurgery. 45.3 (1976): 259-272. DOI:10.3171/jns.1976.45.3.0259 10. Rosner SS, Rhoton AL Jr., Ono M, Barry M. Microsurgical anatomy of the anterior perforating arteries. Journal of Neurosurgery. 1984; (61.3): 468-485. DOI:10.3171/jns.1984.61.3.0468. 11. Gomes FB, Dujovny M, Umansky F, Berman SK, Diaz FG, Ausman JI, Mirchandani HG, Ray WJ. Microanatomy of the anterior cerebral artery. Surgical Neurology. 1986;26(2), 129–141. DOI:10.1016/0090-3019(86) 90365-4 12. Sen T, Esmer AF, Acar HI, Karahan ST, Tuccar E. Arterial vascularisation of the anterior perforated substance. Singapore Medical Journal. 2011;52(6), 410–414. 13. D’Avila AA, Schneider FL. Anatomia microcirúgica da substâcia perfurada anterior basal humana [Microsurgical anatomy of the human basal anterior perforated substance]. Arquivos de neuro-psiquiatria, 2006;64(2A), 249–258. DOI:10.1590/s0004-282x2006000200015 14. Yasargil MG. Microneurosurgery I. New York: Th ieme, 1984:1-207. 15. Шнякин ПГ, Самотесов ПА, Дралюк НС, Ермакова ИЕ, Кан ИВ, Галац КА, Русских АН Варианты строения лентикулостриарных артерий в зависимости от длины сфеноидального сегмента средней мозговой артерии у лиц с разной формой черепа. Вопросы реконструктивной и пластической хирургии. 2012;2 (41):3437. [SHnyakin PG, Samotesov PA, Dralyuk NS, Ermakova IE, Kan IV, Galac KA, Russkih AN. Variants of lenticulostriatal artery structure depending on the length of the sphenoidal segment of the middle cerebral artery in persons with diff erent cranial shape. Problems of Reconstructive and Plastic Surgery. 2012;2 (41):34-37. (In Russian).] 16. Павлов АВ, Тимофеев ВЕ, Юнеман ОА, Виноградов АА, Жеребятьева СР, Сучков ДИ. Современный взгляд на анатомию центральных артерий головного мозга. Медицинский вестник Северного Кавказа. 2018;13(4):663-667. DOI:10.14300/mnnc.2018.13131. [Pavlov AV, Timofeev VE, Yuneman OA, Vinogradov AA, Zherebyatyeva SR, Suchkov DI. A modern view of the anatomy of the central arteries of the brain. Medical Bulletin of the North Caucasus. 2018;13(4):663-667. DOI:10.14300/mnnc.2018.13131. (In Russian)] 17. Tanriover N, Rhoton AL, Jr., Kawashima M, Ulm AJ, Yasuda A. Microsurgical anatomy of the insula and the sylvian fi ssure. Journal of Neurosurgery. 2004;100(5), 891–922. DOI:10.3171/jns.2004.100.5.0891 Комментарии Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 10 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 48 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_num_rows() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 28 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_fetch_assoc() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 34 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Просмотров: 4242 Москалева П.В., Шнайдер Н.А., Петрова М.М., Насырова Р.Ф. Судорожный синдром. Часть 1 Страницы: 98-105 Описание Авторы Аннотация Ключевые слова Список литературы Комментарии Статистика Москалева ПВ, Шнайдер НА, Петрова ММ, Насырова РФ. Судорожный синдром. Часть 1. Сибирское медицинское обозрение. 2021;(4):98-105. DOI 10.20333/25000136-2021-4-98-105 Авторы: Москалева Полина Викторовна ; аспирант, Красноярский государственный медицинский университет имени профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого; Шнайдер Наталья Алексеевна доктор медицинских наук, профессор, заведующая кафедрой медицинской генетики и клинической нейрофизиологии ИПО; Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В. Ф. Войно-Ясенецкого; 660022, г. Красноярск, ул. Партизана Железняка, д. 1; тел.: 8(391) 2212449; e-mail: nataliashnayder@gmail.com Петрова Марина Михайловна доктор медицинских наук, профессор, заведующая кафедрой поликлинической терапии, семейной медицины и ЗОЖ с курсом ПО; Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В. Ф. Войно-Ясенецкого; 660022, Красноярск, ул. Партизана Железняка, 1;тел.:8 (391)2200628; e-mail: stk99@yandex.ru Насырова Регина Фаритовна доктор медицинских наук, ведущий научный сотрудник отделения биологической терапии психически больных; ФГБУ Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт имени В.М. Бехтерева М3 РФ; Адрес: 192019, Санкт-Петербург, ул. Бехтерева, д. Аннотация: Судорожный синдром – это неотложное, потенциально жизнеугрожающее состояние в неврологической, педиатрической и общеврачебной практике. За последнее десятилетие произошел пересмотр дефиниции эпилепсии, эпилептических синдромов, включая судорожный синдром, а также расширился арсенал лекарственных средств для купирования судорожных приступов у детей и взрослых. В связи с чем авторами подготовлена настоящая лекция в двух частях: в данной первой части будут рассмотрены определение, патогенез, этиология и диагностика судорожного синдрома. Лекция предназначена для врачей неврологов, педиатров, врачей общей практики, врачей скорой помощи, врачей анестезиологов-реаниматологов. В системе непрерывного медицинского образования (НМО) судорожный синдром рассматривают в рамках программы последипломной подготовки врачей данных специальностей. Ключевые слова: судорожный синдром, определение, терминология, патогенез, этиология, диагностика Список литературы: 1. Wirrell EC. Classifi cation of Seizures and the Epilepsies. 2021;11-22. DOI: 10.1002/9781119431893.ch2 2. Abou-Khalil BW. Update on antiepileptic drugs 2019. Continuum: Lifelong Learning in Neurology. 2019;25(2): 508-536. DOI: 10.1212/CON.0000000000000715 3. Bauer D, Quigg M. Optimizing management of medically responsive epilepsy. Continuum: Lifelong Learning in Neurology. 2019;25(2):343-361. DOI: 10.1212/ CON.0000000000000709 4. Fisher RS, Cross JH, French JA, Higurashi N, Hirsch E, Jansen FE, Lagae L, Moshé SL, Peltola J, Roulet Perez E, Scheffer IE, Zuberi SM. Operational Classification of Seizure Types by the International League Against Epilepsy: Position Paper of the ILAE Commission for Classifi cation and Terminology. Epilepsia. 2017;58(4): 522-530. DOI: 1111/epi.13670 5. Авакян ГН, Блинов ДВ, Лебедева АВ, Бурд СГ, Авакян ГГ. Классификация эпилепсии Международной Противоэпилептической Лиги: пересмотр и обновление 2017 года. Эпилепсия и пароксизмальные состояния. 2017;9(1):6-25. [Avakyan GN, Blinov DV, Lebedeva AV, Burd SG, Avakyan GG. Th e International Antiepileptic League’s Classifi cation of Epilepsy: revision and update 2017. Epilepsy and Paroxysmal Conditions. 2017;9(1):6-25. (In Russian)] DOI: 10.17749/2077- 8333.2017.9.1.006-025 6. Шайтор ВМ. Клинические рекомендации (протоколы) по оказанию скорой медицинской помощи при судорожном синдроме у детей. Казань; 2014. 8 с. [Shajtor VM. Clinical recommendations (protocols) for the provision of emergency medical care for convulsive syndrome in children. Kazan; 2014. 8 p. (In Russian)] 7. Mu RZ, Liu S, Liang KG, Jiang D, Huang YJ. A meta-analysis of neuron-specifi c enolase levels in cerebrospinal fl uid and serum in children with epilepsy. Frontiers in molecular neuroscience. 2020;(13):24. DOI: 10.3389/fnmol.2020.00024 8. Hanin A, Lambrecq V, Denis JA, Imbert‐Bismut F, Rucheton B, Lamari F, Bonnefont-Rousselot D, Demeret S, Navarro V. Cerebrospinal fl uid and blood biomarkers of status epilepticus. Epilepsia. 2020;61(1):6-18. DOI: 10.1111/epi.16405 9. Süße M, Saathoff N, Hannich M, von Podewils F. Cerebrospinal fluid changes following epileptic seizures unrelated to infl ammation. European Journal of Neurology. 2019;26(7):1006-1012. DOI: 10.1111/ene.13924 10. Вайчене-Магистрис Н. Острые симптоматические судорожные приступы. Эпилепсия и пароксизмальные состояния. 2011;3(4):42-44. [VajcheneMagistris N. Acute symptomatic convulsive seizures. Epilepsy and Paroxysmal Conditions. 2011;3(4):42-44. (In Russian)] 11. Pack AM. Epilepsy overview and revised classifi cation of seizures and epilepsies. Continuum: Lifelong Learning in Neurology. 2019;25(2):306-32 DOI: 10.1212 / CON.0000000000000707 12. Patel P, Moshé SL. The evolution of the concepts of seizures and epilepsy: What’s in a name?. Epilepsia Open. 2020;5(1):22-35. DOI: 10.1002/epi4.12375 13. Fisher RS, Acevedo C, Arzimanoglou A, Bogacz A, Cross JH, Elger CE, Engel JJr, Forsgren L, French JA, Glynn M, Hesdorff er DC, Lee BI, Mathern GW, Moshé SL, Perucca E, Scheff er IE, Tomson T, Watanabe M, Wiebe S. ILAE Official Report: A Practical Clinical Definition of Epilepsy. Epilepsia. 2014;55(4):475-482. DOI: 10.1111/ epi.12550 14. Beghi E, Carpio A, Forsgren L, Hesdorff er DC, Malmgren K, Sander JW, Tomson T, Hauser A. Recommendation for a Defi nition of Acute Symptomatic Seizure. Epilepsia. 2010;51(4):671-675. DOI: 10.1111/j.1528- 1167.2009.02285.x 15. Шалькевич ЛВ, Львова ОА. К вопросу о новых дефинициях эпилепсии. Астраханский медицинский журнал. 2014;9(2):29-34. [Shalkevich LV, Lvova OA. On the Question of New Defi nitions of Epilepsy. Astrakhan Medical Journal 2014;9(2):29-34. (In Russian)] 16. International League Against Epilepsy. Epilepsy Imitators. 2020; 3. Accessed May 04, 2021. https://www. epilepsydiagnosis.org/epilepsy-imitators.html#psychogenic 17. International League Against Epilepsy. Genetic Etiology. 2020; 3. Accessed May 04, 2021. https://www.epilepsydiagnosis.org/aetiology/genetic-groupoverview.html 18. Schuele SU. Evaluation of seizure etiology from routine testing to genetic evaluation. Continuum: Lifelong Learning in Neurology. 2019:25(2):322-342. DOI: 10.1212/ CON.0000000000000723 19. Гусева ЕИ. Неврология : национальное руководство. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2018. 880 с. [Gusev EI. Neurology: a National Guide. Moscow: GEOTAR-Media; 2018. 880 p. (In Russian)] 20. Kriel RL, Cloyd JC, Pellock JM, Mitchell WG, Cereghino JJ, Rosman NP. Rectal Diazepam Gel for Treatment of Acute Repetitive Seizures. Th e North American Diastat Study Group. Pediatric Neurology. 1999;(20):282-288. DOI: 10.1016/s0887-8994(98)00156-8 21. Cereghino JJ, Mitchell WG, Murphy J, Kriel RL, Rosenfeld WE, Trevathan E. Treating Repetitive Seizures with a Rectal Diazepam Formulation: A Randomized Study. Th e North American Diastat Study Group. 1998;(51):1274-1282. DOI: 10.1212/wnl.51.5.1274 22. Haut SR. Seizure Clustering. Epilepsy and Behavior. 2006;(8):50-55. DOI: 10.1016/j.yebeh.2005.08.018 23. Herzog AG. Catamenial Epilepsy: Definition, Prevalence Pathophysiology and Treatment. Seizure. 2008;(17):151-159. DOI: 10.1016/j.seizure.2007.11.014 24. Haut SR, Shinnar S, Moshé SL. Seizure Clustering: Risks and Outcomes. Epilepsia. 2005;(46):146-149. DOI: 10.1111/j.0013-9580.2005.29004.x 25. Caraballo RH, Cersoimo RO, Fejerman N. Benign Focal Seizures of Adolescence: A Prospective Study. Epilepsia. 2004;(45):1600-1603. DOI: 10.1111/j.0013- 9580.2004.25604.x 26. Haut SR, Swick C, Freeman K, Spencer S. Seizure Clustering During Epilepsy Monitoring. Epilepsia. 2002;(43):711-715. DOI: 10.1046/j.1528-1157. 2002.26401.x 27. Rose AB, McCabe PH, Gilliam FG, Smith BJ, Boggs JG, Ficker DM, Moore JL, Passaro EA, Bazil CW. Occurrence of Seizure Clusters and Status Epilepticus During Inpatient Video-EEG Monitoring. Neurology. 2003;60(6):975-978. DOI: 10.1212/01. wnl.0000053748.83309.28 28. VanHaerents S, Gerard EE. Epilepsy emergencies: status epilepticus, acute repetitive seizures, and autoimmune encephalitis. Continuum: Lifelong Learning in Neurology. 2019;25(2): 454-476. DOI: 10.1212/ CON.0000000000000716 29. Chen H, Koubeissi MZ. Electroencephalography in epilepsy evaluation. Continuum: Lifelong Learning in Neurology. 2019;25(2):431-453. DOI: 10.1212/ CON.0000000000000705 30. Шнайдер НА. Видеомониторинг электроэнцефалографии при эпилепсии. Сибирское медицинское обозрение. 2016;98(2):93-105. [Shnayder NA. Video Monitoring of Electroencephalography in Epilepsy. Siberian Medical Review. 2016;(2):93-105. (In Russian)] Комментарии Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 10 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 48 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_num_rows() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 28 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_fetch_assoc() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 34 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Просмотров: 4239 Описание Авторы Аннотация Ключевые слова Список литературы Комментарии Статистика Кучкаров МФ, Дунаевская СС, Карташков ЕВ, Косик АА. Трансплантация донорской печени при циррозе печени: опыт работы Федерального Cибирского научно-клинического центра. Сибирское медицинское обозрение. 2021;(4):106-109.. DOI 10.20333/25000136-2021-4-106-109 Авторы: Кучкаров Марат Фаатович ; Федеральный сибирский научно-клинический центр ФМБА России; Дунаевская Светлана Сергеевна доктор медицинских наук, доцент, профессор кафедры общей хирургии им. проф. М.И. Гульмана; Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В. Ф. Войно-Ясенецкого; vikto-potapenk@yandex.ru Карташков Евгений Валерьевич ; Федеральный сибирский научно-клинический центр ФМБА России; Косик Арина Александровна ; Красноярский государственный медицинский университет имени профессора В. Ф. Войно-Ясенецкого; Аннотация: Распространенность и смертность при терминальных стадиях диффузных заболеваний печени достигает 60 %. В первую очередь в трансплантации печени нуждаются пациенты с циррозом печени, которым прогнозирована продолжительность жизни меньше 1 года или крайне низкое качество жизни из-за данного заболевания. За последнее десятилетие стало очевидно, что только ортотопическая трансплантация печени является радикальным, эффективным и спасающим жизнь лечением пациента с циррозом печени. В данной статье сообщается о собственных результаты оперативного лечения 13 пациентов которым была выполнена ортотопическая трансплантация печени по различным причинам, оперированных в хирургическом отделении Федерального Сибирского научно-клинического центра ФМБА России. Проанализированы ближайшие результаты послеоперационного периода и структура осложнений. Приводится клинический пример успешного проведения ортотопической трансплантации печени. Постулируется, что с развитием этого направления происходит корректировка в показаниях к трансплантации, а количество абсолютных противопоказаний уменьшается. Следовательно, в будущем можно уже ждать увеличение пациентов на трансплантацию Ключевые слова: трансплантация, печень, заболевания печени, цирроз печени, донорская печень, трупная печень Список литературы: 1. Сеидов Н. Трансплантация печени донорам печени: трансплантация органов, этические проблемы и отбор доноров в Азербайджане. Евразийский Журнал Клинических Наук. 2019; 2(2):9-15. [Seidov N. Liver transplantation to liver donors: organ transplantation, ethical problems and selection of donors in Azerbaijan. Eurasian Journal of Clinical Sciences. 2019; 2(2):9-15. (In Russian)] 2. Недочукова ЕС, Василенко АГ, Галиханова ЕИ, Хазиев РР, Талызина ЮВ. В преддверии трансплантации печени. Вестник Челябинской областной клинической больницы. 2013;1(20):40-41. [Nedochukova ES, Vasilenko AG, Galikhanova EI, Khaziev RR, Talyzina YuV. On the eve of liver transplantation. Bulletin of the Chelyabinsk Regional Clinical Hospital. 2013;1(20):40-41. (In Russian)] 3. Hibi T, Eguchi S, Egawa H.J. Evolution of living donor livertransplantation: a global perspective. Hepatobiliary Pancreatic Sciences. 2018;25(8):388-389. DOI: 10.1002/ jhbp.571 4. Meirelles Júnior RF, Salvalaggio P, Rezende MB, Evangelista AS, Guardia BD, Matielo CE, Neves DB, Pandullo FL, Felga GE, Alves JA, Curvelo LA, Diaz LG, Rusi MB, Viveiros Mde M, Almeida MD, Pedroso PT, Rocco RA, Meira Filho SP. Livertransplantation: history, outcomes and perspectives. Einstein (Sao Paulo). 2015;13(1):149-52. DOI: 10.1590/ S1679-45082015RW3164 5. Абаева ОП, Романов СВ, Рябова ЕН. Качество жизни пациентов, перенесших операцию по трансплантации почки и печени. Профилактическая медицина. 2020; 1(23): 121-126. [Abaeva OP, Romanov SV, Ryabova EN. Quality of life of patients who underwent kidney and liver transplantation surgery. Preventive Medicine. 2020; 1(23): 121-126. (In Russian)] 6. Бессонова ЕН, Корнилова ИА. Анализ структуры категории больных с терминальной стадией хронического заболевания печени, находящихся в листе ожидания трансплантации печени. Вестник Уральской медицинской академической науки. 2011; 4(37): 24-27. [Bessonova EN, Kornilova IA. Analysis of the structure of the category of patients with the terminal stage of chronic liver disease on the waiting list for liver transplantation. Bulletin of the Ural Medical Academic Science. 2011; 4(37): 24-27. (In Russian)] 7. Lepagnot D. Liver transplantation. Revue de Infi rmiere. 2015;(207):27-8. DOI: 10.1016/j.revinf.2014.10.014 8. Niazi S, Schneekloth T, Taner CB. Elderly recipients of livertransplantation: impact of age and psychosocial variables on outcome. Current Opinion in Organ Transplantation. 2017;22(6):588-592. DOI: 10.1097/MOT.0000000000000469 9. Андрейцева ОИ. Возможности ортотопической трансплантации печени при лечении больных с терминальными поражениями печени. Consilium Medicum. 2004; 6(6): 414-420. [Andreitseva OI. Possibilities of orthotopic liver transplantation in the treatment of patients with terminal liver lesions. Consilium Medicum. 2004; 6(6): 414-420. (In Russian)] 10. Rauchfuss F, Bauschke A, Bärthel E, Scheuerlein H, Schüle S, Malessa C, Settmacher U. Living Donor Liver Transplantation. Zentralblatt fur Chirurgie. 2016;141(5): 559-564. DOI: 10.1055/s-0032-1328347 11. Рябова ЕН, Васенин СА, Горохов ГГ, Бельский ВА, Заречнова НВ, Загайнов ВЕ. Сравнение результатов лечения цирроза печени HCV-этиологии при выполнении трансплантации печени и операции портосистемного шунтирования. Современные технологии в медицине. 2010; (1-2): 26 [Ryabova EN, Vasenin SA, Gorokhov GG, Belsky VA, Zarechnova NV, Zagainov VE. Comparison of the results of treatment of liver cirrhosis HCV-etiology during liver transplantation and portosystemic bypass surgery. Modern Technologies in Medicine. 2010; (1-2): 26. (In Russian)] 12. Eguchi S, Hibi T, Egawa H.Livertransplantation: Japanese contributions. Gastroenterology. 2018;53(9):1107- 1108. DOI: 10.1007/s00535-018-1470-2 13. Samuel D, Coilly A. Management of patients with liver diseases on the waiting list for transplantation: a major impact to the success of liver transplantation. BMC Medicine. 2018;16(1):113. DOI: 10.1186/s12916-018-1110-y 14. Хубутия МШ, Андрейцева ОИ, Сюткин ВЕ, Салиенко АА, Чжао АВ. Транспланталогия печени при циррозах печени вирусной этиологии. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2010;2(12):20-21 [Khubutia MSh., Andreitseva OI, Syutkin VE, Salienko AA, Zhao AV. Liver transplantalogy in liver cirrhosis of viral etiology. Bulletin of Transplantology and Artificial Organs. 2010;2(12):20-21. (In Russian)] 15. Alqahtani SA. Update in liver transplantation. Discovery Medicine. 2012;14(75):133-41. 16. Gong N, Chen X. Partial liver transplantation. Frontiers of Medicine. 2011;5(1):1-7. DOI: 10.1007/s11684- 010-0105-7 Комментарии Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 10 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 48 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_num_rows() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 28 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_fetch_assoc() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 34 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Просмотров: 4234 Описание Авторы Аннотация Ключевые слова Список литературы Комментарии Статистика Цхай ВБ, Каплунов ВА, Андреева АА, Бадмаева СЖ, Полстяная ГН, Кузьмина, СВ, Джунагова, ЭШ. Нарушение трофики и некроз миоматозного узла у беременных. Проблема сложного выбора для врача. Сибирское медицинское обозрение. 2021;(4):110-116. DOI 10.20333/25000136-2021-4-110-116 Авторы: Цхай Виталий Борисович доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой перинатологии, акушерства и гинекологии; Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В. Ф. Войно-Ясенецкого; tchai@yandex.ru Каплунов Василий Александрович аспирант; Красноярский государственный медицинский университет имени профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого; - Андреева Алла Андреевна заведующая гинекологического отделения; Красноярский краевой клинический центр охраны материнства и детства; kkkc@pericentr.ru Бадмаева Саяна Жаргаловна аспирант, ассистент; Красноярский государственный медицинский университет имени профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого; happyponchik-2@mail.ru Полстяная Галина Николаевна кандидат медицинских наук, доцент кафедры перинатологии, акушерства и гинекологии лечебного факультета; Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В. Ф. Войно-Ясенецкого; ivf@inbox.ru Кузьмина Светлана Владимировна ; Красноярского краевого центра охраны материнства и детства; Джунагова Элиза Шамхановна ; Красноярского краевого центра охраны материнства и детства; Аннотация: Распространенность миомы матки во время беременности оценивается как относительно небольшаяи составляет 3-12 %. Однако миома матки может привести к серьезным осложнениям беременности таким как, досрочное прерывание беременности, задержка внутриутробного ростая плода, предлежание плаценты, нарушение трофики и некроз миоматозного узла. Миомэктомия редко выполняется во время беременности из-за страха прерывания беременности и риска неконтролируемого кровотечения, требующего гистерэктомии. В этой статье сообщается о собственных случаях миомэктомии субсерозной лейомиомы, которая вызывала септический или асептический некроз. Постулируется, что при выполнении миомэктомии у тщательно отобранных пациентов она предотвращает сепсис вследствие септического или асептического некроза миоматозного узла, а также предотвращаетнарушение функции соседних органов. Ключевые слова: миома матки, миомэктомия, беременность, некроз миоматозного узла, асептический некроз Список литературы: 1. Chen R, Su Z, Yang L, Xin L, Yuan X, Wang Y. Th e eff ects and costs of laparoscopic versus abdominal myomectomy in patients with uterine fi broids: a systematic review and meta-analysis. BMC Surgery. 2020;20(1):55. 2. Sparić R, Kadija S, Stefanović A, Spremović Radjenović S, LikićLadjević I, Popović J, Tinelli A. Cesarean myomectomy in modern obstetrics: More light and fewer shadows. Journal of Obstetrics and Gynecology Research. 2017;43(5):798-804. 3. Parazzini F, Tozzi L, Bianchi S . Pregnancy outcome and uterine fi broids. Best Practice & Research: Clinical Obstetrics and Gynaecology. 2016;(34):74-84. 4. Milazzo GN, Catalano A, Badia V, Mallozzi M, Caserta D. Myoma and myomectomy: Poor evidence concern in pregnancy. Journal of Obstetrics and Gynecology Research. 2017;43(12):1789-1804. 5. Allameh Z, Allameh T. Successful Myomectomy in the Second Trimester of Pregnancy. Advanced Biomedical Research. 2019;(8):60. 6. Fuchs A, Dulska A, Sikora J, Czech I, SkrzypulecPlinta V, Drosdzol-Cop A. Symptomatic uterine fi broids in pregnancy – wait or operate? Own experience. Ginekology Poland. 2019;90(6):320-324. 7. Tong C, Wang Y, Liu Z, Zhao Y, Xu Y, Wang W. Spontaneous reduction of an incarcerated gravid uterus aft er myomectomy in the second trimester: A case report. Medicine (Baltimore). 2019;98(9):e14731. 8. Цхай ВБ, Макаренко ТА, Ермошкин ОА. Результаты проведения консервативной миомэктомии у беременных при некрозах миоматозных узлов. Актуальные вопросы охраны здоровья матери и ребенка: Материалы межрегиональной конференции – Новосибирск. 2004;83-86. [Tskhay VB, Makarenko TA, Ermoshkin OA. Results of conservative myomectomy in pregnant women with necrosis of myomatous nodes. Topical issues of maternal and child health: Materials of the interregional conference – Novosibirsk. 2004; 83-86. (In Russian)] 9. Цхай ВБ, Семашко ЕН, Макаренко ТА. Современные технологии органосохраняющего оперативного лечения у женщин с миомой матки репродуктивного возраста. Вестник перинатологии, акушерства и гинекологии. 2009;(16):303-310. [Tskhay VB, Semashko EN, Makarenko TA. Modern technologies of organpreserving surgical treatment in women with uterine fi broids of reproductive age. Bulletin of Perinatology, Obstetrics and Gynecology. 2009; (16): 303-310. (In Russian)] 10. Буянова СН, Юдина НВ, Гукасян СА, Ермолаева ЕЕ. Показания к миомэктомии во время беременности и ее исходы. Акушерство и гинекология. 2019; (6):70-77. [Buyanova SN, Yudina NV, Gukasyan SA, Ermolaeva EE. Indications for myomectomy during pregnancy and its outcomes. Obstetrics and gynecology. 2019;(6):70-77. (In Russian)] 11. Буянова СН, Юдина НВ, Гукасян СА. Миомэктомия во время беременности: показания, особенности хирургической тактики и анестезии, предоперационная подготовка и реабилитация. Клинический случай. РМЖ. Мать и дитя. 2014; 22(19): 1428-30. [Buyanova SN, Yudina NV, Gukasyan SA. Myomectomy during pregnancy: indications, features of surgical tactics and anesthesia, preoperative preparation and rehabilitation. Clinical case. Breast cancer. Mother and Child. 2014; 22 (19): 1428-30. (In Russian)] 12. Lolis DE, Kalantaridou SN, Makrydimas G, Sotiriadis A, Navrozoglou I, Zikopoulos K. Successful myomectomy during pregnancy. Human Reproduction. 2003;(18):1699–702. 13. Suwandinata FS, Gruessner SE, Omwandho CO, Tinneberg HR. Pregnancy-preserving myomectomy: Preliminary report on a new surgical technique. European Journal of Contraception Reproduction and Health Care. 2008;(13):323–6. 14. Glavind K, Palvio DH, Lauritsen JG. Uterine myoma in pregnancy. Acta Obstetrician et Gynecologica Scandinavica. 1990;69 (7-8):617-9. 15. Lee HJ, Norwitw ER, Shaw J. Contemporary Management of Fibroids in pregnancy. Review of Obstetrics and Gynecology. 2010;3(1):20–27. 16. Dohbit JS, Meka ENU, Tochie JN, Kamla I, Danwang C, Tianyi FL, Foumane P, Andze GO. Diagnostic ambiguity of aseptic necrobiosis of a uterine fibroid in a term pregnancy: a case report. BMC Pregnancy Childbirth. 2019;19(1):9. 17. Sentilhes L, Sergent F, Verspyck E, Gravier A, Roman H, Marpeau L. Laparoscopic myomectomy during pregnancy resulting in septic necrosis of the myometrium. BJOG. 2003;110(9):876–878. 18. De Carolis S, Fatigante G, Ferrazzani S. Uterine myomectomy in pregnant women. Fetal Diagnosis and Th erapy. 2001;16(2):116–119. 19. Bhatla N, Dash BB, Kriplani A, Agarwal N. Myomectomy during pregnancy: a feasible option. Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 2009;35(1): 173–175. Комментарии Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 10 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 48 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_num_rows() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 28 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Warning: mysqli_fetch_assoc() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 34 Table 'site57.sys_comment' doesn't exist Просмотров: 4233 |
Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 10
Table 'site57.sys_comment' doesn't exist
Warning: mysqli_query(): (42S02/1146): Table 'site57.sys_comment' doesn't exist in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 48
Table 'site57.sys_comment' doesn't exist
Warning: mysqli_num_rows() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 28
Table 'site57.sys_comment' doesn't exist
Warning: mysqli_fetch_assoc() expects parameter 1 to be mysqli_result, bool given in /home/var/www/mirror/site/smr.krasgmu.ru/sys/phpsys/__db.php on line 34
Table 'site57.sys_comment' doesn't exist